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検索詳細深城 英弘大学院理学研究科 生物学専攻教授
プロフィール
<研究の興味>
1. 植物はどのような仕組みで「根」を作り、増やすのか?
2. 植物ホルモン「オーキシン」はどのような仕組みで、植物の成長を調節するのか?
植物の地下部を構成する根系は、地上部を支えるだけでなく土壌から水分や養分を吸収する点で重要です。 維管束植物の根系は発芽後伸長する一次根と、一次根の内部組織から形成される側根、地上部から形成される不定根によって構築されます。古くから植物ホルモンのオーキシンが根の形成、特に側根形成に重要な役割を果たすことが 知られてきましたが、その分子機構は近年まで詳しくわかっていませんでした。これまで私たちの研究グループでは、モデル植物シロイヌナズナ (Arabidopsis thaliana)を用いた分子遺伝学的手法により、側根形成の開始に植物ホルモンの一つであるオーキシンを介した遺伝子発現制御が必要なことを明らかに してきました。現在、(1)根の発生・分化に関わるさまざまな因子の解析によって根系構築の分子機構を明らかにすること、および(2)オーキシン生合成・輸送・ 応答に関わる因子の解析によってオーキシン反応の分子機構を明らかにすること、を主な目標として研究を行っています。これらの研究を通 して、植物の生存にとって大切な「根」を作る仕組みと、植物ホルモン「オーキシン」に応答する仕組みを明らかにしたいと考えています。
研究者基本情報
■ 学位■ 研究ニュース
- 2022年06月17日, 根の先端の細胞がスムーズに剥がれ落ちる仕組みを解明 ーオートファジーが細胞を作り変えていたー
- 2021年03月03日, 発見!根の先端は橋と同じだ! ―器官の形に生物種を超えた共通性をもたらす物理―
- 2019年01月07日, 根が適切な間隔で分岐する仕組みに働く植物ペプチドを発見
- 2016年09月14日, 植物の側根の分裂組織を構築する仕組みの一端を明らかに-3Dライブイメージング技術を用いた新手法で―
■ 研究キーワード
- 植物生理学・発生学
- 植物分子遺伝学
- 器官発生
- 組織分化
- 細胞分裂
- 成長運動
- 側根形成
- カルス形成
- シュート再生
- パターン形成
- 幹細胞
- 重力屈性
- 植物ホルモン
- オーキシン
- ペプチドホルモン
- ヘムタンパク質
- DNA損傷応答
- ライブイメージング
- シロイヌナズナ
- ゼニゴケ
- タネツケバナ属
- シクラメン属
■ 委員歴
- 2024年06月 - 現在, 公益社団法人日本植物学会, 代議員
- 2014年01月 - 現在, 一般社団法人日本植物生理学会, 代議員
- 2024年01月 - 2025年12月, 近畿植物学会, 会長
- 2018年01月 - 2025年12月, Journal of Plant Research, Editorial Board
- 2023年01月 - 2024年12月, 一般社団法人日本植物生理学会, 年会委員長
- 2018年06月 - 2020年05月, 公益社団法人日本植物学会, 代議員
- 2013年04月 - 2016年12月, Plant & Cell Physiology, Editorial Board
- 2013年01月 - 2015年03月, 一般社団法人日本植物生理学会, 運営委員
- 2013年01月 - 2014年12月, 公益社団法人日本植物学会, 広報委員
- 2009年01月 - 2012年12月, Journal of Plant Research, Editor
- 2008年01月 - 2011年12月, 日本植物生理学会, 評議員, 日本植物生理学会
- 2008年01月 - 2008年12月, Journal of Plant Research, Editorial Board
研究活動情報
■ 受賞- 2022年10月 学長表彰(財務貢献者)神戸大学
- 2021年10月 神戸大学, 学長表彰(財務貢献者)
- 2020年10月 神戸大学, 学長表彰(財務貢献者)
- 2018年10月 神戸大学, 学長表彰(財務貢献者)
- 2008年03月 日本植物生理学会, 日本植物生理学会奨励賞, 高等植物における根の発生機構に関する分子遺伝学的研究国内学会・会議・シンポジウム等の賞
- 1998年03月 Human Frontier Science Program Organization, Human Frontier Science Program Organization, Long-Term Fellowship Award, Radial pattern formation in plant shoots日本国出版社・新聞社・財団等の賞
- Dormancy is a crucial trait that allows land plants to withstand harsh terrestrial environments by pausing growth until favorable conditions return. The liverwort Marchantia polymorpha produces dormant propagules, gemmae, for asexual reproduction. The phytohormone abscisic acid (ABA) is known to regulate dormancy in the seeds of flowering plants and the gemmae of M. polymorpha. Here, we identify a basic helix-loop-helix protein, MpHYPNOS (MpHYP), as a central regulator of gemma dormancy. MpHYP expression induces germination arrest in gemmae. Transcriptome analysis revealed that MpHYP represses a D-type cyclin gene MpCYCD;1 and induces genes involved in ABA biosynthesis. Repression of MpCYCD;1 expression and germination arrest are both maintained even in an ABA-receptor mutant. By contrast, Mphyp and ABA-related mutants lacked the desiccation tolerance observed in wild-type gemmae. We propose that MpHYP regulates gemma dormancy through two parallel pathways: an ABA-independent pathway that suppresses germination through cell cycle repression, and an ABA-dependent pathway that enhances desiccation tolerance via ABA biosynthesis. These findings highlight an integrated regulatory mechanism of dormancy via phytohormonal and cell cycle control in bryophytes.2026年05月, Plant & cell physiology, 英語, 国内誌研究論文(学術雑誌)
- Elsevier BV, 2025年10月, Current Biology, 35(22) (22), 5411 - 5425, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Springer Science and Business Media LLC, 2025年08月, Nature Plants, 11(8) (8), 1558 - 1571, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Elsevier BV, 2025年08月, iScience, 28(8) (8), 113106 - 113106, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Summary Many plants reproduce asexually by generating clonal progeny from vegetative tissues, a process known as vegetative reproduction. This reproduction mode contrasts with sexual reproduction, which enhances genetic diversity. The bryophyte Marchantia polymorpha L. adjusts its reproductive strategy in response to seasonal environmental cues, transitioning between vegetative and sexual reproduction. In this study, we identified a gene encoding the R2R3‐MYB transcription factor SHOT GLASS (MpSTG) as a critical regulator of gemma cup development. MpSTG was predominantly expressed in the gemma cup, apical notch, and sexual reproductive organs (gametangiophores). MpSTG mutation resulted in the formation of abnormal shot‐glass‐shaped structures lacking gemmae, which replaced functional gemma cups. Additionally, MpSTG‐disrupted plants failed to develop sexual reproductive organs, even under inductive conditions. In Arabidopsis thaliana, the MpSTG ortholog LATERAL ORGAN FUSION1 (AtLOF1) plays a pivotal role in lateral bud formation. We demonstrated that MpSTG can partially compensate for AtLOF1's function in lateral bud formation in A. thaliana. Our findings suggest that MpSTG is a key regulator of vegetative and sexual reproduction in M. polymorpha, and illustrate that evolutionarily conserved developmental mechanisms may function in both the gametophyte generation of bryophytes and the sporophyte generation of angiosperms.Wiley, 2025年07月, New Phytologist, 247(6) (6), 2678 - 2696, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Summary In Arabidopsis thaliana, REDUCED LATERAL ROOT FORMATION (RLF), a cytochrome b5‐like heme‐binding domain (Cytb5‐HBD) protein, is necessary for proper lateral root (LR) formation. Whereas the other Cytb5‐HBD proteins in A. thaliana regulate different metabolic reactions, RLF is unique as it specifically regulates organ development. However, it remains unknown whether heme binding to RLF is necessary for its function and whether RLF orthologs in different plant species also regulate organ development. We demonstrate that RLF binds to heme in vitro and that two histidine residues, which are conserved among Cytb5‐HBD, are crucial for both heme binding and its biological function in A. thaliana. In addition, we show that MpRLF, a RLF ortholog in the bryophyte Marchantia polymorpha, also binds to heme in vitro and that MpRLF rescues the LR formation phenotype of the A. thaliana rlf mutant. Mprlfge, the loss‐of‐function mutation in MpRLF, resulted in delayed thallus growth and inhibited both gemma cup and reproductive organ formation. Our findings indicate that MpRLF is essential for proper vegetative and reproductive development in M. polymorpha. This suggests that RLF‐dependent redox reaction systems are conserved across diverse plant species and were independently co‐opted for organ development in bryophyte and seed plant evolution.Wiley, 2025年05月, New Phytologist, 247(2) (2), 929 - 950, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Lateral root (LR) formation is a postembryonic organogenesis process that is crucial for plant root system development and adaptation to heterogenous soil environments. Since the early 1990s, a wealth of experimental data on arabidopsis (Arabidopsis thaliana) has helped reveal the LR formation regulatory network, in which dynamic auxin distribution and transcriptional cascades direct root cells through their organogenesis pathway. Some parts of this network appear conserved across diverse plant species or distinct developmental contexts. Recently, our knowledge of this process dramatically expanded thanks to technical advances, from single cell profiling to whole-root system phenotyping. Interestingly, new players are now emerging in this network, such as fatty acids and reactive oxygen species (ROS), transforming our knowledge of this hidden half of plant biology.2024年10月, Trends in Plant Science, S1360-1385(24)00268-1, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Rho/Rac of plant (ROP) GTPases are a plant-specific subfamily of Rho small GTP-binding proteins that function as molecular switches by being converted to the active state by guanine nucleotide exchange factors (GEFs) and to the inactive state by GTPase-activating proteins (GAPs). The bryophyteMarchantia polymorphacontains single-copy genes encoding ROP (MpROP), two types of GEFs (ROPGEF and SPIKE (SPK)), and two types of GAPs (ROPGAP and ROP enhancer (REN)). MpROP regulates the development of various organs, including the air chambers, rhizoids, and clonal propagule gemmae. While the sole PRONE-type ROPGEF, KARAPPO (MpKAR), plays an essential role in gemma initiation, little is known about thein-plantafunctions of other ROP regulatory factors inM. polymorpha. In this study, we focused on the functions of two types of GAPs: MpROPGAP and MpREN. Loss-of-function Mprengesingle mutants showed pleiotropic defects in thallus growth, air chamber formation, rhizoid tip growth, and gemma development, whereas MpROPGAP mutants showed no detectable abnormalities. Despite the distinctive domain structures of MpROPGAP and MpREN, MpropgapgeMprengedouble mutants showed more severe phenotypes than the Mprengesingle mutants, suggesting redundant functions of MpROPGAP and MpREN in gametophyte organogenesis. Interestingly, overexpression of MpROPGAP, MpREN, anddominant-negativeMpROP(MpROPDN) resulted in similar air chamber defects, as well as loss-of-function of MpRENand MpROPGAPand overexpression ofconstitutively activeMpROP(MpROPCA), suggesting importance of activation/inactivation cycling (or balancing) of MpROP. Furthermore, we proved the contributions of the sole DOCK family GEF, MpSPK, to MpROP-regulated air chamber formation. In summary, our results demonstrate a significant role of the two GAPs in the development of various organs and that the two GEFs are responsible for organogenesis through the control of the MpROP active/inactive cycle in the vegetative growth ofM. polymorpha.Cold Spring Harbor Laboratory, 2024年10月, Development, 151(20) (20), dev202928, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Root development is essential for plant survival. The lack of carotenoid biosynthesis in the phytoene desaturase 3 (pds3) mutant results in short primary roots (PR) and reduced lateral root (LR) formation. In this study, we showed that short-term inhibition of PDS by fluridone suppresses PR growth in WT, but to a lesser extent in auxin mutants of Arabidopsis (Arabidopsis thaliana). Such an inhibition of PDS activity increased endogenous indole-3-acetic acid (IAA) levels, promoted auxin signaling, and partially complemented the PR growth of an auxin deficient mutant, the YUCCA 3 5 7 8 9 quadruple mutant (yucQ). The exogenous application of retinaldehyde (retinal), an apocarotenoid derived from β-carotene, complemented the fluridone-induced suppression of root growth, as well as the short roots of the pds3 mutant. Retinal also partially complemented the auxin-induced suppression of root growth. These results suggest that retinal may play a role in regulating root growth by modulating endogenous auxin levels.2024年10月, Plant Physiology, 196(2) (2), 1659 - 1673, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Springer Science and Business Media LLC, 2024年05月, Nature Plants, 10(5) (5), 785 - 797, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- In Catharanthus roseus, monoterpenoid indole alkaloids (MIAs) are produced through the cooperation of four cell types, with final products accumulating in specialized cells known as idioblasts and laticifers. To explore the relationship between cellular differentiation and cell type-specific MIA metabolism, we analyzed the expression of MIA biosynthesis in germinating seeds. Embryos from immature and mature seeds were observed via stereomicroscopy, fluorescence microscopy, and electron microscopy. Time-series MIA and iridoid quantification, along with transcriptome analysis, were conducted to determine the initiation of MIA biosynthesis. In addition, the localization of MIAs was examined using alkaloid staining and imaging mass spectrometry (IMS). Laticifers were present in embryos before seed maturation. MIA biosynthesis commenced 12 h after germination. MIAs accumulated in laticifers of embryos following seed germination, and MIA metabolism is induced after germination in a tissue-specific manner. These findings suggest that cellular morphological differentiation precedes metabolic differentiation. Considering the well-known toxicity and defense role of MIAs in matured plants, MIAs may be an important defense strategy already in the delicate developmental phase of seed germination, and biosynthesis and accumulation of MIAs may require the tissue and cellular differentiation.2024年05月, New Phytologist, 242(3) (3), 1156 - 1171, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Abstract Lateral root (LR) formation is an important developmental event for the establishment of the root system in most vascular plants. In Arabidopsis thaliana, the fewer roots (fwr) mutation in the GNOM gene, encoding a guanine nucleotide exchange factor of ADP ribosylation factor that regulates vesicle trafficking, severely inhibits LR formation. Local accumulation of auxin response for LR initiation is severely affected in fwr. To better understand how local accumulation of auxin response for LR initiation is regulated, we identified a mutation, fewer roots suppressor1 (fsp1), that partially restores LR formation in fwr. The gene responsible for fsp1 was identified as SUPERROOT2 (SUR2), encoding CYP83B1 that positions at the metabolic branch point in the biosynthesis of auxin/indole-3-acetic acid (IAA) and indole glucosinolate. The fsp1 mutation increases both endogenous IAA levels and the number of the sites where auxin response locally accumulates prior to LR formation in fwr. SUR2 is expressed in the pericycle of the differentiation zone and in the apical meristem in roots. Time-lapse imaging of the auxin response revealed that local accumulation of auxin response is more stable in fsp1. These results suggest that SUR2/CYP83B1 affects LR founder cell formation at the xylem pole pericycle cells where auxin accumulates. Analysis of the genetic interaction between SUR2 and GNOM indicates the importance of stabilization of local auxin accumulation sites for LR initiation.Oxford University Press (OUP), 2023年10月, Plant and Cell Physiology, 64(10) (10), 1178 - 1188, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Plants produce sugars by photosynthesis and use them for growth and development. Sugars are transported from source-to-sink organs via the phloem in the vasculature. It is well known that vascular development is precisely controlled by plant hormones and peptide hormones. However, the role of sugars in the regulation of vascular development is poorly understood. In this study, we examined the effects of sugars on vascular cell differentiation using a vascular cell induction system named Vascular cell Induction culture System Using Arabidopsis Leaves (VISUAL). We found that sucrose has the strongest inhibitory effect on xylem differentiation among several types of sugars. Transcriptome analysis revealed that sucrose suppresses xylem and phloem differentiation from cambial cells. Physiological and genetic analysis suggested that sucrose might function through the BES1 transcription factor, which is the central regulator of vascular cell differentiation. Conditional overexpression of cytosolic invertase led to a decrease in the number of cambium layers due to an imbalance between cell division and differentiation. Taken together, our results suggest that sucrose potentially acts as a signal that integrates environmental conditions with the developmental program.2023年05月, Plant & Cell Physiology, 64(12) (12), 1511 - 1522, 英語, 国内誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- ABSTRACT The root cap is a multilayered tissue covering the tip of a plant root that directs root growth through its unique functions, such as gravity sensing and rhizosphere interaction. To maintain the structure and function of the root cap, its constituent cells are constantly turned over through balanced cell division and cell detachment in the inner and outer cell layers, respectively. Upon displacement toward the outermost layer, columella cells at the central root cap domain functionally transition from gravity-sensing cells to secretory cells, but the mechanisms underlying this drastic cell fate transition are largely unknown. Here, using live-cell tracking microscopy, we show that organelles in the outermost cell layer undergo dramatic rearrangements. This rearrangement depends, at least partially, on spatiotemporally regulated activation of autophagy. Notably, this root cap autophagy does not lead to immediate cell death, but is instead necessary for organized separation of living root cap cells, highlighting a previously undescribed role of developmentally regulated autophagy in plants. This article has an associated ‘The people behind the papers’ interview.The Company of Biologists, 2022年06月, Development, 149(11) (11), dev200593, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- One of the characteristic aspects of odour sensing in humans is the activation of olfactory receptors in a slightly different manner in response to different enantiomers. Here, we focused on whether plants showed enantiomer-specific response similar to that in humans. We exposed Arabidopsis seedlings to methanol (control) and (+)- or (−)-borneol, and found that only (+)-borneol reduced the root length. Furthermore, the root-tip width was more increased upon (+)-borneol exposure than upon (−)-borneol exposure. In addition, root-hair formation was observed near the root tip in response to (+)-borneol. Auxin signalling was strongly reduced in the root tip following exposure to (+)-borneol, but was detected following exposure to (−)-borneol and methanol. Similarly, in the root tip, the activity of cyclin B1:1 was detected on exposure to (−)-borneol and methanol, but not on exposure to (+)-borneol, indicating that (+)-borneol inhibits the meristematic activity in the root. These results partially explain the (+)-borneol-specific reduction in the root length of Arabidopsis. Our results indicate the presence of a sensing system specific for (+)-borneol in Arabidopsis.The Royal Society, 2022年05月, Biology Letters, 18(5) (5), 20210629 - 20210629, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Wiley, 2022年03月, Plant, Cell & Environment, 45(6) (6), 1749 - 1764, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Bioactive specialized (secondary) metabolites are indispensable for plant development or adjustment to their surrounding environment. In many plants, these specialized metabolites are accumulated in specifically differentiated cells. Catharanthus roseus is a well-known medicinal plant known for producing many kinds of monoterpenoid indole alkaloids (MIAs). C. roseus has two types of specifically differentiated cells accumulating MIAs, so-called idioblast cells and laticifer cells. In this study, we compared each of the cells as they changed during seedling growth, and found that the fluorescent metabolites accumulated in these cells were differentially regulated. Analysis of fluorescent compounds revealed that the fluorescence observed in these cells was emitted from the compound serpentine. Further, we found that the serpentine content of leaves increased as leaves grew. Our findings suggest that idioblast cells and laticifer cells have different biological roles in MIA biosynthesis and its regulation.Springer Science and Business Media LLC, 2022年03月, Journal of Plant Research, 135(3) (3), 473 - 483, 英語, 国内誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Wiley, 2022年02月, New Phytologist, 233(4) (4), 1780 - 1796[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Organ morphologies are diverse but also conserved under shared developmental constraints among species. Any geometrical similarities in the shape behind diversity and the underlying developmental constraints remain unclear. Plant root tip outlines commonly exhibit a dome shape, which likely performs physiological functions, despite the diversity in size and cellular organization among distinct root classes and/or species. We carried out morphometric analysis of the primary roots of ten angiosperm species and of the lateral roots (LRs) of Arabidopsis, and found that each root outline was isometrically scaled onto a parameter-free catenary curve, a stable structure adopted for arch bridges. Using the physical model for bridges, we analogized that localized and spatially uniform occurrence of oriented cell division and expansion force the LR primordia (LRP) tip to form a catenary curve. These growth rules for the catenary curve were verified by tissue growth simulation of developing LRP development based on time-lapse imaging. Consistently, LRP outlines of mutants compromised in these rules were found to deviate from catenary curves. Our analyses demonstrate that physics-inspired growth rules constrain plant root tips to form isometrically scalable catenary curves.2021年02月, Development, 148(4) (4), dev196253, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2020年07月, New Phytologist, 227(1) (1), 200 - 215, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2020年04月, Plant Physiology, 182(4) (4), 1645 - 1656, 英語Peptide-Receptor Signaling Controls Lateral Root Development.[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Plants have evolved mechanisms to improve utilization efficiency or acquisition of inorganic phosphate (Pi) in response to Pi deficiency, such as altering root architecture, secreting acid phosphatases, and activating the expression of genes related to Pi uptake and recycling. Although many genes responsive to Pi starvation have been identified, transcription factors that affect tolerance to Pi deficiency have not been well characterized. We show here that the ectopic expression of B-BOX32 (BBX32) and the mutation of ELONGATED HYPOCOTYL 5 (HY5), whose transcriptional activity is negatively regulated by BBX32, resulted in the tolerance to Pi deficiency in Arabidopsis. The primary root lengths of 35S:BBX32 and hy5 plants were only slightly inhibited under Pi deficient condition and the fresh weights were significantly higher than those of wild type. The Pi deficiency-tolerant root phenotype of hy5 was similarly observed when grown on the medium without Pi. In addition, a double mutant, hy5 slr1, without lateral roots, also showed a long primary root phenotype under phosphate deficiency, indicating that the root phenotype of hy5 does not result from an increase of external Pi uptake. Moreover, we found that blue light may regulate Pi deficiency-dependent primary root growth inhibition through activating peroxidase gene expression, suggesting the Pi-deficiency tolerant root phenotype of hy5 may be due to blockage of blue light responses. Altogether, this study points out light quality may play an important role in the regulation of Pi deficiency responses. It may contribute to regulate plant growth under Pi deficiency through proper illumination.2020年01月, Front Plant Sci., 10, 1803 - 1803, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Elsevier BV, 2019年12月, Curr. Biol., 29(23) (23), 3987 - 3995, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2019年11月, Plant Journal, 100(3) (3), 536 - 548, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2019年11月, Front Plant Sci., 10, 1462, 英語Editorial: Root Branching: From Lateral Root Primordium Initiation and Morphogenesis to Function.[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Many plants can reproduce vegetatively, producing clonal progeny from vegetative cells; however, little is known about the molecular mechanisms underlying this process. Liverwort (Marchantia polymorpha), a basal land plant, propagates asexually via gemmae, which are clonal plantlets formed in gemma cups on the dorsal side of the vegetative thallus [1]. The initial stage of gemma development involves elongation and asymmetric divisions of a specific type of epidermal cell, called a gemma initial, which forms on the floor of the gemma cup [2, 3]. To investigate the regulatory mechanism underlying gemma development, we focused on two allelic mutants in which no gemma initial formed; these mutants were named karappo, meaning "empty." We used whole-genome sequencing of both mutants and molecular genetic analysis to identify the causal gene, KARAPPO (KAR), which encodes a ROP guanine nucleotide exchange factor (RopGEF) carrying a plant-specific ROP nucleotide exchanger (PRONE) catalytic domain. In vitro GEF assays showed that the full-length KAR protein and the PRONE domain have significant GEF activity toward MpROP, the only ROP GTPase in M. polymorpha. Moreover, genetic complementation experiments showed a significant role for the N- and C-terminal variable regions in gemma development. Our investigation demonstrates an essential role for KAR/RopGEF in the initiation of plantlet development from a differentiated cell, which may involve cell-polarity formation and subsequent asymmetric cell division via activation of ROP signaling, implying a similar developmental mechanism in vegetative reproduction of various land plants.2019年10月, Current biology : CB, 29(20) (20), 3525 - 3531, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Lateral root (LR) formation in Arabidopsis thaliana is initiated by asymmetric division of founder cells, followed by coordinated cell proliferation and differentiation for patterning new primordia. The sequential developmental processes of LR formation are triggered by a localized auxin response. LATERAL ORGAN BOUNDARIES-DOMAIN 16 (LBD16), an auxin-inducible transcription factor, is one of the key regulators linking auxin response in LR founder cells to LR initiation. We identified key genes for LR formation that are activated by LBD16 in an auxin-dependent manner. LBD16 targets identified include the transcription factor gene PUCHI, which is required for LR primordium patterning. We demonstrate that LBD16 activity is required for the auxin-inducible expression of PUCHI. We show that PUCHI expression is initiated after the first round of asymmetric cell division of LR founder cells and that premature induction of PUCHI during the preinitiation phase disrupts LR primordium formation. Our results indicate that LR initiation requires the sequential induction of transcription factors LBD16 and PUCHI.2019年10月, New Phytologist, 224(2) (2), 749 - 760, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Catharanthus roseus is a medicinal plant well known for producing bioactive compounds such as vinblastine and vincristine, which are classified as terpenoid indole alkaloids (TIAs). Although the leaves of this plant are the main source of these antitumour drugs, much remains unknown on how TIAs are biosynthesised from a central precursor, strictosidine, to various TIAs in planta. Here, we have succeeded in showing, for the first time in leaf tissue of C. roseus, cell-specific TIAs localisation and accumulation with 10 μm spatial resolution Imaging mass spectrometry (Imaging MS) and live single-cell mass spectrometry (single-cell MS). These metabolomic studies revealed that most TIA precursors (iridoids) are localised in the epidermal cells, but major TIAs including serpentine and vindoline are localised instead in idioblast cells. Interestingly, the central TIA intermediate strictosidine also accumulates in both epidermal and idioblast cells of C. roseus. Moreover, we also found that vindoline accumulation increases in laticifer cells as the leaf expands. These discoveries highlight the complexity of intercellular localisation in plant specialised metabolism.2019年10月, New Phytologist, 224(2) (2), 848 - 859, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- How plant cells re-establish differential growth to initiate organs is poorly understood. Morphogenesis of lateral roots relies on the asymmetric cell division of initially symmetric founder cells. This division is preceded by the tightly controlled asymmetric radial expansion of these cells. The cellular mechanisms that license and ensure the coordination of these events are unknown. Here, we quantitatively analyze microtubule and F-actin dynamics during lateral root initiation. Using mutants and pharmacological and tissue-specific genetic perturbations, we show that dynamic reorganization of both microtubule and F-actin networks is necessary for the asymmetric expansion of the founder cells. This cytoskeleton remodeling intertwines with auxin signaling in the pericycle and endodermis in order for founder cells to acquire a basic polarity required for initiating lateral root development. Our results reveal the conservation of cell remodeling and polarization strategies between the Arabidopsis zygote and lateral root founder cells. We propose that coordinated, auxin-driven reorganization of the cytoskeleton licenses asymmetric cell growth and divisions during embryonic and post-embryonic organogenesis.2019年08月, Current Biology : CB, 29(15) (15), 2443 - 2454, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2019年07月, Proc Natl Acad Sci U S A., 116(28) (28), 14325 - 14330, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Pyruvate dehydrogenase is the first enzyme (E1) of the PDH complex (PDC). This multienzyme complex contains E1, E2, and E3 components and controls the entry of carbon into the mitochondrial tricarboxylic acid cycle to enable cellular energy production. The E1 component of the PDC is composed of an E1α catalytic subunit and an E1β regulatory subunit. In Arabidopsis (Arabidopsis thaliana), there are two mitochondrial E1α homologs encoded by IAA-CONJUGATE-RESISTANT 4 (IAR4) and IAR4-LIKE (IAR4L), and one mitochondrial E1β homolog. Although IAR4 was reported to be involved in auxin conjugate sensitivity and auxin homeostasis in root development, its precise role remains unknown. Here, we provide experimental evidence that mitochondrial PDC E1 contributes to polar auxin transport during organ development. We performed genetic screens for factors involved in cotyledon development and identified an uncharacterized mutant, macchi-bou 1 (mab1). MAB1 encodes a mitochondrial PDC E1β subunit that can form both a homodimer and a heterodimer with IAR4. The mab1 mutation impaired MAB1 homodimerization, reduced the abundance of IAR4 and IAR4L, weakened PDC enzymatic activity, and diminished mitochondrial respiration. A metabolomics analysis showed significant changes in metabolites including amino acids in mab1 and, in particular, identified an accumulation of Ala. These results suggest that MAB1 is a component of the Arabidopsis mitochondrial PDC E1. Furthermore, in mab1 mutants and seedlings where the TCA cycle was pharmacologically blocked, we found reduced abundance of the PIN-FORMED (PIN) auxin efflux carriers, possibly due to impaired PIN recycling and enhanced PIN degradation in vacuoles. Therefore, we suggest that mab1 induces defective polar auxin transport via metabolic abnormalities.2019年06月, Plant Physiology, 180(2) (2), 896 - 909, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- In plants, the position of lateral roots (LRs) depends on initiation sites induced by auxin. The domain of high auxin response responsible for LR initiation stretches over several cells, but only a pair of pericycle cells (LR founder cells) will develop into LRs. In this work, we identified a signaling cascade controlling LR formation through lateral inhibition. It comprises a peptide hormone TARGET OF LBD SIXTEEN 2 (TOLS2), its receptor RLK7, and a downstream transcription factor PUCHI. TOLS2 is expressed at the LR founder cells and inhibits LR initiation. Time-lapse imaging of auxin-responsive DR5:LUCIFERASE reporter expression revealed that occasionally two pairs of LR founder cells are specified in close proximity even in wild-type and that one of them exists only transiently and disappears in an RLK7-dependent manner. We propose that the selection of LR founder cells by the peptide hormone-receptor cascade ensures proper LR spacing.2019年01月, Develpmental Cell, 48(1) (1), 64 - 75, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2018年12月, Science, 362(6421) (6421), 1407 - 1410, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Plant root systems are indispensable for water uptake, nutrient acquisition, and anchoring plants in the soil. Previous studies using auxin inhibitors definitively established that auxin plays a central role regulating root growth and development. Most auxin inhibitors affect all auxin signaling at the same time, which obscures an understanding of individual events. Here, we report that jasmonic acid (JA) functions as a lateral root (LR)-preferential auxin inhibitor in Arabidopsis (Arabidopsis thaliana) in a manner that is independent of the JA receptor, CORONATINE INSENSITIVE1 (COI1). Treatment of wild-type Arabidopsis with either (-)-JA or (+)-JA reduced primary root length and LR number; the reduction of LR number was also observed in coi1 mutants. Treatment of seedlings with (-)-JA or (+)-JA suppressed auxin-inducible genes related to LR formation, diminished accumulation of the auxin reporter DR5::GUS, and inhibited auxin-dependent DII-VENUS degradation. A structural mimic of (-)-JA and (+)-coronafacic acid also inhibited LR formation and stabilized DII-VENUS protein. COI1-independent activity was retained in the double mutant of transport inhibitor response1 and auxin signaling f-box protein2 (tir1 afb2) but reduced in the afb5 single mutant. These results reveal JAs and (+)-coronafacic acid to be selective counter-auxins, a finding that could lead to new approaches for studying the mechanisms of LR formation.2018年08月, Plant Physiology, 177(4) (4), 1704 - 1716, 英語, 国際誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- We analyzed the metabolites and proteins contained in pure intact vacuoles isolated from Arabidopsis suspension-cultured cells using capillary electrophoresis-mass spectrometry (CE-MS), Fourier transform-ion cyclotron resonance (FT-ICR)-MS and liquid chromatography (LC)-MS. We identified 21 amino acids and five organic acids as major primary metabolites in the vacuoles with CE-MS. Further, we identified small amounts of 27 substances including well-known vacuolar molecules, but also some unexpected substances (e.g. organic phosphate compounds). Non-target analysis of the vacuolar sample with FT-ICR-MS suggested that there are 1,106 m/z peaks that could predict the 5,090 molecular formulae, and we have annotated 34 compounds in these peaks using the KNapSAck database. By conducting proteomic analysis of vacuolar sap, we found 186 proteins in the same vacuole samples. Since the vacuole is known as a major degradative compartment, many of these were hydrolases, but we also found various oxidoreductases and transferases. The relationships between the proteins and metabolites in the vacuole are discussed.2018年07月, Plant & cell physiology, 59(7) (7), 1353 - 1362, 英語, 国内誌[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2017年09月, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 58(9) (9), 1477 - 1485, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2017年07月, PLANT JOURNAL, 91(2) (2), 306 - 324, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2017年05月, FRONTIERS IN PLANT SCIENCE, 8(8) (8), 875, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2016年09月, DEVELOPMENT, 143(18) (18), 3363 - 3371, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2016年09月, DEVELOPMENT, 143(18) (18), 3340 - 3349, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2016年08月, JOURNAL OF EXPERIMENTAL BOTANY, 67(16) (16), 4863 - 4875, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2016年06月, PROCEEDINGS OF THE NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES OF THE UNITED STATES OF AMERICA, 113(23) (23), 6562 - 6567, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2016年04月, PROCEEDINGS OF THE NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES OF THE UNITED STATES OF AMERICA, 113(14) (14), 3891 - 3896, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2015年11月, NATURE COMMUNICATIONS, 6, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2015年07月, NATURE COMMUNICATIONS, 6, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2015年07月, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 56(7) (7), 1297 - 1305, 英語[査読有り][招待有り]研究論文(学術雑誌)
- 2015年06月, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 56(6) (6), 1229 - 1238, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2015年05月, PLANT CELL, 27(5) (5), 1368 - 1388, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2015年03月, PLANT BIOTECHNOLOGY, 32(1) (1), 65 - 79, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2014年07月, NEW PHYTOLOGIST, 203(2) (2), 632 - 645, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2014年07月, JOURNAL OF PLANT RESEARCH, 127(4) (4), 545 - 551, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2014年06月, PLANT PHYSIOLOGY, 165(2) (2), 747 - 758, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2014年, New Phytologists, 203(2) (2), 632 - 645, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2013年10月, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 54(10) (10), 1571 - 1584, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2013年10月, Plant, Cell and Environment, 36(10) (10), 1826 - 1837, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2013年08月, TRENDS IN PLANT SCIENCE, 18(8) (8), 455 - 463, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2013年03月, Plant and Cell Physiology, 54(3) (3), 406 - 417, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2013年02月, PLoS ONE, 8(2) (2), 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2012年06月, PHILOSOPHICAL TRANSACTIONS OF THE ROYAL SOCIETY B-BIOLOGICAL SCIENCES, 367(1595) (1595), 1461 - 1468, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2012年03月, DEVELOPMENT, 139(5) (5), 883 - 893, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2012年03月, PLANT CELL, 24(3) (3), 1081 - 1095, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2012年01月, PLANT CELL, 24(1) (1), 15 - 20, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2011年, 高等研報告書, 1004、73-79, 日本語維管束植物と根系構築と側根発生の機構「細胞履歴に基づく植物の形態形成」[査読有り][招待有り]
- 2010年06月, COLD SPRING HARBOR PERSPECTIVES IN BIOLOGY, 2(6) (6), 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2010年06月, PLANT JOURNAL, 62(5) (5), 865 - 875, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2010年03月, PLANT MOLECULAR BIOLOGY, 72(4-5) (4-5), 533 - 544, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2009年12月, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 50(12) (12), 2023 - 2033, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2009年03月, PLANT MOLECULAR BIOLOGY, 69(4) (4), 437 - 449, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2008年10月, JOURNAL OF EXPERIMENTAL BOTANY, 59(14) (14), 4059 - 4059, 英語[査読有り]
- 2008年07月, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 49(7) (7), 1025 - 1038, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2007年09月, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 48(9) (9), 1275 - 1290, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2007年07月, PLANT CELL, 19(7) (7), 2156 - 2168, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2007年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 48, S31 - S31, 英語Distribution mechanism and physiological roles of inorganic ion gradient in a leaf[査読有り]
- 2007年, INTERNATIONAL REVIEW OF CYTOLOGY - A SURVEY OF CELL BIOLOGY, VOL 256, 256, 111 - 137, 英語[査読有り][招待有り]論文集(書籍)内論文
- 2007年01月, PLANT CELL, 19(1) (1), 118 - 130, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2006年11月, PLANT JOURNAL, 48(3) (3), 380 - 389, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2006年05月, BIOORGANIC & MEDICINAL CHEMISTRY LETTERS, 16(9) (9), 2470 - 2474, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2005年12月, PROCEEDINGS OF THE NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES OF THE UNITED STATES OF AMERICA, 102(51) (51), 18742 - 18747, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2005年11月, PLANT JOURNAL, 44(3) (3), 382 - 395, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2005年11月, PLANT CELL, 17(11) (11), 3035 - 3050, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- Japanese Society for Plant Cell and Molecular Biology, 2005年, Plant Biotechnology, 22(5) (5), 393 - 399, 英語[査読有り][招待有り]研究論文(学術雑誌)
- 2003年07月, PHYSIOLOGIA PLANTARUM, 118(3) (3), 464 - 473, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2002年01月, PLANT CELL, 14(1) (1), 33 - 46, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2002年01月, PLANT JOURNAL, 29(2) (2), 153 - 168, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2001年10月, Uchu Seibutsu Kagaku, 15(3) (3), 250 - 251[Analysis of circumnutation in the seedlings (correction of seedings) of agravitropic mutants].[査読有り]
- 2001年, INTERNATIONAL REVIEW OF CYTOLOGY - A SURVEY OF CELL BIOLOGY, VOL 206, 206, 135 - 154, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2000年05月, CELL, 101(5) (5), 555 - 567, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2000年02月, DEVELOPMENT, 127(3) (3), 595 - 603, 英語Molecular analysis of SCARECROW function reveals a radial patterning mechanism common to root and shoot[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 1999年05月, PROCEEDINGS OF THE NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES OF THE UNITED STATES OF AMERICA, 96(11) (11), 6535 - 6540, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 1999年03月, TRENDS IN PLANT SCIENCE, 4(3) (3), 103 - 107, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 1999年, LIFE SCIENCES: MICROGRAVITY RESEARCH II, 24(6) (6), 763 - 770, 英語Gravity perception and gravitropic response of inflorescence stems in Arabidopsis thaliana[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 1998年05月, PLANT JOURNAL, 14(4) (4), 425 - 430, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 1997年07月, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 38(7) (7), 804 - 810, 英語The RHG gene is involved in root and hypocotyl gravitropism in Arabidopsis thaliana[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 1997年06月, PLANT CELL, 9(6) (6), 841 - 857, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 1997年05月, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 38(5) (5), 530 - 535, 英語Mutations in the SGR4, SGR5 and SGR6 loci of Arabidopsis thaliana alter the shoot gravitropism[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 1996年06月, JOURNAL OF PLANT RESEARCH, 109(1094) (1094), 129 - 137, 英語How do plant shoots bend up? The initial step to elucidate the molecular mechanisms of shoot gravitropism using Arabidopsis thaliana[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 1996年03月, PLANT PHYSIOLOGY, 110(3) (3), 945 - 955, 英語[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 1996年03月, Plant Physiology, 110(3) (3), 933 - 943[査読有り]研究論文(学術雑誌)
- 2025年, 日本植物生理学会年会(Web), 66thゼニゴケのR2R3-MYB転写因子SHOT GLASSは栄養繁殖器官および有性生殖器官の形成を促進する
- 2024年, 日本RNA学会年会要旨集, 25thプレmRNAスプライシングは植物における光合成活性を側根形態形成に結び付ける【JST機械翻訳】
- 2024年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 88thpre-mRNAスプライシングが駆動する光合成活性を反映した側根形態制御
- 2024年, Plant Morphology, 36(1) (1)非典型BZR/BES転写因子MpBZR3によるゼニゴケ配偶子器の発生制御
- 2024年, 日本植物生理学会年会(Web), 65thコケ植物ゼニゴケのリン吸収における仮根の機能について
- 2024年, 日本植物生理学会年会(Web), 65thゼニゴケCHLH遺伝子の変異はPPO阻害除草剤耐性を付与する
- 2024年, 日本植物生理学会年会(Web), 65th非維管束植物ゼニゴケにおける液胞膜リン酸輸送体VPTの機能解析
- 2024年, 日本植物生理学会年会(Web), 65th経時的遺伝子発現変化から理解する苔類ゼニゴケの胞子発芽過程
- 2024年, 日本植物生理学会年会(Web), 65thゼニゴケのシトクロムb5様ヘム結合タンパク質MpRLFは栄養成長と生殖成長における適切な発生に必要である
- 2023年, 日本植物生理学会年会(Web), 64th地上部ヘムシグナルはpre-mRNAスプライシング制御を介して側根形態を制御する
- 2023年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 87thpre-mRNAスプライシング制御を介した光合成活性による側根形態制御
- 2023年, 日本分子生物学会年会プログラム・要旨集(Web), 46th植物において光合成活性はpre-mRNAスプライシング制御を介して側根形態に反映される
- 2023年, 日本植物生理学会年会(Web), 64thMpHYPNOSによるゼニゴケ無性芽の休眠制御機構
- 2023年, 日本植物生理学会年会(Web), 64thROPシグナル伝達系によるゼニゴケ形態形成制御メカニズム
- 2023年, 日本植物生理学会年会(Web), 64th非維管束植物ゼニゴケのリン応答におけるMYBCC-SPXモジュールの機能
- 2023年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 87thゼニゴケの器官形成を制御するROPシグナリング
- 2023年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 87th非維管束植物ゼニゴケにおける液胞膜リン酸輸送体VPTの機能解析
- 2023年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 87thMpHYPNOSはABA依存的および非依存的に無性芽の休眠を制御する
- 2023年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 87thゼニゴケCHLH遺伝子の変異はPPO阻害除草剤耐性を付与する
- 2022年06月, Plant, Cell & Environment
- 2022年04月25日, bioRxiv, 488978
- 2022年, 日本植物生理学会年会(Web), 63rdゼニゴケ無性芽におけるMpHYPNOSを介した休眠制御
- 2022年, 日本植物生理学会年会(Web), 63rdゼニゴケ胞子における非対称分裂メカニズム
- 2022年, 日本植物生理学会年会(Web), 63rd非維管束植物ゼニゴケのリン欠乏応答におけるMYBCC-SPXモジュールの機能
- 2022年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 86thPPO阻害除草剤耐性ゼニゴケの単離と解析
- 2022年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 86thコケ植物ゼニゴケのリン欠乏応答を制御するMYBCC型転写因子の機能解析
- 2022年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 86thゼニゴケ無性芽の休眠を促進するMpHYPNOSの機能
- 2022年, 日本植物生理学会年会(Web), 63rdaux/iaa3/shy2-101優性突然変異体における誇張された根切り応答のオーキシン応答
- 2022年, 日本植物生理学会年会(Web), 63rdArabidopsis thalianaの根切断応答に対するフィトエンデサチュラーゼ活性とオーキシンシグナリングの関与
- 2022年, 日本植物生理学会年会(Web), 63rd薬用植物ニチニチソウの種子発芽過程におけるアルカロイド代謝開始機構の解析
- 2021年, 日本植物生理学会年会(Web), 62ndゼニゴケにおけるLAX PANICLE2相同遺伝子の機能解析
- 2021年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 85thゼニゴケ無性芽におけるMpHYPNOSを介した休眠制御
- 2021年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 85thゼニゴケ器官形成におけるR2R3-MYB転写因子SHOTGLASSの機能
- 2021年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 85th基部陸上植物ゼニゴケのリン欠乏応答におけるMpMYBCC-MpSPXモジュールの機能
- 2021年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 85thゼニゴケ葉状体の形態形成におけるMpRENの機能解析
- 2021年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 85th基部陸上植物ゼニゴケにおけるリンの吸収・分配・貯蔵のメカニズム
- 2020年06月, 化学と生物, 58(6) (6), 322 - 324, 日本語根が分岐する間隔を調節する低分子分泌ペプチド記事・総説・解説・論説等(学術雑誌)
- 2020年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 84thゼニゴケ側生器官形成を制御するMYB転写因子GCAM2の機能解析
- 2020年, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 84thポプラ短縮周年系を用いた季節的なリン転流機構の解明と野外RNA-Seqとの比較
- 2019年12月, 植物の生長調節, 54(2) (2), 129 - 136, 日本語側根形成の制御機構に関する研究の新展開[査読有り][招待有り]記事・総説・解説・論説等(学術雑誌)
- 2019年, 日本植物学会大会研究発表記録, 83rd根系の光環境が植物のリン酸応答に与える影響
- 2018年09月01日, 日本植物学会大会研究発表記録, 82nd, 258, 日本語ゼニゴケのMYB型転写因子GCAM1による幹細胞制御機構の解析
- 2018年, 日本植物学会大会研究発表記録, 82ndポプラの短期落葉-開芽系を用いた季節的なリン酸転流機構の解明と野外RNA-seqとの比較
- 2017年09月01日, 日本植物学会大会研究発表記録, 81st, 204, 日本語さまざまな植物における紅葉・黄葉現象の解析
- 2017年09月01日, 日本植物学会大会研究発表記録, 81st, 173, 日本語落葉木本植物ポプラの季節的なリン転流機構の解析
- (一社)日本細胞生物学会, 2017年05月, 日本細胞生物学会大会講演要旨集, 69回, 15 - 15, 日本語細胞社会の構築原理 数理科学的アプローチによる展開 細胞壁をもつ植物における器官形成の解析 側根形成をモデルとして
- 2016年09月01日, 日本植物学会大会研究発表記録, 80th, 172, 日本語ポプラの短期落葉‐開芽系を用いた季節的なリン転流機構の解析
- 2016年09月01日, 日本植物学会大会研究発表記録, 80th, 164, 日本語ポプラにおける葉組織リン代謝の季節変動―野外と実験室培養系の比較―
- 2016年09月01日, 日本植物学会大会研究発表記録, 80th, 165, 日本語シロイヌナズナのリン酸濃度応答遺伝子の探索
- Auxin-dependent compositional change in Mediator in ARF7- and ARF19-mediated transcriptionMediator is a multiprotein complex that integrates the signals from transcription factors binding to the promoter and transmits them to achieve gene transcription. The subunits of Mediator complex reside in four modules: the head, middle, tail, and dissociable CDK8 kinase module (CKM). The head, middle, and tail modules form the core Mediator complex, and the association of CKM can modify the function of Mediator in transcription. Here, we show genetic and biochemical evidence that CKM-associated Mediator transmits auxin-dependent transcriptional repression in lateral root (LR) formation. The AUXIN/INDOLE 3-ACETIC ACID 14 (Aux/IAA14) transcriptional repressor inhibits the transcriptional activity of its binding partners AUXIN RESPONSE FACTOR 7 (ARF7) and ARF19 by making a complex with the CKM-associated Mediator. In addition, TOPLESS (TPL), a transcriptional corepressor, forms a bridge between IAA14 and the CKM component MED13 through the physical interaction. ChIP assays show that auxin induces the dissociation of MED13 but not the tail module component MED25 from the ARF7 binding region upstream of its target gene. These findings indicate that auxin-induced degradation of IAA14 changes the module composition of Mediator interacting with ARF7 and ARF19 in the upstream region of their target genes involved in LR formation. We suggest that this regulation leads to a quick switch of signal transmission from ARFs to target gene expression in response to auxin.National Academy of Sciences, 2016年05月23日, 英語
- The Japanese Society of Plant Morphology, 2016年04月, Plant Morphology, 28(1) (1), 23 - 27, 日本語[査読有り][招待有り]記事・総説・解説・論説等(学術雑誌)
- 2016年03月11日, 日本植物生理学会年会要旨集, 57th, 178, 英語Evolutional analysis of phosphate transport mechanism in plant cells.
- 2016年, 日本土壌肥料学会講演要旨集, 62シロイヌナズナのリン応答におけるBT遺伝子の機能の解析
- 2016年, BSJ-Review, 7, 269 - 278, 日本語植物の進化発生研究における順遺伝学的解析[査読有り][招待有り]記事・総説・解説・論説等(その他)
- 2016年, BSJ-Review, 7, 220 - 229, 日本語シロイヌナズナにおける側根形成の制御機構[査読有り][招待有り]記事・総説・解説・論説等(その他)
- 植物化学調節学会, 2015年10月01日, 植物化学調節学会研究発表記録集, 50, 94 - 94, 日本語P076 ジャスモン酸はAux/IAAの分解を部位特異的に抑制し側根形成を阻害する(ポスター発表,植物化学調節学会第50回大会)
- 2015年09月01日, 日本植物学会大会研究発表記録, 79th, 223, 日本語ゼニゴケの杯状体形成を制御するGCAM1の機能解析
- 2015年03月09日, 日本植物生理学会年会要旨集, 56th, 249, 日本語シロイヌナズナ側根形成におけるオーキシン依存的な転写制御機構の解析
- 2015年03月09日, 日本植物生理学会年会要旨集, 56th, 313, 日本語R2R3‐MYB型転写因子GCAM1は苔類ゼニゴケの杯状体形成を制御する
- 2015年, 日本植物生理学会年会要旨集, 56th落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析
- 2015年, 日本植物学会大会研究発表記録, 79thポプラにおけるリン酸転流経路の季節変化
- 2014年09月01日, 日本植物学会大会研究発表記録, 78th, 167, 日本語ゼニゴケの栄養繁殖器官で発現するR2R3型MYB遺伝子の単離と機能解析
- 2014年, 日本植物生理学会年会要旨集, 55thシロイヌナズナ根端における33P局在とリン酸応答性遺伝子の発現誘導
- 2014年, 日本植物生理学会年会要旨集, 55th植物におけるリン環境認識とリン利用の新しい視点
- 2013年03月14日, 日本植物生理学会年会要旨集, 54th, 118, 日本語シロイヌナズナ側根形成におけるオーキシン依存的な転写制御機構の解析
- 2013年03月, Plant and Cell Physiology, 54(3) (3), 295 - 301, 英語書評論文,書評,文献紹介等
- 2013年, 植物微生物研究会研究交流会講演要旨集, 23rd根粒菌感染を負に制御するというNIN転写因子の新たな機能的側面
- 2013年, 日本植物生理学会年会要旨集, 54thリン酸増加に対するシロイヌナズナの根の応答機構
- Lateral root (LR) formation is one of the auxin-mediated developmental processes in vascular plants. Physiological and genetic studies using Arabidopsis thaliana and other plant species have revealed the role of auxin biosynthesis, transport and signaling in LR initiation and primordium development. These studies have shown that auxin-regulated transcription through Auxin/Indole-3-Acetic Acid (Aux/IAA) and AUXIN RESPONSE FACTOR (ARF) protein families is important for the developmental steps during LR formation : 1) the IAA28-ARFs module regulates LR founder cell specification, 2) the SOLITARY-ROOT(SLR)/IAA14-ARF7-ARF19 module regulates nuclear migration and asymmetric cell divisions of the LR founder cells for LR initiation, 3) the BODENLOS/IAA12-MONOPTEROS/ARF5 module also regulates LR initiation and organogenesis, and 4) the SHY2/IAA3-ARFs module regulates LR primordium development and LR emergence. This review summarizes recent findings on auxin-mediated LR formation, focusing on the molecular mechanisms of SLR/IAA14-ARF7-ARF19 module-dependent LR initiation.一般社団法人植物化学調節学会, 2012年12月, 植物の生長調節, 47(2) (2), 93 - 100, 日本語[招待有り]記事・総説・解説・論説等(学術雑誌)
- シロイヌナズナにおける側根発生の遺伝的制御機構維管束植物の地下部を構成する根系は、地上部を支持し、土壌から水分や養分を吸収する上で重要な役割を果たす。根系は発芽後伸長する主根と、主根から形成される側根、地上部から形成される不定根によって構築される。古くから植物ホルモンのオーキシンが側根形成や不定根形成に重要な役割を果たすことが知られていたが、その分子機構は未だに解明されていない。我々の研究グループは、オーキシンを介した側根形成の分子機構に注目して、これまで側根形成能に欠損をもつシロイヌナズナslr(solitary-root)変異体、およびarf7 arf19二重変異体の解析から、オーキシン応答転写因子ARF7、ARF19とAux/IAAタンパク質SLR/IAA14との相互作用を介した遺伝子発現制御が側根形成開始に重要なことを明らかにしてきた。そして、マイクロアレイ解析などからARF7、ARF19の標的遺伝子として植物に特有なLBD(Lateral Organ Boundaries-domain)/ASL(AS2-Like)ファミリーに属するLBD16/ASL18とLBD29/ASL16を同定し、これらが側根形成開始で機能することを明らかにした。現在、側根形成におけるオーキシン誘導性LBD/ASLタンパク質群の機能と、LBD16を介した分子カスケードの解明を目指して研究を進めている。 側根発生は、分裂組織形成や器官形成、植物ホルモンのシグナル伝達、細胞運命の決定機構、細胞周期制御といった植物科学における重要な問題を研究する上で良いモデルといえる。側根発生の分子機構の解明は、他の植物種の側根発生機構の理解に役立つだけでなく、植物界における根系の進化のしくみを解く手がかりとなる。また、将来、さまざまな環境ストレス下において作物の収量を維持・増加させるような植物を作出する際に、根系パターンの改変技術が有用となると考えられる。Institute of Radiation Breeding, Ministry of Agriculture & Forestry, 2011年03月, Gamma field symposia, (48) (48), 27 - 33, 英語
- 2010年, 第51回日本植物生理学会年会,熊本大学黒髪北キャンパス,2010年3月18日., 日本語[査読有り]
- 2009年, 代謝調節機構解析に基づく細胞機能制御基盤技術研究領域 第2回公開シンポジウム講演要旨集 平成21年, 67, 日本語“代謝調節機構解析に基づく細胞機能制御基盤技術”研究領域 植物細胞インタクト液胞を用いたポストゲノム解析と液胞膜エンジニアリングによる液胞代謝動態の解析
- 植物インタクト液胞のポストゲノム解析植物細胞において液胞は細胞体積の約8割を占めるオルガネラであり、膨圧形成、無機イオンや代謝産物の蓄積、不要となったタンパク質の分解など細胞内恒常性の維持に重要な役割を果たしている。その機能から液胞内にはさまざまな物質が存在すると考えられる。我々は、植物細胞より液胞をインタクトな状態で単離し、CE-MSとFT-ICR-MSを用いて、液胞に含まれる物質について網羅的な解析と物質の同定を進めてきている。その結果、これまで液胞には存在しないと思われていた有機リン酸化合物の存在が示された。代謝物質の解析とともに、シロイヌナズナ培養細胞(Deep株)より単離した液胞を用い、液胞膜と液胞内のプロテオーム解析も同時に進め、液胞内で同定されたタンパク質と代謝産物との関係について考察した。また、液胞膜のプロテオーム解析より同定された機能未知膜タンパク質について、過剰発現させた細胞を作製し、形質転換細胞より単離した液胞内に存在する物質について、野生型の液胞と比較解析を行った結果についても報告する。日本植物生理学会, 2009年, 日本植物生理学会年会およびシンポジウム 講演要旨集, 2009(0) (0), 305 - 305
- 2009年, 日本植物学会第73回大会,山形大学小白川キャンパス,2009年9月18日., 日本語シロイヌナズナ根系のリン酸吸収機構:リンと鉄の相互作用[査読有り]
- 共立出版, 2007年05月, 蛋白質核酸酵素, 52(6) (6), 625 - 632,504, 日本語リン環境と植物 (植物における環境と生物ストレスに対する応答) -- (環境ストレス応答の分子機構 光・栄養環境)
- 2007年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 48, S82 - S82, 英語Analysis of the rlr50 mutant that shows reduced lateral root formation in Arabidopsis thaliana.研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2007年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 48, S81 - S81, 英語Characterization of the Arabidopsis crane mutant, which is defective in lateral root formation研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2007年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 48, S220 - S220, 英語Suppression of membrane lipid alteration upon phosphate starvation in auxin signaling mutants slr and arf7arf19研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2007年, 蛋白質 核酸 酵素, 52(6):625-632, 日本語リン環境と植物[査読有り]記事・総説・解説・論説等(学術雑誌)
- 2007年, 日本植物生理学会年会およびシンポジウム 講演要旨集, 48(0) (0), S22 - S22, 英語シロイヌナズナ散房花序様変異体corymbosa1の分子遺伝学的解析研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2006年12月01日, Journal of plant research, 119, 137 - 137, 英語THE ANALYSIS OF SUBSTANCE DELIVERLIES FROM THE XYLEM VESSELS IN ARABIDOPSIS LEAVES
- 2006年, 日本植物生理学会年会要旨集, 47th器官形成に関わるシロイヌナズナMACCHI-BOU遺伝子の解析
- 2006年, 日本植物生理学会年会要旨集, 47th側生器官の発生を調節するシロイヌナズナPUCHI遺伝子の解析
- 2006年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 47, S74 - S74, 英語The MACCHI-BOU genes are involved in Arabidopsis organogenesis研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2006年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 47, S75 - S75, 英語PUCHI is required for proper development of lateral organs in Arabidopsis研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2006年, 日本植物生理学会年会およびシンポジウム 講演要旨集, 47(0) (0), S179 - S179, 英語研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2005年, 日本植物生理学会年会要旨集, 46thシロイヌナズナのシュートおよび根において側生器官の発生を調節するPUCHI遺伝子の解析
- 2005年, 日本分子生物学会年会講演要旨集, 28thシロイヌナズナにおける器官形成機構の解析
- 2005年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 46, S197 - S197, 英語Analysis of genes regulated by SSL2/CHR6, a chromatin remodeling factor, in Arabidopsis lateral root formation研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2005年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 46, S46 - S46, 英語PUCHI is required for proper development of lateral organs both in the shoot and root in Arabidopsis研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2005年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 46, S197 - S197, 英語Analysis of ARF7- and ARF19-regulated genes in Arabidopsis lateral root formation研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2005年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 46, S77 - S77, 英語The mutated gene responsible for agravitropic growth of the weeping morning glory, shidare-asagao研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2004年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 45, S40 - S40, 英語Analysis of transgenic plants expressing Arabidopsis SLR/IAA14 under tissue-specific promoters研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2004年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 45, S17 - S17, 英語Auxin-regulated lateral root formation in Arabidopsis研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2004年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 45, S39 - S39, 英語Global analysis of genes involved in auxin-regulated root morphogenesis in Arabidopsis研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2003年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 44, S182 - S182, 英語Molecular genetic analysis of suppressor mutants of the solitary-root/iaa14 that is defective in lateral root formation in Arabidopsis研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 2002年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 43, S135 - S135, 英語Isolation and characterization of suppressor mutants of the auxin-resistant mutant solitaty-root/iaa14 in Arabidopsis研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 養賢堂, 2001年06月, 農業および園芸, 76(6) (6), 707 - 714, 日本語植物の根に関する諸問題(95)側根形成の分子機構
- Japanese Society of Plant Physiologists, 2001年, Plant and cell physiology, 42, s4, 英語Analysis of the SLR/IAA 14 gene involved in root development in Arabidopsis :
- 1999年06月, DEVELOPMENTAL BIOLOGY, 210(1) (1), 205 - 205, 英語Radial pattern formation in plants研究発表ペーパー・要旨(国際会議)
- 1999年03月, Plant and cell physiology, 40, s45 - s45, 英語RELATION BETWEEN HYPOCOTYL CELL ELONGATION AND SOME EARLY AUXIN INDUCIBLE GENES IN ARABIDOPSIS
- 1999年03月, Plant and cell physiology, 40, s13 - s13, 英語AMYLOPLASTS DISTRIBUTION AND MOVEMENT IN SHOOT ENDODERMIS OF A REDUCED SHOOT GRAVITROPIC MUTANT, zig(sgr4), IN ARABIDOPSIS
- 1998年12月01日, 日本分子生物学会年会プログラム・講演要旨集, 21, 636 - 636, 日本語シロイヌナズナのオーキシンシグナル伝達に関わるSLR(SOLITARY-ROOT)の分子遺伝学的解析
- 1998年05月, Plant and cell physiology, 39, S70 - S70, 英語SLR, a novel genetic locus involved in auxin signaling in Arabidopsis thaliana
- 1998年05月, Plant and cell physiology, 39, S59 - S59, 英語SGR2 (SHOOT GRAVITROPISM 2) gene relates to the embryogenesis in Arabidopsis thaliana
- 1998年, 日本植物生理学会年会要旨集, 38th(1998)SGR2(SHOOT GRAVITROPISM 2)遺伝子ははい発生にも関与する
- 1997年09月, 宇宙生物科学 = Biological sciences in space, 11(3) (3), 242 - 243, 日本語シロイヌナズナのシュートの重力感受細胞の分化
- 1997年03月, Plant and cell physiology, 38, s70, 英語The endodermis is essential for the gravitropic responses of hypocotyls and inflorescence stems in Arabidopsis thaliana
- 1997年03月, Plant and cell physiology, 38, s5, 英語Molecular genetic analysis of organ separation and endodermis differentiation in Arabidopsis thaliana
- 1997年, 日本植物学会大会研究発表記録, 61st高等植物の重力感受について シロイヌナズナを用いた分子遺伝学的アプローチ
- 1997年, 日本分子生物学会年会プログラム・講演要旨集, 20thシロイヌナズナにおけるシュートの重力屈性変異体sgr2の解析
- 1997年, 日本分子生物学会年会プログラム・講演要旨集, 20thシロイヌナズナのシュートの重力屈性反応におけるSGR1/SCRとSGR7/SHR遺伝子の機能
- 1996年08月01日, 日本分子生物学会年会プログラム・講演要旨集, 19, 840 - 840, 日本語シロイヌナズナにおけるシュートの重力屈性異常突然変異体shoot gravitropism1の解析
- 1996年03月, Plant and cell physiology, 37, 124 - 124, 英語NOVEL MUTANTS OF ARABIDOPSIS THALIANA WITH ALTERED SHOOT GRAVITROPIC RESPONSE
- 1995年09月, 宇宙生物科学 = Biological sciences in space, 9(3) (3), 182 - 183, 日本語シロイヌナズナ花茎の重力屈性反応異常突然変異(sgr)群についての解析
- 1995年03月, Plant and cell physiology, 36, S59, 英語Analysis of Shoot Gravitropism of thePhytochrome B Deficient Mutants in Arabidopsis thaliana
- 分担執筆, 「栄養成長期の発生・形態形成」, 丸善出版, 2022年01月遺伝学の百科事典 ~継承と多様性の源~
- 分担執筆, 1-04 植物の成長と動き, NHK、NHKプロモーション、朝日出版社, 2021年07月特別展「植物 地球を支える仲間たち」公式ガイドブック
- 放送大学教育振興会, 2021年03月三訂版「植物の科学」
- 共編者(共編著者), 化学同人, 2019年04月, 日本語, ISBN: 9784759819977植物生理学 第2版
- 共訳, 講談社, 2017年02月, 日本語, ISBN: 9784061538962テイツ/ザイガー 植物生理学・発生学 原著第6版教科書・概説・概論
- 分担執筆, 「オーキシン」「根」「根の形態形成」「茎の形態形成」「側方器官」を執筆, 丸善出版, 2016年06月, 日本語, ISBN: 9784621300381植物学の百科事典事典・辞書
- 共著, 3.成長・発生(1)〜植物の体制と胚発生〜、5.成長・発生(3)〜根〜, 放送大学教育振興会, 2015年03月, 日本語改訂版「植物の科学」学術書
- 共訳, 東京化学同人, 2014年09月, 日本語, 「第15章 遺伝子からタンパク質へ」の翻訳を行った。, ISBN: 9784807908523ケイン生物学 第5版教科書・概説・概論
- 共著, 培風館, 2014年, 日本語『光合成生物の進化と生命科学』 5章 陸上環境への適応と、環境シグナルの受容学術書
- 単著, 共立出版, 2010年05月, 日本語植物のシグナル伝達 分子と応答学術書
- 単著, 朝日選書, 2007年05月, 日本語根—隠れた半分—「植物の生存戦略」一般書・啓蒙書
- 共著, 共立出版, 2007年, 日本語植物における環境と生物ストレスに対する応答(共著)、リン環境と植物(三村徹郎、大西美輪、深城英弘)学術書
- 共著, エヌ・ティー・エス, 2006年07月, 日本語プラントミメティックス〜植物に学ぶ〜学術書
- 共著, 秀潤社, 2004年, 日本語新版 植物ホルモンのシグナル伝達、植物細胞工学シリーズ20(共著)、オーキシンのシグナル伝達(深城英弘)学術書
- 共著, 養賢堂, 2001年, 日本語農業および園芸76、植物の根に関する諸問題 -側根形成の分子機構-(田坂昌生、多米田悟司、深城英弘)学術書
- 共著, 朝日新聞社, 2001年, 日本語植物学がわかる、アエラムック71(共著)、植物の重力感知システム(深城英弘)一般書・啓蒙書
- 共著, 秀潤社, 2000年, 日本語新版 植物の形を決める分子機構、植物細胞工学シリーズ12(共著)、重力屈性の遺伝的制御(深城英弘、田坂昌生)学術書
- 共著, 東北大学遺伝生態研究センター, 2000年, 日本語宇宙植物科学の最前線、IGEシリーズ28(共著)、重力が植物の成長におよぼす影響に関する分子遺伝学的アプローチ(田坂昌生、丸橋弘治、深城英弘)学術書
- 単著, JT生命誌研究館, 1998年, 日本語Biohistory 6、重力を感じる細胞(深城英弘)その他
- 第67回日本植物生理学会年会, 2026年03月, 日本語シロイヌナズナ sur2 変異体において,単一遺伝子変異によって細胞外オーキシンを介したアレロパシーが誘導されるポスター発表
- 第67回日本植物生理学会年会, 2026年03月, 日本語シロイヌナズナの窒素誘導性ペプチドLOHN1 による側根形成の抑制制御機構ポスター発表
- 第67回日本植物生理学会年会, 2026年03月, 日本語進化的に保存されたシトクロムb5 様ヘム結合タンパク質RLF は陸上植物における器官発生を制御するポスター発表
- 第67回日本植物生理学会年会, 2026年03月, 日本語シロイヌナズナ属において季節温度応答性を示す新規遺伝子STTP の機能解析口頭発表(一般)
- 第67回日本植物生理学会年会, 2026年03月, 日本語ゼニゴケにおけるROP GDP 解離阻害因子の機能解析口頭発表(一般)
- 近畿植物学会第14回講演会, 2025年11月⾮維管束植物ゼニゴケのリン吸収機構におけるリン輸送体 PHT1 ファミリーの機能解析ポスター発表
- 近畿植物学会第14回講演会, 2025年11月, 日本語進化的に保存されたシトクロムb5 様ヘム結合タンパク質 RLF はゼニゴケの器官発⽣を制御する
- 日本植物学会第89回大会, 2025年09月, 日本語シロイヌナズナLOHN1 ペプチドは高窒素環境におけるシステミックな側根抑制制御に関わるポスター発表
- 日本植物学会第89回大会, 2025年09月, 日本語シロイヌナズナの分裂組織の形成・維持とDNA 損傷応答におけるAMB1 遺伝子の機能解析ポスター発表
- 日本植物学会第89回大会, 2025年09月, 日本語非維管束植物ゼニゴケのリン吸収機構におけるリン輸送体PHT1 ファミリーの機能解析ポスター発表
- 日本植物学会第89回大会, 2025年09月, 日本語進化的に保存されたシトクロム b5 様ヘム結合タンパク質 RLF はゼニゴケの器官発生を制御する口頭発表(一般)
- 日本植物学会第89回大会, 2025年09月, 日本語R2R3-MYB 転写因子SHOT GLASS によるゼニゴケ器官発生制御メカニズム口頭発表(一般)
- 日本植物学会第89回大会, 2025年09月, 日本語ゼニゴケの形態形成における ROP-GDP 解離阻害因子の機能解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第89回大会, 2025年09月, 日本語RNA m6A 修飾を介したDNA 損傷応答と分裂組織維持の制御機構口頭発表(一般)
- 日本植物学会第89回大会, 2025年09月, 日本語維管束幹細胞の分化制御におけるジャスモン酸の役割の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第89回大会, 2025年09月, 日本語カルスからのシュート再生におけるオーキシン誘導性 LBD 転写因子群の機能口頭発表(一般)
- 日本植物学会第89回大会, 2025年09月, 日本語MpHYPNOS によるゼニゴケ無性芽の休眠促進メカニズムの解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第89回大会, 2025年09月, 日本語シロイヌナズナ近縁種の野外トランスクリプトームから見出した季節性温度応答遺伝子 STTP の機能口頭発表(一般)
- 第66回日本植物生理学会年会, 2025年03月, 日本語進化的に保存されたシトクロムb5 様ヘム結合タンパク質であるRLF はゼニゴケにおける適切な器官発生に必要である口頭発表(一般)
- 第66回日本植物生理学会年会, 2025年03月, 日本語, 国内会議CYP83B1 変異体は植物体外に IAA 放出することでアレロパシー効果を誘発するポスター発表
- 第66回日本植物生理学会年会, 2025年03月, 日本語, 国内会議ゼニゴケ葉状体の同化糸に関する形態学的・生理学的研究ポスター発表
- 第66回日本植物生理学会年会, 2025年03月, 日本語, 国内会議シロイヌナズナ LOHN1 は全身性の高窒素応答シグナルに応じてオーキシン輸送を制御し側根間隔を制御する口頭発表(一般)
- 第66回日本植物生理学会年会, 2025年03月, 日本語, 国内会議RNA m6A 修飾を介した DNA 損傷応答と分裂組織維持の制御機構口頭発表(一般)
- 第66回日本植物生理学会年会, 2025年03月, 日本語, 国内会議一過性のサイトカイニン応答極大が肥大成長にむけて両面性維管束幹細胞を完成させる口頭発表(一般)
- 第66回日本植物生理学会年会, 2025年03月, 日本語, 国内会議オーキシン誘導性 LBD 転写因子群はカルスからのシュート再生を抑制する口頭発表(一般)
- 第66回日本植物生理学会年会, 2025年03月, 日本語, 国内会議ゼニゴケの R2R3-MYB 転写因子 SHOT GLASS は栄養繁殖器官および有性生殖器官の形成を促進する口頭発表(一般)
- 第66回日本植物生理学会年会, 2025年03月, 日本語, 国内会議コケ植物ゼニゴケの植物体切断片からの再生におけるR2R3-MYB 型転写因子の機能口頭発表(一般)
- 第47回日本分子生物学会年会, 2024年11月, 日本語, 国内会議植物の分裂組織とDNA損傷修復におけるRNA m6A修飾の機能解析ポスター発表
- 近畿植物学会第13回講演会, 2024年11月, 日本語, 国内会議Evolutionary conserved RLF, a plant cytochrome b5-like heme-binding protein, is essential for proper organ development in Marchantia polymorpha口頭発表(一般)
- 近畿植物学会第13回講演会, 2024年11月, 日本語, 国内会議植物の分裂組織における RNA m6A 修飾の機能解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第88回大会, 2024年09月, 日本語, 国内会議ジャスモン酸による維管束幹細胞分化制御機構の解析ポスター発表
- 日本植物学会第88回大会, 2024年09月, 日本語, 国内会議二次成長の開始における維管束組織系の幹細胞活性化機構ポスター発表
- 日本植物学会第88回大会, 2024年09月, 英語, 国内会議Vitamin A controls auxin to regulate root architecture in Arabidopsisポスター発表
- 日本植物学会第88回大会, 2024年09月, 日本語, 国内会議pre-mRNA スプライシングが駆動する光合成活性を反映した側根形態制御ポスター発表
- 日本植物学会第88回大会, 2024年09月, 日本語, 国内会議ゼニゴケ葉状体の形態形成におけるROP-GDP 解離阻害因子の機能解析ポスター発表
- 日本植物学会第88回大会, 2024年09月, 日本語, 国内会議高窒素環境における側根間隔の制御に関わるシロイヌナズナsORF, LOHN1 の機能解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第88回大会, 2024年09月, 日本語, 国内会議根とシュートの発生に異常を示すシロイヌナズナ amb2 変異体の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第88回大会, 2024年09月, 日本語, 国内会議メリステム維持に異常を示すシロイヌナズナ aberrant meristem behavior1変異体における DNA損傷応答の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第88回大会, 2024年09月, 日本語, 国内会議ゼニゴケのシトクロム b5 様ヘム結合タンパク質 MpRLF は栄養成長と生殖成長における適切な発生に必要である口頭発表(一般)
- 日本植物学会第88回大会, 2024年09月, 日本語, 国内会議非維管束植物ゼニゴケのリン吸収における仮根の役割について口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月, 英語Uncovering the link between RNA editing and polyadenylation, two mysterious modifications of plant mitochondrial mRNA[招待有り]シンポジウム・ワークショップパネル(指名)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月維管束細胞分化を制御する糖シグナル伝達機構の解析ポスター発表
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月根系パターンに異常を示すシロイヌナズナbird feather 変異体の解析ポスター発表
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月根の形態形成に異常を示す新たなシロイヌナズナ変異体の探索と解析ポスター発表
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月N6-メチルアデノシン(m6A)は植物のDNA 損傷修復に必要か?ポスター発表
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月維管束細胞の分化制御における概日時計関連遺伝子GI の機能解析ポスター発表
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月スクロースシグナリングは細胞分化を阻害することで維管束形成層の維持にはたらくポスター発表
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月非維管束植物ゼニゴケにおける液胞膜リン酸輸送体VPT の機能解析ポスター発表
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月GCAM1 の標的遺伝子GROM はゼニゴケの杯状体形成だけでなく生殖器官の発生も制御する口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月コケ植物ゼニゴケのリン吸収における仮根の機能について口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月シャジクモ(Chara braunii)細胞膜Na +共役型リン酸輸送体分子の機能解析口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月ゼニゴケのシトクロムb5 様ヘム結合タンパク質MpRLF は栄養成長と生殖成長における適切な発生に必要である口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月経時的遺伝子発現変化から理解する苔類ゼニゴケの胞子発芽過程口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月bHLH 型転写因子MpHYPNOS はゼニゴケ無性芽の休眠を制御する口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月シロイヌナズナSUR2/CYP83B1 遺伝子の変異アリルfsp1 は側根創始細胞形成の側方抑制に働くTOLS2 ペプチドに対して低感受性を示す口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月Lateral Root Primordium Formation by Extended Auxin Signaling in the Arabidopsis Root System口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月オーキシン応答を安定に維持する場の選抜によるシロイヌナズナ側根間隔の制御口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月維管束幹細胞の確立に関する新たな制御因子の探索と解析口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月側根形成に異常を示すシロイヌナズナlbd 多重変異体を用いたカルス形成・シュート再生機構の解析口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月メリステム維持に異常を示すシロイヌナズナaberrant meristem behavior1 変異体におけるDNA 損傷応答の解析口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月一過的サイトカイニン応答は二次成長開始のプライミングシグナルとして機能する口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月高窒素に応答した側根間隔の制御に関わるシロイヌナズナsORF, LOHN1 の機能解析口頭発表(一般)
- 第65回日本植物生理学会年会, 2024年03月ゼニゴケCHLH 遺伝子の変異はPPO 阻害除草剤耐性を付与する口頭発表(一般)
- 近畿植物学会第12回講演会, 2023年12月ゼニゴケのシトクロムb5様ヘム結合タンパク質MpRLFは栄養成長と生殖成長における適切な発生に必要である口頭発表(一般)
- 近畿植物学会第12回講演会, 2023年12月植物のメリステム形成・維持の仕組み解明に向けて[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- 第46回日本分子生物学会年会, 2023年12月植物において光合成活性はpre-mRNAスプライシング制御を介して側根形態に反映されるポスター発表
- 第46回日本分子生物学会年会, 2023年12月植物ミトコンドリアmRNAのポリA付加はシトクロムc成熟因子ccb3/ccmCのmRNA編集抑制によ りシトクロム呼吸経路を負に制御するポスター発表
- 第46回日本分子生物学会年会, 2023年12月N6-メチルアデノシン(m6A)は植物のDNA損傷修復に必要か?ポスター発表
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月根系パターンに異常を示すシロイヌナズナbird feather 変異体の解析ポスター発表
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月根の形態形成に異常を示す新たなシロイヌナズナ変異体の探索と解析ポスター発表
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月非維管束植物ゼニゴケにおける液胞膜リン酸輸送体VPT の機能解析ポスター発表
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月ゼニゴケの器官形成を制御する ROP シグナリング口頭発表(一般)
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月植物の器官発生におけるシトクロムb5様ヘム結合タンパク質 RLF の機能解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月サイトカイニンは形成層幹細胞の活性化シグナルとして機能する口頭発表(一般)
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月側根形成に異常を示すシロイヌナズナlbd 多重変異体を用いたカルス形成・シュート再生機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月pre-mRNA スプライシング制御を介した光合成活性による側根形態制御口頭発表(一般)
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月維管束細胞の分化制御における概日時計関連遺伝子 GIの機能解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月スクロースシグナルによる維管束幹細胞制御機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月維管束幹細胞の確立に関する新たな制御因子の探索と分子機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月ゼニゴケ CHLH 遺伝子の変異は PPO 阻害除草剤耐性を付与する口頭発表(一般)
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月ミトコンドリア遺伝子 ccb3/ccmC のポリ A 付加を介した mRNA 編集抑制がシトクロムc 経路を制御する口頭発表(一般)
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月MpHYPNOS は ABA 依存的および非依存的に無性芽の休眠を制御する口頭発表(一般)
- 日本植物学会第87回大会, 2023年09月植物の反射光に潜む情報を解き明かす多波長偏光イメージング装置P-MIRU の開発[招待有り]シンポジウム・ワークショップパネル(指名)
- 第33回国際シロイヌナズナ研究会議, 2023年06月SUPERROOT2-dependent Fine-tuning of Local Auxin Distribution for Arabidopsis Lateral Root Formationポスター発表
- 第33回国際シロイヌナズナ研究会議, 2023年06月, 英語Functional Analysis of RLF, a Cytochrome b5-Like Heme Binding Protein, in Plant Organ Developmentポスター発表
- 第33回国際シロイヌナズナ研究会議, 2023年06月Role of pre-mRNA splicing in lateral root morphogenesis regulated by plastid signalポスター発表
- 第33回国際シロイヌナズナ研究会議, 2023年06月Dissecting the role of miR160-dependent regulation of ARF gene expression in root cap differentiationポスター発表
- 第33回国際シロイヌナズナ研究会議, 2023年06月Interaction between polyadenylation and C-to-U editing of mitochondrial mRNA involved in cytochrome c maturationポスター発表
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月根とシュートの成長・発生に異常を示すシロイヌナズナamb 変異体におけるDNA 損傷応答の解析ポスター発表
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月イチョウを用いた維管束細胞分化誘導システムの確立ポスター発表
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月GCAM1 の標的遺伝子GROM はゼニゴケの杯状体形成に必須であるポスター発表
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月SUR2 はシロイヌナズナにおいて側根形成のための局所的なオーキシン分布を微調整するポスター発表
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月シロイヌナズナの根におけるARF10とARF16 の発現領域限局機構と根冠分化への寄与口頭発表(一般)
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月植物の器官発生におけるシトクロムb5 様ヘム結合タンパク質RLF の機能解析口頭発表(一般)
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月Dimorphism of LR growth of shy2/iaa3 and wt regulated by auxin口頭発表(一般)
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月地上部ヘムシグナルはpre-mRNA スプライシング制御を介して側根形態を制御する口頭発表(一般)
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月シロイヌナズナの側根間隔は二段階で調節される口頭発表(一般)
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月An activity of phytoene desaturase negatively regulates auxin biosynthesis and signaling口頭発表(一般)
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月ROP シグナル伝達系によるゼニゴケ形態形成制御メカニズム口頭発表(一般)
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月MpBZR3 はゼニゴケの配偶子器発生を制御する口頭発表(一般)
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月MpHYPNOS によるゼニゴケ無性芽の休眠制御機構口頭発表(一般)
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月非維管束植物ゼニゴケのリン応答におけるMYBCC-SPX モジュールの機能口頭発表(一般)
- 第64回日本植物生理学会年会, 2023年03月植物ミトコンドリアのシトクロムc成熟に関わるmRNA 編集とポリA 付加の関係性について口頭発表(一般)
- 近畿植物学会第11回講演会, 2022年11月糖シグナルによる維管束幹細胞制御機構の解析口頭発表(一般)
- 近畿植物学会第11回講演会, 2022年11月器官発生におけるヘム結合タンパク質RLFの機能解析口頭発表(一般)
- 植物化学調節学会第57回大会, 2022年11月維管束幹細胞の分裂と分化を制御する一過的サイトカイニン応答
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月An activity of phytoene desaturase negatively regulates auxin biosynthesis and signaling口頭発表(一般)
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月Discussion on the mechanism of selective growth of roots in shy2-101 by fluorescence photography口頭発表(一般)
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月根とシュートの成長・発生に異常を示すシロイヌナズナamb変異体におけるDNA損傷応答の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月植物ミミトコンドリアにおけるシトクロムc成熟に関わるmRNA編集とポリA付加の関係性について口頭発表(一般)
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月ヘムシグナルによる側根形態制御にはpre-mRNAスプライシング制御が介在する口頭発表(一般)
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月ゼニゴケのヘム結合タンパク質MpRLFは適切な葉状体と杯状体の形成に必要である口頭発表(一般)
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月シクラメン属のユニークな成長運動:花柄コイリングの機構解明に向けて口頭発表(一般)
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月ゼニゴケ無性芽の休眠を促進するMpHYPNOSの機能口頭発表(一般)
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月薬用植物ニチニチソウの種子発芽過程におけるアルカロイド代謝開始過程の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月維管束幹細胞の分裂と分化を制御するサイトカイニンの機能と動態口頭発表(一般)
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月PPO 阻害除草剤耐性ゼニゴケの単離と解析ポスター発表
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月糖シグナルによる維管束幹細胞制御機構の解析ポスター発表
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月シロイヌナズナ側根形成変異体を用いたカルス形成機構の解析ポスター発表
- 日本植物学会第86回大会, 2022年09月コケ植物ゼニゴケのリン欠乏応答を制御するMYBCC 型転写因子の機能解析ポスター発表
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 英語Involvement of phytoene desaturase activity and auxin signaling for root-cut response in Arabidopsis thaliana口頭発表(一般)
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 日本語苔類ゼニゴケの杯状体形成におけるsingle-MYB 遺伝子GROM の機能解析口頭発表(一般)
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 英語Auxin response of exaggerated root cut response in aux/iaa3/shy2-101 dominant mutant口頭発表(一般)
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 日本語側根形成におけるシトクロムb5 様ヘム/ ステロイド結合タンパク質 RLF の機能解析口頭発表(一般)
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 日本語内生オーキシン量を増加させるfsp1/sur2 変異がfwr/gnom 変異体の側根形成能を回復させる口頭発表(一般)
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 日本語維管束幹細胞の運命制御におけるサイトカイニンの機能解析口頭発表(一般)
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 日本語ゼニゴケ無性芽におけるMpHYPNOSを介した休眠制御口頭発表(一般)
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 日本語非維管束植物ゼニゴケのリン欠乏応答におけるMYBCC-SPX モジュールの機能ポスター発表
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 日本語シロイヌナズナ根系構築におけるイネDECUSSATE 相同遺伝子WAD1 およびWAD2 の機能解析ポスター発表
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 日本語カリウムイオン排出チャネルGORK を介した根の成長・発生制御機構の解析ポスター発表
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 日本語シロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2 ペプチドに対する応答異常変異体の探索と解析ポスター発表
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 日本語根とシュートの成長・発生に異常を示すシロイヌナズナ新規変異体L-11 #7 の解析ポスター発表
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 日本語ゼニゴケ胞子における非対称分裂メカニズムポスター発表
- 第63回日本植物生理学会年会, 2022年03月, 日本語薬用植物ニチニチソウの種子発芽過程におけるアルカロイド代謝開始機構の解析ポスター発表
- 近畿植物学会第10回講演会, 2021年11月側根形成におけるシトクロム b5 様ヘム/ステロイド結合タンパク質RLFの機能解析口頭発表(一般)
- 近畿植物学会第10回講演会, 2021年11月カリウムイオン排出チャネル GORK を介した根の成⾧・発生制御機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月ゼニゴケ器官形成におけるR2R3-MYB 転写因子 SHOTGLASS の機能
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月カリウムイオン排出チャネル GORKを介した根の成長・発生制御機構の解析
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月ゼニゴケ葉状体の形態形成におけるMpREN の機能解析
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月シロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2 ペプチドに対する応答異常変異体の探索と解析
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月シロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2 ペプチド低感受性変異体 toti1 の解析
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月側根形成におけるシトクロムb5 様ヘム/ ステロイド結合タンパク質 RLF の機能解析
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月根系構築に異常を示すシロイヌナズナ新規変異体の解析
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月ゼニゴケの葉状体再生におけるGCAM1 および GC1L の機能
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月ゼニゴケ無性芽におけるMpHYPNOSを介した休眠制御
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月基部陸上植物ゼニゴケのリン欠乏応答におけるMpMYBCC-MpSPX モジュールの機能
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月基部陸上植物ゼニゴケにおけるリンの吸収・分配・貯蔵のメカニズム
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月陸上植物に保存されたオーキシン応答遺伝子 WIP のゼニゴケにおける機能解析
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月位置情報による維管束幹細胞の運命制御
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月長時間発光イメージングによる根の遺伝子発現振動の解析
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月発光レポーター遺伝子を用いた側根プレパターニング変異体の単離と解析
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月側根形成能が顕著に低下するシロイヌナズナ変異体 fwr とその抑圧変異体 fsp1 の解析
- 日本植物学会第85回大会, 2021年09月プラスチドシグナル依存的な側根形成制御におけるpre-mRNA スプライシングの役割
- 第62回日本植物生理学会年会, 2021年03月発光レポーター遺伝子を用いた側根プレパターニング変異体の単離と解析ポスター発表
- 第62回日本植物生理学会年会, 2021年03月側根形成能が顕著に低下するシロイヌナズナの変異体fewer roots (fwr)のサプレッ サー変異体fewer roots suppressor 1(fsp1)の解析口頭発表(一般)
- 第62回日本植物生理学会年会, 2021年03月サイトカイニンによる維管束幹細胞の運命制御口頭発表(一般)
- 第62回日本植物生理学会年会, 2021年03月薬用植物ニチニチソウの発芽に伴うアルカロイド代謝変動の解析口頭発表(一般)
- 第62回日本植物生理学会年会, 2021年03月ゼニゴケにおけるR2R3-MYB 転写因子SHOTGLASS の機能解析口頭発表(一般)
- 第62回日本植物生理学会年会, 2021年03月ゼニゴケにおけるLAX PANICLE2 相同遺伝子の機能解析口頭発表(一般)
- International Webinar Series "From Cellular Dynamics to Morphology", 2020年11月Mechanisms of auxin-regulated lateral root formation[招待有り]シンポジウム・ワークショップパネル(指名)
- 第62回日本植物生理学会年会, 2020年09月薬用植物ニチニチソウの発芽に伴うアルカロイド代謝変動の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第84回大会, 2020年09月無性芽形成に重要なKAR/RopGEFを制御する上流因子の探索ポスター発表
- 日本植物学会第84回大会, 2020年09月薬用植物ニチニチソウをモデルとしたアルカロイド代謝分化過程の解析ポスター発表
- 2020年09月ポプラ短縮周年系を用いた季節的なリン転流機構の解明と野外RNA-Seqとの比較口頭発表(一般)
- 日本植物学会第84回大会, 2020年09月苔類ゼニゴケの杯状体形成に重要なsingle-MYBタンパク質の同定口頭発表(一般)
- 日本植物学会第84回大会, 2020年09月ゼニゴケ側生器官形成を制御するMYB転写因子GCAM2の機能解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第84回大会, 2020年09月基部陸上植物ゼニゴケにおけるリン酸欠乏に応答した遺伝子転写制御口頭発表(一般)
- 日本植物学会第84回大会, 2020年09月食虫植物の栄養塩認識機構の解析口頭発表(一般)
- 第62回日本植物生理学会年会, 2020年03月薬用植物ニチニチソウの発芽に伴うアルカロイド代謝変動の解析口頭発表(一般)
- 第61回日本植物生理学会年会, 2020年03月, 日本語ニチニチソウの成長に伴う葉組織二次代謝変動の解析シンポジウム・ワークショップパネル(公募)
- 第61回日本植物生理学会年会, 2020年03月, 日本語側根形成を負に制御するTOLS2 ペプチド応答性が変化する変異体の解析ポスター発表
- 第61回日本植物生理学会年会, 2020年03月, 日本語発光レポーター遺伝子を用いた側根プレパターニング変異体の単離と解析ポスター発表
- 第61回日本植物生理学会年会, 2020年03月, 日本語ゼニゴケの再生を制御する2 つのR2R3-MYB 型転写因子の機能解析ポスター発表
- 第61回日本植物生理学会年会, 2020年03月, 日本語苔類ゼニゴケの杯状体形成に関わる新奇因子の同定と機能解析ポスター発表
- 第61回日本植物生理学会年会, 2020年03月, 日本語ポプラ短縮周年系における季節現象再現性の評価口頭発表(一般)
- 第61回日本植物生理学会年会, 2020年03月, 日本語側根形成におけるオーキシン作用の二面性シンポジウム・ワークショップパネル(指名)
- 遺伝研研究会 イネ分子遺伝学の夢, 2019年11月, 日本語イネDECUSSATE遺伝子のシロイヌナズナホモログWANDERING ROOT遺伝子の機能解析[招待有り]口頭発表(一般)
- 日本植物学会第83回大会, 2019年09月, 日本語重イオンビーム照射胞子を用いたゼニゴケ配偶体形態形成変異体のスクリーニングと解析ポスター発表
- 日本植物学会第83回大会, 2019年09月, 日本語レポーター遺伝子を用いたシロイヌナズナ側根プレパターニング機構の解析ポスター発表
- 日本植物学会第83回大会, 2019年09月, 日本語シロイヌナズナ側根形成能が顕著に低下するfewer roots 変異体のサプレッサー変異体の解析ポスター発表
- 日本植物学会第83回大会, 2019年09月, 日本語ゼニゴケ形態形成におけるRopGAP の機能解析ポスター発表
- 日本植物学会第83回大会, 2019年09月, 日本語ニチニチソウ乳管細胞・異形細胞の発生,分化,代謝変動の解析ポスター発表
- 日本植物学会第83回大会, 2019年09月, 日本語基部陸上植物ゼニゴケにおけるリン応答と転流の解析ポスター発表
- 日本植物学会第83回大会, 2019年09月, 日本語ゼニゴケ無性芽形成に機能するRop およびRopGEF の細胞内局在解析ポスター発表
- 日本植物学会第83回大会, 2019年09月, 日本語根系の光環境が植物のリン酸応 答に与える影響口頭発表(一般)
- 日本植物学会第83回大会, 2019年09月, 日本語生育土壌の違いによる植物体イ オノームの変動―植物体から生 育場所を推定できるか?―口頭発表(一般)
- 日本植物学会第83回大会, 2019年09月, 日本語TOLS2ペプチドによる側根形成 関連遺伝子の発現制御に異常を 示す変異体の解析口頭発表(一般)
- 第23回国際植物生長物質会議, 2019年06月, 英語TOLS2/PIPL3 peptide-RLK7 receptor cascade regulates lateral root spacing during Arabidopsis lateral root founder cell formation[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- Tohoku Forum for Creativity Thematic Program 2010 Plant Stem Cells: Source of Plant Vitality Workshop2 Auxin and plant stem cells, 2019年05月, 英語Regulation of Auxin-mediated lateral root formation[招待有り]公開講演,セミナー,チュートリアル,講習,講義等
- 第60回日本植物生理学会年会, 2019年03月, 日本語, 名古屋, 国内会議活性酸素種と活性カルボニル種はオーキシンの側根形成シグナルをフィードフォワード調節する口頭発表(一般)
- 第60回日本植物生理学会年会, 2019年03月, 日本語, 名古屋, 国内会議ニチニチソウ乳管細胞・異形細胞の発生、分化、代謝変動の解析口頭発表(一般)
- 第60回日本植物生理学会年会, 2019年03月, 日本語, 名古屋, 国内会議セントポーリアの温度降下感受性に関わる分子機構の解析ポスター発表
- 第60回日本植物生理学会年会, 2019年03月, 日本語, 名古屋, 国内会議ゼニゴケ腹鱗片の粘液細胞形成におけるRop シグナル伝達の役割ポスター発表
- 第60回日本植物生理学会年会, 2019年03月, 日本語, 名古屋, 国内会議ゼニゴケの2 つのR2R3-MYB 型転写因子を介した異なる幹細胞性獲得制御機構口頭発表(一般)
- 第60回日本植物生理学会年会, 2019年03月, 日本語, 名古屋, 国内会議シロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2 ペプチドによる遺伝子の発現制御に異常を示す変異体の解析ポスター発表
- 第60回日本植物生理学会年会, 2019年03月, 日本語, 名古屋, 国内会議シロイヌナズナとミチタネツケバナにおける根の皮層形成の分子機構の比較口頭発表(一般)
- 遺伝研研究会 イネ分子遺伝学の飛躍, 2018年11月, 日本語, 国立遺伝学研究所, 国内会議ペプチドホルモン-受容体カスケードによる側根形成の側方抑制[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- 6th Plant Dormancy Symposium, 2018年10月, 英語, Kyoto, Japan, Dormancy is a critical strategy of plants to survive under severe environmental conditions by pausing growth, development, and physical activity, which can occur in diverse organs such as seeds and buds of diverse plant lineages. The liverwort Marchantia polymorpha, reproduces asexually by clonal individuals, gemmae, that are dormant within the specialized receptacle, called ge, 国際会議Molecular genetics of gemma dormancy in a basal land plantMarchantia polymorpha[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- 日本植物学会第82回大会, 2018年09月, 日本語, 広島国際会議場, 国内会議根系の光環境が植物のリン酸応答に与える影響ポスター発表
- 日本植物学会第82回大会, 2018年09月, 日本語, 広島国際会議場, 国内会議ポプラの短期落葉―開芽系を用いた季節的なリン酸転流機構の解明と野外RNA-seqとの比較口頭発表(一般)
- 日本植物学会第82回大会, 2018年09月, 日本語, 広島国際会議場, 国内会議ニチニチソウ乳管細胞・異形細胞の発生・分化・機能の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第82回大会, 2018年09月, 日本語, 広島国際会議場, 国内会議セントポーリア温度降下傷害における機械受容Ca2+チャネルの関与と液胞動態の解析ポスター発表
- 日本植物学会第82回大会, 2018年09月, 日本語, 広島国際会議場, 国内会議ゼニゴケの無性芽形成におけるKAR/RopGEFの機能ドメイン解析ポスター発表
- 日本植物学会第82回大会, 2018年09月, 日本語, 広島国際会議場, 国内会議ゼニゴケの無性芽形成におけるKARポスター発表
- 日本植物学会第82回大会, 2018年09月, 日本語, 広島国際会議場, 国内会議ゼニゴケのMYB型転写因子GCAM1による幹細胞制御機構の解析ポスター発表
- 日本植物学会第82回大会, 2018年09月, 日本語, 広島国際会議場, 国内会議シロイヌナズナ側根形成能が顕著に低下するfewer roots変異体のサプレッサー変異体の解析ポスター発表
- 日本植物学会第82回大会, 2018年09月, 日本語, 広島国際会議場, 国内会議シロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2ペプチドに対する応答異常変異体の解析ポスター発表
- 日本植物学会第82回大会, 2018年09月, 日本語, 広島国際会議場, 国内会議シャジクモ細胞膜リン酸輸送体の分子機能解析口頭発表(一般)
- International Symposium on Plant Lipids, 2018年07月, 英語, Yokohama, 国際会議Analysis of lipids accumulated in laticifer and idioblast cells in Catharanthus roseus.ポスター発表
- EMBO Workshop, New shores in land plant evolution, 2018年06月, 英語, Lisbon, Portugal, 国際会議The critical role of MpbHLH40 as a positive regulator of dormancy in theliverwort Marchantia polymorphaポスター発表
- 第58回日本植物生理学会年会, 2018年03月, 日本語, 札幌コンベンションセンター, 国内会議根系の光環境が植物のリン酸応答に与える影響ポスター発表
- 第58回日本植物生理学会年会, 2018年03月, 日本語, 札幌コンベンションセンター, 国内会議ニチニチソウ乳管細胞および異形細胞の分化機構の解明ポスター発表
- 第58回日本植物生理学会年会, 2018年03月, 日本語, 札幌コンベンションセンター, 国内会議セントポーリアの温度降下感受性に関わる分子機構の解析口頭発表(一般)
- 第58回日本植物生理学会年会, 2018年03月, 日本語, 札幌コンベンションセンター, 国内会議ゼニゴケ無性芽形成初期を制御するRop シグナル伝達経路の機能解析口頭発表(一般)
- 第58回日本植物生理学会年会, 2018年03月, 日本語, 札幌コンベンションセンター, 国内会議ゼニゴケ無性芽の休眠を正に制御するMpbHLH40の機能解析口頭発表(一般)
- The 65th NIBB conference ーMarchantia Workshop 2020−, 2017年12月, 英語, 基礎生物学研究所(National Institute for Basic Biology), 国際会議KARAPPO encoding RopGEF is critical for the gemma initial development in the liverwort Marchantia polymorphaポスター発表
- The 65th NIBB conference ーMarchantia Workshop 2017−, 2017年12月, 英語, 基礎生物学研究所(National Institute for Basic Biology), 国際会議KARAPPO encoding RopGEF is critical for the gemma initial development in the liverwort Marchantia polymorphaポスター発表
- 遺伝研研究会 イネ分子遺伝学の方向性, 2017年11月, 日本語器官が作られる場所はどのように決まるのか?ー側根の形成位置を決める仕組みに迫るー[招待有り]口頭発表(一般)
- Taiwan-Japan Plant Biology 2017, 2017年11月, 英語, Academia Sinica, Taipei, Taiwan, 国際会議Mechanisms of Auxin-Regulated Lateral Root Formation in Arabidopsis口頭発表(招待・特別)
- Taiwan-Japan Plant Biology 2017, 2017年11月, 英語, Academia Sinica, 国際会議Mechanism of cell injury induced by a rapid temperature decrease in Saintpaulia sp. leaves.ポスター発表
- Taiwan-Japan Plant Biology 2017, 2017年11月, 英語, Academia Sinica, 国際会議KARAPPO encoding RopGEF is critical for the gemma development in the liverwort Marchantia polymorphaポスター発表
- Taiwan-Japan Plant Biology 2018, 2017年11月, 英語, Academia Sinica, 国際会議Idioblast and laticifer cells play important roles in alkaloid biosynthesis in Catharanthus plantsポスター発表
- Taiwan-Japan Plant Biology 2017, 2017年11月, 英語, Academia Sinica, 国際会議Idioblast and laticifer cells play important roles in alkaloid biosynthesis in Catharanthus plantsポスター発表
- Taiwan-Japan Plant Biology 2017, 2017年11月, 英語, Academia Sinica, 国際会議Functional characterization of MpbHLH40 in gemma dormancy of a liverwort Marchantia polymorpha口頭発表(一般)
- Taiwan-Japan Plant Biology 2017, 2017年11月, 英語, Academia Sinica, 国際会議A shortened annual cycle system; a tool for laboratory studies of seasonal phenomena in treesポスター発表
- THE DEVELOPING PLANT IN ITS ENVIRONMENT, 2017年10月, 英語, Lyon, France, 国際会議Seasonal Pre-translocation in the deciduous poplar tree.ポスター発表
- THE DEVELOPING PLANT IN ITS ENVIRONMENT, 2017年10月, 英語, Domaine Lyon Saint-Joseph, 国際会議Mechanism of cell injury induced by a rapid temperature decrease in Saintpaulia sp. leaves.ポスター発表
- THE DEVELOPING PLANT IN ITS ENVIRONMENT, 2017年10月, 英語, Lyon, France, 国際会議Idioblast and laticifer cells play important roles in alkaloid biosynthesis in Catharanthus roseus.ポスター発表
- Bilateral Closure Symposium of GDRI Integrative Plant Biology Network, 2017年10月, 英語, Domaine Lyon Saint-Joseph, Lyon, France, 国際会議Control of root system architecture through auxin-mediated lateral root formation[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- 日本植物学会第81回大会, 2017年09月, 日本語, 東京理科大学 野田キャンパス, 国内会議落葉木本植物ポプラの季節的なリン転流機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第81回大会, 2017年09月, 日本語, 東京理科大学 野田キャンパス, 国内会議根系の光環境が植物のリン応答に及ぼす影響ポスター発表
- 日本植物学会第81回大会, 2017年09月, 日本語, 東京理科大学 野田キャンパス, 国内会議汽水産緑藻 Ulva compressa のNa+に依存した成長とリン酸の取り込みについてポスター発表
- 日本植物学会第81回大会, 2017年09月, 日本語, 東京理科大学 野田キャンパス, 国内会議基部陸上植物ゼニゴケにおけるリン酸に応答した遺伝子転写制御ポスター発表
- 日本植物学会第81回大会, 2017年09月, 日本語, 東京理科大学 野田キャンパス, 国内会議セントポーリアの温度感受性に関わる分子機構の解析ポスター発表
- 日本植物学会第81回大会, 2017年09月, 日本語, 東京理科大学 野田キャンパス, 国内会議ゼニゴケ無性芽発生を制御するRopGEF/KARの生化学的解析ポスター発表
- 日本植物学会第81回大会, 2017年09月, 日本語, 東京理科大学 野田キャンパス, 国内会議シロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2類似ペプチドの解析ポスター発表
- 日本植物学会第81回大会, 2017年09月, 日本語, 東京理科大学 野田キャンパス, 国内会議シロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2ペプチドに対する高感受性変異体の解明ポスター発表
- 日本植物学会第81回大会, 2017年09月, 日本語, 東京理科大学 野田キャンパス, 国内会議さまざまな植物における紅葉・黄葉現象の解析ポスター発表
- 第58回日本植物生理学会年会, 2017年03月, 日本語, 鹿児島, 国内会議根の障害物認識機構の解明ポスター発表
- 日本藻類学会第41回大会, 2017年03月, 日本語, 高知, 国内会議汽水産緑藻 Ulva proliferaの Na+ に依存した成長とリン酸の取り込みについて口頭発表(一般)
- 第58回日本植物生理学会年会, 2017年03月, 日本語, 鹿児島, 国内会議ポプラの短期落葉- 開芽系を用いた季節的なリン転流機構の解析口頭発表(一般)
- 第58回日本植物生理学会年会, 2017年03月, 日本語, 鹿児島, 国内会議ニチニチソウ異形細胞・乳管細胞におけるTIA 代謝機構の解析口頭発表(一般)
- 第58回日本植物生理学会年会, 2017年03月, 日本語, 鹿児島, 国内会議なぜセントポーリアは急激な温度降下に敏感なのか?口頭発表(一般)
- 第58回日本植物生理学会年会, 2017年03月, 日本語, 鹿児島, 国内会議ゼニゴケ無性芽の休眠に関連するbHLH 遺伝子の機能解析口頭発表(一般)
- 第58回日本植物生理学会年会, 2017年03月, 日本語, 鹿児島, 国内会議ゼニゴケ杯状体形成に重要なGEMMA CUP-ASSOCIATED MYB2の機能ポスター発表
- 第58回日本植物生理学会年会, 2017年03月, 日本語, 鹿児島, 国内会議シロイヌナズナ側根形成に関わるTOLS2 ペプチドによる遺伝子の発現制御に異常を示す変異体の解析ポスター発表
- 第58回日本植物生理学会年会, 2017年03月, 日本語, 鹿児島, 国内会議シロイヌナズナのリン酸濃度応答遺伝子の探索/第58回日本植物生理学会年会口頭発表(一般)
- 第58回日本植物生理学会年会, 2017年03月, 日本語, 鹿児島, 国内会議Marchantia polymorphaでの無性芽形成初期におけるRopGEF 遺伝子、KARAPPOの重要な役割ポスター発表
- 近畿植物学会講演会, 2016年11月, 日本語, 兵庫県民会館, 国内会議急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズム口頭発表(一般)
- 近畿植物学会講演会, 2016年11月, 日本語, 兵庫県民会館, 国内会議シロイヌナズナのリン酸濃度応答遺伝子の探索口頭発表(一般)
- 日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本語, 沖縄, 国内会議急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムポスター発表
- 日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本語, 沖縄, 国内会議ポプラの短期落葉- 開芽系を用いた季節的なリン転流機構の解析ポスター発表
- 日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本語, 沖縄, 国内会議ポプラにおける葉組織リン代謝の季節変動 - 野外と実験室培養系の比較-ポスター発表
- 日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本語, 沖縄, 国内会議ニチニチソウ異形細胞におけるTIA 代謝分化機構の解析ポスター発表
- 日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本語, 沖縄, 国内会議ゼニゴケ無性芽形成におけるLATERAL SUPPRESSOR 相同遺伝子の機能ポスター発表
- 日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本語, 沖縄, 国内会議ゼニゴケ無性芽の休眠に関連するbHLH遺伝子の機能解析ポスター発表
- 日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本語, 沖縄, 国内会議ゼニゴケの栄養繁殖器官におけるトランスクリプトーム解析ポスター発表
- 日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本語, 沖縄, 国内会議シロイヌナズナ側根形成に関わるTOLS2ペプチドによるPUCHI 遺伝子の発現制御機構の解析ポスター発表
- 日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本語, 沖縄, 国内会議シロイヌナズナのリン酸濃度応答遺伝子の探索/日本植物学会 第80回大会ポスター発表
- 日本土壌肥料学会 2016年度年会, 2016年09月, 日本語, 佐賀, 国内会議シロイヌナズナのリン応答におけるBT遺伝子の機能の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本語, 沖縄, 国内会議Ulva prolifera のナトリウム依存性の成長量変化についてポスター発表
- 第68回日本細胞生物学会大会, 2016年06月, 日本語, 京都, 国内会議側根発生の3Dライブイメージングによる根端メリステム構築の解析ポスター発表
- EMBO workshop "New model systems for early land plant evolution", 2016年06月, 英語, Vienna, Many plants have an ability to generate clonal progenies directly from somatic cells of vegetative organs, however, little is known about the molecular mechanism. The liverwort Marchantia polymorpha performs vegetative propagation via gemmae generated in the gemma cups formed on the dorsal side of thallus. To investigate regulatory genes involved in the process of gemma and gem, 国際会議Critical role of the R2R3-MYB gene GEMMA CUP-ASSOCIATED MYB1 for vegetative propagation in the liverwort Marchantia polymorpha L.ポスター発表
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, 国内会議葉緑体ATPase によるH+ 流出制御が及ぼす光化学系I の酸化還元状態の解析口頭発表(一般)
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学, 国内会議根における多層の皮層形成の分子機構の解析[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学, 国内会議過酸化脂質由来のカルボニル種は側根形成のオーキシンシグナルを媒介する口頭発表(一般)
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, 国内会議ゼニゴケ無性芽の発芽に関連するbHLH 遺伝子の同定と機能解析ポスター発表
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, 国内会議ゼニゴケの無性芽形成に必須な遺伝子KARAPPOの解析ポスター発表
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, 国内会議ゼニゴケの杯状体形成に必須なR2R3-MYB 転写因子GCAM1 の機能解析ポスター発表
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, 国内会議ゼニゴケの杯状体形成に関与する遺伝子GCAM2の解析ポスター発表
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学, 国内会議シロイヌナズナのTOLS1MAKR4は側根形成の開始を制御する口頭発表(一般)
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学, 国内会議ジャスモン酸はCOI1 非依存の経路でオーキシンシグナリングを制御する口頭発表(一般)
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, 2016年03月, 日本語, 盛岡, 国内会議Terpenoid indole alkaloids accumulated in Catharanthus roseus idioblast and laticifer cellsポスター発表
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, 2016年03月, 日本語, 盛岡, 国内会議Seasonal changes in phosphorus metabolites in leaves of the deciduous woody plant, Populus albaポスター発表
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, 2016年03月, 日本語, 盛岡, 国内会議Re-translocation of nutrients during heartwood formation of Poplar tree口頭発表(一般)
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, 国内会議Identification of the gene GEMMA CUP-ASSOCIATED MYB 2 involved in the formation of gemma cup in Marchantia polymorphaポスター発表
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, 国内会議Identification and characterization of a bHLH gene involved in gemma germination in the liverwort Marchantia polymorpha.ポスター発表
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, 国内会議Functional characterization of GCAM1, an R2R3-MYB essential for the development of gemma cup in the liverwort Marchantia polymorpha.ポスター発表
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, 国内会議Functional characterization of a LATERAL SUPPRESSOR homolog in Marchantia polymorpha.ポスター発表
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, 2016年03月, 日本語, 盛岡, 国内会議Evolutional analysis of phosphate transport mechanism in plant cells口頭発表(一般)
- 第57回日本植物生理学会年会, 2016年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, 国内会議Characterization of KARAPPO, an essential gene for gemma formation in Marchantia polymorpha.ポスター発表
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, 2016年03月, 日本語, 盛岡, 国内会議Analysis of temperature-sensing mechanism in Saintpauliaポスター発表
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, 2016年03月, 日本語, 盛岡, 国内会議Analysis of seasonal re-translocation of phosphate in a deciduous woody plant, Populus alba口頭発表(一般)
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, 2016年03月, 日本語, 盛岡, 国内会議Analysis of phosphate supply-responsive genes in Arabidopsis thalianaポスター発表
- 第38回日本分子生物学会年会 第88回日本生化学会大会 合同大会, 2015年12月, 日本語, 日本分子生物学会年会 日本生化学会大会, 神戸ポートアイランド, 国内会議シロイヌナズナの側根発生を3次元タイムラプスイメージングで視る[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- 第22回時間生物学会, 2015年11月, 日本語, 東京大学, 国内会議植物の四季応答を改変する口頭発表(一般)
- 日本植物学会第79回大会, 2015年09月, 日本語, 新潟コンベンションセンター, 国内会議無性芽形成異常変異体karappo-2における変異原因遺伝子の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第79回大会シンポジウム, 2015年09月, 日本語, 日本植物学会, 朱鷺メッセ:新潟コンベンションセンター, 国内会議側根発生の制御機構[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- 日本植物学会第79回大会, 2015年09月, 日本語, 新潟コンベンションセンター, 国内会議植物組織における低分子量物質分布の質量顕微鏡による可視化口頭発表(一般)
- 日本植物学会第79回大会, 2015年09月, 日本語, 新潟コンベンションセンター, 国内会議順遺伝学で明らかにするアブラナ科の根の形態進化口頭発表(一般)
- 日本植物学会第79回大会, 2015年09月, 日本語, 新潟コンベンションセンター, 国内会議急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムポスター発表
- 日本植物学会第79回大会, 2015年09月, 日本語, 新潟コンベンションセンター, 国内会議ランタナの花色変化における生理課程解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第79回大会, 2015年09月, 日本語, 新潟コンベンションセンター, 国内会議ポプラにおけるリン酸転流経路の季節変化(ポスター)ポスター発表
- 日本植物学会第79回大会, 2015年09月, 日本語, 新潟コンベンションセンター, 国内会議ポプラにおけるリン酸転流経路の季節変化口頭発表(一般)
- 日本植物学会第79回大会, 2015年09月, 日本語, 新潟コンベンションセンター, 国内会議ニチニチソウ組織におけるTerpenoid indole alkaloidの合成と蓄積機構の解明口頭発表(一般)
- 日本植物学会第79回大会, 2015年09月, 日本語, 新潟コンベンションセンター, 国内会議ゼニゴケの杯状体形成を制御するGCAM1の機能解析ポスター発表
- 日本植物学会第79回大会, 2015年09月, 日本語, 新潟コンベンションセンター, 国内会議ゼニゴケの杯状体と生殖器の形成に関与するR2R3-MYB型転写因子GCAM2の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第79回大会, 2015年09月, 日本語, 新潟コンベンションセンター, 国内会議シロイヌナズナ側根形成に関わるTOLS2ペプチドによるPUCHI遺伝子の発現制御機構の解析口頭発表(一般)
- International ERATO Higashiyama Live-Holonics Symposium 2015, 2015年08月, 英語, JST, ERATO Higashiyama Live-Holonics Project, Nagoya University, 名古屋大学野依記念学術交流館, 国内会議Molecular mechanisms underlying the formation of multiple cortex cell layers in plant rootsポスター発表
- SEB Prague 2015, 2015年07月, 英語, The Society for Experimental Biology, Charles Darwin House, Prague, 国際会議Dissecting the role of mechanical regulation during lateral root organogenesis[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- SEB Prague 2015, 2015年07月, 英語, The Society for Experimental Biology, Charles Darwin House, Prague, 国際会議Analyzing the gene regulatory network controlling lateral root development in Arabidopsis reveals a role for very long chain fatty acids[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- 日本発生生物学会第48回年会, 2015年06月, 英語, 日本発生生物学会, つくば国際会議場, 国内会議Visualization of Arabidopsis lateral root organogenesis using 3D time-lapse imagingポスター発表
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 日本語, 東京農業大学, 国内会議落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析口頭発表(一般)
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 日本語, 東京農業大学, 国内会議木本植物の心材形成時における栄養塩回収機構の解析口頭発表(一般)
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 日本語, 東京農業大学, 国内会議無性芽形成異常変異体karappo2 における変異原因遺伝子の同定ポスター発表
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 日本語, 東京農業大学, 国内会議植物細胞リン酸輸送機構とその進化について口頭発表(一般)
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 日本語, 東京農業大学, 国内会議質量分析装置を用いたシロイヌナズナ植物体のオーキシン添加に応答する代謝変動解析ポスター発表
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 日本語, 東京農業大学, 国内会議急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムポスター発表
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 日本語, 東京農業大学, 国内会議ニチニチソウ茎組織におけるTerpenoid indole alkaloidの分布解析口頭発表(一般)
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 日本語, 東京農業大学 世田谷キャンパス, 国内会議タイムラプスイメージングによるシロイヌナズナの側根発生の解析口頭発表(一般)
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 日本語, 東京農業大学, 国内会議ゼニゴケにおける杯状体形成関連遺伝子GEMMA-CUP ASSOCIATED MYB 2 の解析ポスター発表
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 日本語, 東京農業大学 世田谷キャンパス, 国内会議シロイヌナズナ側根形成におけるオーキシン依存的な転写制御機構の解析口頭発表(一般)
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 日本語, 東京農業大学 世田谷キャンパス, 国内会議シロイヌナズナTOLS2遺伝子は側根形成頻度を制御する口頭発表(一般)
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 日本語, 東京農業大学 世田谷キャンパス, 国内会議R2R3-MYB型転写因子GCAM1は苔類ゼニゴケの杯状体形成を制御するポスター発表
- The 2nd International Symposium on Plant Environmental Sensing, 2015年03月, 英語, AIST, Odaiba, 国際会議Phosphate status in plant lifeポスター発表
- The 2nd International Symposium on Plant Environmental Sensing, 2015年03月, 英語, AIST, Odaiba, 国際会議Mechanism of cell injury induced by a rapid temperature decrease in Saintpaulia sp. leaves.ポスター発表
- 第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 英語, 東京農業大学 世田谷キャンパス, 国内会議Genetic regulatory mechanisms of lateral root spacing口頭発表(一般)
- The 2nd International Symposium on Plant Environmental Sensing, 2015年03月, 英語, AIST, Odaiba, 国際会議Evolutionary analysis of phosphate transport mechanisms in plant cellsポスター発表
- The 2nd International Symposium on Plant Environmental Sensing, 2015年03月, 英語, AIST, Odaiba, 国際会議Cell-specific localization of terpenoid indole alkaloids revealed by new metabolome analysesポスター発表
- Marchantia Workshop 2014, 2014年12月, 英語, Centennial Hall, Kobe University, The liverwort Marchantia polymorpha forms cupule-like structures, gemma cups, on the dorsal side of thallus, where dozens of clonal progenies, gemmae, are generated. We isolated a mutant of M. polymorpha defective in gemma cup development from T-DNA-tagged lines. The T-DNA was inserted into a 5’UTR of a gene encoding an R2R3-MYB transcription factor. Analysis of the promoter ac, 国際会議The role of the R2R3-MYB transcription factor, GCAM2, in the development of gemma cup in Marchantia polymorpha.ポスター発表
- SPIRITS Kyoto-Zurich Plant Workshop, 2014年12月, 英語, Kyoto University, 国際会議Phosphate status in plant life[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- Marchantia Workshop 2014, 2014年12月, 英語, Centennial Hall, Kobe University, Gemma is a clonal progeny developed from the base of gemma-cup in Marchantia polymorpha. To investigate the regulatory mechanism for gemma development, we focused on a mutant, karappo2 (kar2), which was originally isolated from transgenics obtained by particle bombardment protocol. There is no gemma initial observed at the base of gemma-cup in kar2, while gemma-cups are regular, 国際会議Molecular characterization of karappo2, a gemma-less mutant, in Marchantia polymorpha.ポスター発表
- Marchantia Workshop 2014, 2014年12月, 英語, Centennial Hall, Kobe University, Marchantia polymorpha has an ability to propagate asexually via gemmae generated in gemma-cup formed on the dorsal side of thallus. To investigate genes involved in the process of gemma and gemma-cup development, we performed RNA-seq analysis comparing gemma-cups contaning gemmae and thallus without any gemma-cup. Through the comprehensive transcriptome analysis, we identified, 国際会議GEMMA CUP-ASSOCIATED MYB1 is essential for the development of gemma-cup in the liverwort Marchantia polymorpha L.ポスター発表
- Marchantia Workshop 2014, 2014年12月, 英語, Kobe University, 国際会議Evolutional analysis of phosphate trasnport mechanism in plant cellsポスター発表
- 日本植物学会第78回大会, 2014年09月, 日本語, 明治大学 生田キャンパス, 国内会議落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第78回大会, 2014年09月, 日本語, 明治大学 生田キャンパス, 国内会議木本植物におけるイオン輸送機構の解析ポスター発表
- 日本植物学会第78回大会, 2014年09月, 日本語, 明治大学 生田キャンパス, 国内会議転写因子PUCHIを介したペプチドによる側根制御口頭発表(一般)
- 日本植物学会第78回大会, 2014年09月, 日本語, 明治大学 生田キャンパス, 国内会議植物細胞リン酸輸送機構とその進化について口頭発表(一般)
- 日本植物学会第78回大会, 2014年09月, 日本語, 明治大学 生田キャンパス, 国内会議急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムポスター発表
- 日本植物学会第78回大会, 2014年09月, 日本語, 明治大学 生田キャンパス, 国内会議ゼニゴケの栄養繁殖器官で発現するR2R3型MYB遺伝子の単離と機能解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第78回大会, 2014年09月, 日本語, 明治大学 生田キャンパス, 国内会議シロイヌナズナ側根形成におけるLBDの下流遺伝子TOLS2の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第78回大会, 2014年09月, 英語, 明治大学 生田キャンパス, 国内会議シロイヌナズナにおける葉の維管束鞘細胞の形成・分化機構の解析ポスター発表
- 第55回日本植物生理学会年会, 2014年03月, 日本語, 富山, 国内会議落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析口頭発表(一般)
- 第55回日本植物生理学会年会, 2014年03月, 日本語, 富山大学五福キャンパス, 国内会議植物細胞リン酸輸送機構とその進化について口頭発表(一般)
- 第55回日本植物生理学会年会, 2014年03月, 日本語, 富山, 国内会議植物におけるリン環境認識とリン利用の新しい視点公開講演,セミナー,チュートリアル,講習,講義等
- 第55回日本植物生理学会年会, 2014年03月, 日本語, 富山, 国内会議質量分析装置を用いたシロイヌナズナ植物体のオーキシン添加に応答する代謝変動解析ポスター発表
- 第55回日本植物生理学会年会, 2014年03月, 日本語, 富山, 国内会議急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムポスター発表
- 第55回日本植物生理学会年会, 2014年03月, 日本語, 富山大学五福キャンパス, 国内会議フィトクロムによるトマト芽生えのフック巻込みに関わる植物ホルモン口頭発表(一般)
- 第55回日本植物生理学会年会, 2014年03月, 日本語, 富山大学・五福キャンパス, 国内会議ニチニチソウ組織におけるTerpenoid indole alkaloid合成機構の解明ポスター発表
- 第55回日本植物生理学会年会, 2014年03月, 日本語, 富山, 国内会議シロイヌナズナ側根原基形成のイメージング解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第77回大会, 2013年09月, 日本語, 札幌, 国内会議急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムポスター発表
- 日本植物学会第77回大会, 2013年09月, 日本語, 札幌, 国内会議リグニンによる側根形成制御口頭発表(一般)
- 日本植物学会第77回大会, 2013年09月, 日本語, 札幌, 国内会議バラの花色決定における液胞機能の解析ポスター発表
- 日本植物学会第77回大会, 2013年09月, 日本語, 札幌, 国内会議ニチニチソウ葉組織の単一細胞種を用いた二次代謝機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第77回大会, 2013年09月, 日本語, 札幌, 国内会議シロイヌナズナ植物体のオーキシン添加に応答する 代謝変動解析ポスター発表
- formation 21st International Conference on Plant Growth Substances, 2013年06月, 英語, 上海(中国), 国際会議Auxin-induced LBD16/ASL18 and related LBD/ASL proteins regulate lateral root[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物生理学会第54回年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議側根形成能が顕著に低下するシロイヌナズナ fewer roots 変異体のサプレッサー変異体の単離と解析ポスター発表
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議側根形成能が顕著に低下するシロイヌナズナfewer roots変異体のサプレッサー変異体の単離と解析ポスター発表
- 日本植物生理学会第54回年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議食虫植物タヌキモ(Utricularia vulgaris)の捕虫機構と栄養塩吸収過程について口頭発表(一般)
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議食中植物タヌキモ(Utricularia vulgaris)の捕虫機構と栄養塩吸収過程について口頭発表(一般)
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議リン酸増加に対するシロイヌナズナの根の応答機構口頭発表(一般)
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議リン酸増加に対するシロイヌナズナの根における応答機構口頭発表(一般)
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議ニチニチソウ細胞における二次代謝機能の解析口頭発表(一般)
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議ニチニチソウ細胞における二次代謝機構の解析口頭発表(一般)
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議シロイヌナズナ側根形成におけるオーキシン依存的な転写制御機構の解析口頭発表(一般)
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議シロイヌナズナ植物体のオーキシン点に応答する代謝変動解析ポスター発表
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議シロイヌナズナ植物体のオーキシン添加に応答する代謝変動解析ポスター発表
- 日本植物生理学会第54回年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議シロイヌナズナ根の放射パターン形成に関与するRLF遺伝子の解析ポスター発表
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議サイトカイニンはフィトクロムと恊働して光によるトマト芽生えのフック巻込みを引き起こす口頭発表(一般)
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 日本語, 岡山, 国内会議サイトカイニンはフィトクロムと協働して光によるトマト芽生えのフック巻込みを引き起こす口頭発表(一般)
- 第54回日本植物生理学会年会, 2013年03月, 英語, 岡山, 国内会議Variation of cortex layer numbers in Barssicaceae口頭発表(一般)
- International Workshop on Plant Membrane Biology 2013, 2013年03月, 英語, Kurashiki, Japan, 国際会議Membrane microdomains in the plant vacuole.ポスター発表
- International Workshop on Plant Membrane Biology 2013, 2013年03月, 英語, Kurashiki, Japan, 国際会議Analysis of re-translocation of phosphate in deciduous woody plants; Populus alba.ポスター発表
- 日本植物学会第77回大会, 2013年, 日本語, 札幌, 国内会議落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第77回大会, 2013年, 日本語, 札幌, 国内会議側根形成能が顕著に低下するシロイヌナズナ fewer roots 変異体のサプレッサー変異体 fsp1 と fsp2 の解析口頭発表(一般)
- 第55回日本植物生理学会年会, 2013年, 日本語, 富山, 国内会議質量顕微鏡による植物代謝産物の分布解析公開講演,セミナー,チュートリアル,講習,講義等
- 第55回日本植物生理学会年会, 2013年, 日本語, 富山, 国内会議根の成長・発生ロジックの解明に向けて:オーキシンを介した側根形成機構口頭発表(一般)
- 第55回日本植物生理学会年会, 2013年, 日本語, 富山, 国内会議ミチタネツケバナとシロイヌナズナをもちいた根の皮層層数制御の分子遺伝学的解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第77回大会, 2013年, 日本語, 北海道大学札幌キャンパス, 国内会議シロイヌナズナ側根形成におけるLBD16の下流遺伝子TOLS2の解析口頭発表(一般)
- 第55回日本植物生理学会年会, 2013年, 日本語, 富山, 国内会議シロイヌナズナ根端における33P 局在とリン酸応答性遺伝子の発現誘導ポスター発表
- 第25回植物脂質シンポジ ウム, 2012年11月, 日本語, 神戸, 国内会議イワタバコ科植物の葉で生じる温度傷害の発生メカニズムポスター発表
- 日本植物学会第76回大会, 2012年09月, 日本語, 姫路, 国内会議落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第76回大会, 2012年09月, 日本語, 姫路, 国内会議植物液胞のポストゲノム解析ポスター発表
- 日本植物学会第76回大会, 2012年09月, 日本語, 姫路, 国内会議根端メリステムの維持に異常を示すシロイヌナズナfba1変異体の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第76回大会, 2012年09月, 日本語, 姫路, 国内会議根の皮層の多様な分化口頭発表(一般)
- 日本植物学会第76回大会, 2012年09月, 日本語, 姫路, 国内会議リン酸増加に対するシロイヌナズナの根における応答機構口頭発表(一般)
- 日本植物学会第76回大会, 2012年09月, 日本語, 姫路, 国内会議ニチニチソウ細胞における二次代謝産物合成機構の解析(口頭)口頭発表(一般)
- 日本植物学会第76回大会, 2012年09月, 日本語, 姫路, 国内会議ニチニチソウ細胞における二次代謝産物合成機構の解析ポスター発表
- 日本植物学会第76回大会, 2012年09月, 日本語, 姫路, 国内会議シロイヌナズナ植物体のオーキシン添加に応答する代謝変動解析ポスター発表
- New Frontiers of Metabolism Research in Biomedical Sciences, 2012年09月, 英語, Tokyo, Japan, 国際会議Terpenoid indole alkaloids synthesis in Catharanthus roseus.口頭発表(一般)
- New Frontiers of Metabolism Research in Biomedical Sciences, 2012年09月, 英語, Tokyo, Japan, 国際会議Post-genome analyses of plant intact vacuoles.口頭発表(一般)
- 第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 京都, 国内会議陸上植物におけるフィチン酸(イノシトール-6-リン酸)の生合成・蓄積動態の解析ポスター発表
- 第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 京都, 国内会議落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析口頭発表(一般)
- 第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 京都, 国内会議側根形成能が顕著に低下するシロイヌナズナfewerroots変異体のサプレッサー変異体の単離と解析口頭発表(一般)
- 第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 京都, 国内会議植物液胞のポストゲノム解析ポスター発表
- 第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 京都, 国内会議根端メリステムの維持に異常を示すシロイヌナズナfba1変異体の解析口頭発表(一般)
- 第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 京都, 国内会議液胞膜エンジニアリングによる液胞代謝動態の解析ポスター発表
- 第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 京都, 国内会議フィトクロムによるトマト芽生えのフック巻込みには胚乳因子が必要である口頭発表(一般)
- 第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 京都, 国内会議ニチニチソウ細胞における二次代謝産物の合成と液胞機能の解析口頭発表(一般)
- 第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 京都, 国内会議シロイヌナズナ根の放射パターン形成に関与するRLF遺伝子の解析口頭発表(一般)
- 第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 京都, 国内会議シロイヌナズナの根がリン酸増加に応答する機構口頭発表(一般)
- 第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 京都, 国内会議The role of SHY2/IAA3-mediated auxin signaling in Arabidopsis lateral root formation口頭発表(一般)
- 日本植物学会第75回大会, 2011年09月, 日本語, 日本植物学会, 東京, 国内会議側根形成開始における細胞分裂の非対称性の制御.口頭発表(招待・特別)
- 日本植物学会第75回大会, 2011年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 東京, 国内会議食虫植物タヌキモ(UtriculariaVulgaris)の捕虫機構における外部栄養塩の影響口頭発表(一般)
- 日本植物学会第75回大会, 2011年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 東京, 国内会議根端メリステムの維持に異常を示すシロイヌナズナfba1変異体の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第76回大会, 2011年09月, 日本語, 姫路, 国内会議根系の成長システム解明に向けて-遺伝子制御ネットワーク研究から見えること[招待有り]シンポジウム・ワークショップパネル(指名)
- 日本植物学会第75回大会, 2011年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 東京, 国内会議根の放射パターン形成に異常を示すシロイヌナズナrlf変異体の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第75回大会, 2011年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 東京, 国内会議高等植物のリン酸分配・転流機構の解析:草本・木本植物の比較口頭発表(一般)
- 日本植物学会第75回大会, 2011年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 東京, 国内会議急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の細胞死メカニズム口頭発表(一般)
- 日本植物学会第75回大会, 2011年09月, 日本語, 日本植物学会, 東京, 国内会議シロイヌナズナ根端メリステムの形成・維持の制御機構口頭発表(招待・特別)
- The 3rd Korea-Japan Young Plant Scientist Symposium, 2011年09月, 英語, POSTECH, Korea, POSTECH, Korea, 国際会議The establishment of asymmetry in Arabidopsis lateral root founder cells is regulated by auxin-inducible LBD/ASL proteins口頭発表(招待・特別)
- 第52回日本植物生理学会年会, 2011年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 仙台, 国内会議植物液胞のポストゲノム解析口頭発表(一般)
- 第52回日本植物生理学会年会, 2011年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 仙台, 国内会議根端メリステムの維持に異常を示すシロイヌナズナfba1変異体の解析口頭発表(一般)
- 第52回日本植物生理学会年会, 2011年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 仙台, 国内会議光によるトマト芽生えのフック巻込み反応に関わる胚乳因子ポスター発表
- 第52回日本植物生理学会年会, 2011年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 仙台, 国内会議シロイヌナズナ側根欠失変異体slrのサプレッサー変異体ssl1/hastyの解析口頭発表(一般)
- 第52回日本植物生理学会年会, 2011年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 仙台, 国内会議シロイヌナズナ側根形成における時空間特異的なオーキシン応答の制御口頭発表(一般)
- 第52回日本植物生理学会年会, 2011年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 仙台, 国内会議シロイヌナズナ側根形成におけるLBD16/ASL18の下流遺伝子LLPL2の解析口頭発表(一般)
- 第52回日本植物生理学会年会, 2011年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 仙台, 国内会議キャピラリー電気泳動/四重極–飛行時間型質量分析装置(CE-ESI-QTOF)を用いたオーキシン添加に応答する代謝産物の同時定量解析口頭発表(一般)
- 第52回日本植物生理学会年会, 2011年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 仙台, 国内会議オーキシン誘導性LBD/ASLメンバーによる側根の形成開始の制御機構口頭発表(一般)
- 第52回日本植物生理学会年会, 2011年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 仙台, 国内会議イワタバコ科植物の葉で生じる温度傷害の発生メカニズム口頭発表(一般)
- 第33回日本分子生物学会年会、第83回日本生化学会大会合同大会 BMB2010, 2010年12月, 日本語, 日本分子生物学会, 神戸, 国内会議Auxin-inducible LBD/ASL proteins regulate Arabidopsis lateral root initiation through activating the first asymmetric cell divisions of protoxylem pericycle口頭発表(一般)
- Korean Society of Molecular and Cell Biology, Symposium, 2010年10月, 英語, Korean Society of Molecular and Cell Biology, Seoul, KOREA, 国際会議Auxin and Lateral Root Development: Transcriptional Cascades Regulating Lateral Root Initiation in Arabidopsis thaliana[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- 日本植物学会第74回大会, 2010年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 春日井, 国内会議種子形成・発芽におけるフィチン酸(イノシトール6リン酸)の動態口頭発表(一般)
- 日本植物学会第74回大会, 2010年09月, 日本語, 日本植物学会, 春日井, 国内会議セントポーリア葉の温度傷害に伴う液胞の動態口頭発表(一般)
- 日本植物学会第74回大会, 2010年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 春日井, 国内会議シロイヌナズナ側根欠失変異体slrのサプレッサー変異体ssl1/hastyの解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第74回大会, 2010年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 春日井, 国内会議シロイヌナズナ側根形成における時期特異的・空間特異的なオーキシン応答の制御口頭発表(一般)
- 日本植物学会第74回大会, 2010年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 春日井, 国内会議シロイヌナズナ側根形成におけるLBD16/ASL18の下流遺伝子LLPL2の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第74回大会, 2010年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 春日井, 国内会議キャピラリー電気泳動/四重極- 飛行時間型質量分析装置(CE-ESI-QTOF)を用いたオーキシン添加に応答するメタボローム解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第74回大会, 2010年09月, 日本語, 日本植物学会, 春日井, 国内会議オーキシン応答性を示すシロイヌナズナASL23/LBD19遺伝子の機能解析ポスター発表
- 21st International Conference on Arabidopsis Research, 2010年06月, 英語, International Conference on Arabidopsis Research, Yokohama, Japan, 国際会議Auxin-inducible LBD/ASL members regulate lateral root formation.ポスター発表
- 第51回日本植物生理学会年会, 2010年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 熊本, 国内会議葉緑体におけるグルタチオン結合性アルドラーゼFBA1の機能口頭発表(一般)
- 第51回日本植物生理学会年会, 2010年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 熊本, 国内会議根端メリステムの維持に異常を示すシロイヌナズナLR11-4変異体の解析口頭発表(一般)
- 第51回日本植物生理学会年会, 2010年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 熊本, 国内会議液胞膜エンジニアリングによる液胞代謝動態の解析口頭発表(一般)
- 第51回日本植物生理学会年会, 2010年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 熊本, 国内会議フィトクロムによるトマト芽生えのフック巻込み−その意義と種皮の役割.口頭発表(一般)
- 第51回日本植物生理学会年会, 2010年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 熊本, 国内会議シロイヌナズナ側根形成変異体fewer roots(fwr)の解析口頭発表(一般)
- 第51回日本植物生理学会年会, 2010年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 熊本, 国内会議シロイヌナズナの根系構築・栄養塩吸収におけるリン酸と鉄の相互作用ポスター発表
- 第51回日本植物生理学会年会, 2010年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 熊本, 国内会議シロイヌナズナの高塩環境下における液胞動態と塩蓄積機構の解析口頭発表(一般)
- 第51回日本植物生理学会年会, 2010年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 熊本, 国内会議オーキシン誘導性LBD/ASLメンバーは側根の形成開始に関与する口頭発表(一般)
- 第51回日本植物生理学会年会, 2010年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 熊本, 国内会議GARP型転写因子Golden2-like(GLK)の発現制御によるシロイヌナズナの根での可塑的な葉緑体分化口頭発表(一般)
- 日本植物学会第73回大会, 2009年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 山形, 国内会議根端メリステム維持に異常を示すシロイヌナズナ新奇変異体LR11-4の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第73回大会, 2009年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 山形, 国内会議液胞膜エンジニアリングによる液胞代謝動態の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第73回大会, 2009年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 山形, 国内会議シロイヌナズナ新奇側根形成変異体fewer roots(fwr)の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第73回大会, 2009年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 山形, 国内会議シロイヌナズナ根系のリン酸吸収機構:リンと鉄の相互作用ポスター発表
- 日本植物学会第73回大会, 2009年09月, 日本語, 日本植物学会, 山形, 国内会議シロイヌナズナの根におけるクロロフィル合成制御機構口頭発表(一般)
- 日本植物学会第73回大会, 2009年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 山形, 国内会議キャピラリー電気泳動-質量分析装置(CE-ESI-QTOF)を用いた植物生理活性物質の分析口頭発表(一般)
- 第50回日本植物生理学会年会, 2009年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 名古屋, 国内会議側根形成過程におけるオーキシン誘導性LBD/ASLファミリーの機能解析口頭発表(一般)
- 第50回日本植物生理学会年会, 2009年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 名古屋, 国内会議側根形成を制御するオーキシンシグナリング.口頭発表(招待・特別)
- 第50回日本植物生理学会年会, 2009年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 名古屋, 国内会議植物インタクト液胞のポストゲノム解析口頭発表(一般)
- 第50回日本植物生理学会年会, 2009年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 名古屋, 国内会議ムジナモ捕虫葉の閉合運動におけるCa2+の役割口頭発表(一般)
- 第50回日本植物生理学会年会, 2009年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 名古屋, 国内会議シロイヌナズナ側根形成におけるLBD16/ASL18下流遺伝子の解析口頭発表(一般)
- 第50回日本植物生理学会年会, 2009年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 名古屋, 国内会議シロイヌナズナの光形態形成時における子葉でのクロロフィル合成に対する植物ホルモンの役割.ポスター発表
- 第50回日本植物生理学会年会, 2009年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 名古屋, 国内会議シロイヌナズナにおける液胞膜マイクロドメインの解析口頭発表(一般)
- 第50回日本植物生理学会年会, 2009年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 名古屋, 国内会議キャピラリー電気泳動-四重極-飛行時間型質量分析装置(CE-ESI-QTOF)を用いたシロイヌナズナ葉中メタボローム解析口頭発表(一般)
- 第31回日本分子生物学会年会・第81回日本生化学会大会 合同大会, 2008年12月, 日本語, 日本分子生物学会, 神戸, 国内会議シロイヌナズナ側根形成で機能するLBD16/ASL18の下流遺伝子の解析口頭発表(一般)
- 第31回日本分子生物学会年会, 2008年12月, 日本語, 日本分子生物学会, 神戸, 国内会議オーキシンを介した側根発生の分子機構口頭発表(招待・特別)
- 日本植物学会第72回大会, 2008年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 高知, 国内会議植物インタクト液胞のポストゲノム解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第72回大会, 2008年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 高知, 国内会議ムジナモ捕虫葉における膨圧運動機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第72回大会, 2008年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 高知, 国内会議シロイヌナズナ根系の栄養塩応答-リン酸と鉄の相互作用口頭発表(一般)
- 19th International Conference on Arabidopsis Research, 2008年07月, 英語, 19th International Conference on Arabidopsis Research, Montreal, Canada, 国際会議Analysis of the rlr50 mutant that shows reduced lateral root formation in Arabidopsis thaliana.口頭発表(一般)
- 日本植物生理学会第49回年会, 2008年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 札幌, 国内会議植物細胞インタクト液胞を用いたメタボローム解析口頭発表(一般)
- 第49回日本植物生理学会年会, 2008年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 札幌, 国内会議植物インタクト液胞を用いたメタボローム解析口頭発表(一般)
- 第49回日本植物生理学会, 2008年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 札幌, 国内会議高等植物における根の発生機構に関する分子遺伝学的研究[招待有り]口頭発表(招待・特別)
- 日本植物生理学会第49回年会, 2008年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 札幌, 国内会議塩ストレス下における植物細胞液胞への塩蓄積機構の解析口頭発表(一般)
- 第49回日本植物生理学会, 2008年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 札幌, 国内会議リン酸欠乏時のガラクト脂質合成とスルホ脂質合成はSLR/IAA14とARF7/19により異なる制御を受ける口頭発表(一般)
- 日本植物生理学会第49回年会, 2008年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 札幌, 国内会議ムジナモ捕虫葉における膨圧運動機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物生理学会第49回年会, 2008年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 札幌, 国内会議シロイヌナズナ葉内におけるイオン輸送及び分配様式の解析口頭発表(一般)
- 日本植物生理学会第49回年会, 2008年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 札幌, 国内会議シロイヌナズナ培養細胞におけるフィチン酸生合成機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物生理学会第49回年会, 2008年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 札幌, 国内会議シロイヌナズナ側根形成で機能するLBD16 の下流遺伝子の探索口頭発表(一般)
- 日本植物生理学会第49回年会, 2008年03月, 日本語, 日本植物生理学会, 札幌, 国内会議シロイヌナズナ液胞におけるイオン輸送体の局在解析口頭発表(一般)
- ERATO公開セミナー, 2007年12月, 日本語, 基礎生物学研究所ERATO長谷部プロジェクト, 基礎生物学研究所, 国内会議高等植物におけるオーキシンを介した側根形成の制御機構口頭発表(招待・特別)
- 第53回岩手大学フォーラム, 2007年09月, 日本語, 岩手大学フォーラム, 岩手, 国内会議高等植物におけるオーキシンを介した根の発生機構口頭発表(招待・特別)
- 日本植物学会第71回大会, 2007年09月, 日本語, 日本植物学会, 野田, 国内会議ムジナモ捕虫葉における膨圧運動機構の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第71回大会, 2007年09月, 日本語, 日本植物学会, 野田, 国内会議シロイヌナズナ葉内におけるイオン輸送における物質輸送及び分配様式の解析口頭発表(一般)
- 日本植物学会第71回大会, 2007年09月, 日本語, (社)日本植物学会, 野田, 国内会議シロイヌナズナ培養細胞におけるイノシトールリン酸生合成機構の解析口頭発表(一般)
- 東京大学理学部生物学科植物学コース、生物科学セミナー, 2007年06月, 日本語, 東京大学, 東京, 国内会議「植物におけるオーキシンを介した根の発生機構」口頭発表(招待・特別)
- Utrecht University, 2007年05月, 英語, Utrecht University,, Netherland, 国際会議Regulation of lateral root formation by Aux/IAA-ARF signaling in Arabidopsis口頭発表(招待・特別)
- Department of Plant Systems Biology, 2007年05月, 英語, Department of Plant Systems Biology, Ghent University, Belgium, 国際会議Regulation of lateral root formation by Aux/IAA-ARF signaling in Arabidopsis口頭発表(招待・特別)
■ 共同研究・競争的資金等の研究課題
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 基盤研究(B), 神戸大学, 2025年04月 - 2028年03月, 研究代表者根とシュートのメリステム運命決定・維持の新規メカニズムの解明
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 基盤研究(B), 国立研究開発法人国際農林水産業研究センター, 2021年04月 - 2024年03月根の成長制御におけるアブシジン酸の新しい役割
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 新学術領域研究(研究領域提案型), 奈良先端科学技術大学院大学, 2019年06月 - 2024年03月細胞システムの自律周期とその変調が駆動する植物の発生本年度は、年度開始当初から新型コロナウィルス感染症により対面でのディスカッションや海外渡航が禁止され、総括班活動を様々な制限下で行う必要が生じたが、総括班員の情報学者の主導により、オンラインコミュニケーションツールを積極的に導入することで、円滑かつ活発な総括班活動を展開した。まず本年度から参画した25の公募研究班について、共同研究の可能性を基に6つのグループに分けてオンラインミーティングを開催した。これにより初対面の研究者間においても多くの学際融合研究が開始された。年度開始当初にはまだ普及していなかったZoomやSpatial chatといったツールを積極的に用いて領域会議や総括班会議、若手ワークショップを開催した。オンライン会議開催のノウハウをレポートにまとめて領域HPで公開することで、研究者コミュニティに貢献した。 国際活動支援のうち若手研究者の海外派遣支援は中止を余儀なくされた。また神戸大学で行う予定で準備していた国際シンポジウム"From Cellular Dynamics to Morphology"については、招聘を予定していたスピーカーの同意を得てウェビナーシリーズとして開催した。これには世界30か国から600名を超える参加者があり、非常に好評であった。 若手ワークショップもオンライン形式で開催し、大学院生や研究員による発表に加え、領域外の研究者による融合研究セミナーや、キャリア支援セミナーを開催した。また若手6チームにより融合研究コンペを開催した。数理解析道場と画像解析道場もオンラインで並行して開催した。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 新学術領域研究(研究領域提案型), 神戸大学, 2019年06月 - 2024年03月, 研究代表者側根新生の時空間的周期性と可塑性を実現する仕組みの解明維管束植物の根は,内生・外生の要因に応じた側根形成を通じて根系構造を可塑的に構築する。側根は一次根に沿って一定の間隔で作られるが,その周期性は根端付近における数千遺伝子の発現振動の総体として観測されるRoot clockに相関している。この時間周期が一次根軸に沿って一定の間隔でオーキシン応答極大を形成し,これが予定分岐部位(プレブランチサイト:PBS)へと運命づけられる。根系構造の可塑性は,Root clock の時間振動が根に沿ったPBS の空間周期に変換され,さらにPBS から側根原基が形成される過程に何らかの変調作用が入力されることで生み出される。本研究では,側根新生の長時間広域発光・蛍光イメージング系や変異体・マーカー系統を画像解析,数理モデル解析,人間拡張工学と融合させ,Root clock に依存した側根形成の空間的周期性の制御とその変調機構を明らかにする。2020年度の主な成果を以下に示す。 1)根端で周期的に発現変動する発光・蛍光レポーター系統(DR5:LUC/VENUS)を用いた高精度長時間広域イメージングによる観察測定系を確立するため,根の成長を維持しながら観察できる横倒し発光・蛍光顕微鏡を構築した。 2)DR5:LUCを用いて可視化された根端オシレーションゾーンのオーキシン応答の振動について半自動化して測定する方法を構築した。 3)PBS新生の時空間的周期性や根端のDR5:LUC活性が異常な変異体等を複数系統単離し,PBS密度の高い変異体2系統,およびPBS密度が低下し,側根新生数も低下する変異体1系統の原因遺伝子候補を絞り込んだ。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 基盤研究(B), 山口大学, 2020年04月 - 2023年03月酸化シグナルを運ぶ活性カルボニル種が植物細胞に特異的応答を引き起こすメカニズム1) 青色光による気孔開口をRCSが阻害する現象を発見し,青色光シグナル伝達経路におけるRCSの作用点はH+ATPaseの活性化メカニズムの近傍であることを明らかにした。(論文投稿中) 2) ホウレンソウ葉緑体チラコイド膜,包膜に存在するカルボニル種を解析し,包膜には主としてリポキシゲナーゼ反応に由来するC6アルデヒドが存在するのに対し,チラコイド膜にはC3-C11の多様なカルボニル種が含まれており,それらのチラコイド膜内の濃度はmMレベルであることを明らかにした。一方,ストロマに存在するカルボニル種の濃度は極めて低く,ストロマでは可溶性のカルボニル消去物質及び消去酵素によってRCSレベルが極めて低く抑えられていることを明らかにした。(論文投稿中) 3) 植物がもつRCS消去物質として,新たにニンニクからアリインを同定した。アリインはアミノ基にRCSを2分子付加させて消去すること,またそのRCS消去能は,動物由来のRCS消去ペプチドであるカルノシンより高いことを明らかにした。(論文執筆中) 4) RCS消去酵素2-アルケナールレダクターゼ(AER)を葉緑体に局在させる組換えシロイヌナズナを作成した。また,アクロレインを特異的に消去するグルタチオントランスフェラーゼ(GST)アイソザイムTau19(GSTU19)を葉緑体及び細胞質に局在させる組換えシロイヌナズナを作成した。さらにアクロレインと4-ヒドロキシノネナール(HNE)に特異的なGSTU17を葉緑体,細胞質,アポプラストに局在させる組換えシロイヌナズナを作成した。 5) 高塩分が引き起こす酸化ストレスにおいて,アクロレイン,HNE, (E)-2-ペンテナール植物体内で増大し発芽や生長を抑制することを明らかにした。(論文投稿中) 6) 植物の小胞体ストレスに伴いRCSが増大することを明らかにした。(論文投稿中)
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 基盤研究(B), 神戸大学, 2018年04月 - 2021年03月, 研究代表者植物器官形成の開始位置を決める局所的オーキシン蓄積の確立機構本研究は、植物器官形成の開始位置を決定する局所的なオーキシン蓄積の確立機構を解明することを目的として、側根形成の開始頻度が顕著に低下するシロイヌナズナfewer roots(fwr)変異体の原因遺伝子である低分子量ADP-ribosylation factor (Arf) GTPaseのグアニンヌクレオチド交換因子(Arf GEF)をコードするGNOMに注目し、fwr変異体とfwrの側根形成能を回復させるfspサプレッサー変異体を用いた生理学的・発生学的解析を行った。その結果、側根形成開始におけるGNOMを介した局所的オーキシン蓄積の確立機構の一部を明らかにした。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 基盤研究(B), 神戸大学, 2015年04月 - 2019年03月植物における栄養繁殖器官の発生開始を制御する分子メカニズム多くの植物は種子や胚を経由せず栄養器官から親個体のクローン個体を発生する栄養繁殖という繁殖様式をもつ。しかし栄養繁殖の分子メカニズムに関する知見はほとんどない。ゼニゴケは栄養成長の本体である葉状体上に杯状体という器官を形成し、その中に百個以上もの無性芽という栄養繁殖器官を形成することで栄養繁殖する。本研究では、無性芽発生の場となる杯状体の形成に必須なR2R3-MYB型転写因子GCAM1の同定に成功し、その機能メカニズムについて解析した。また杯状体底部における無性芽発生の開始に植物Rho型低分子量Gタンパク質Ropの活性化を担うPRONE型RopGEFが必須の役割を持つことを明らかにした。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 新学術領域研究(研究領域提案型), 東京大学, 2013年06月 - 2018年03月植物発生ロジックの多元的開拓本総括班では、計画班及び公募班の以下の研究活動を全面的にサポートすることで領域全体の成果達成に貢献した。 本課題では、植物の発生ロジックの解明を目指した。優秀な若手を中心とした公募班研究と一丸となり未開拓の分野を切り開いた成果として、植物発生・成長の中心的問題である植物の幹細胞性を与える仕組み、細胞の分化、増殖と配置の仕組み、成長相転換の仕組みなどを牽引する鍵遺伝子を数多く見出し、その機能を解くことができた。また遺伝子冗長性が極めて低いゼニゴケを新たなモデルとして確立した。さらに代謝に注目し、発生・成長を調節する新奇シグナル分子を探索し、新たに「代謝発生生物学」の分野を打ち立てることに成功した。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 新学術領域研究(研究領域提案型), 神戸大学, 2013年06月 - 2018年03月, 研究代表者根の成長・発生ロジックの解明維管束植物の根は、土壌からの水分・養分の吸収、地上部の支持など、個体の成長・発生にとって重要な役割を果たす。本研究は、「根の成長・発生ロジック」の解明を目的として、モデル植物のシロイヌナズナおよびミチタネツケバナを用いて、1)側根の発生ロジック、2)放射パターン形成ロジック、および、3)根の成長・発生を制御する未知の代謝システム、について研究を行った。特に、1)において、主根先端部において側根を形成する能力を持つ部位から、根を分岐させる細胞(側根創始細胞)が特定・選択される際に、植物ホルモン・オーキシンおよびペプチドホルモンのシグナリングを介した側方抑制の機構が存在することを明らかにした。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 挑戦的萌芽研究, 神戸大学, 2015年04月 - 2017年03月, 研究代表者茎の内皮形成機構の解明に向けた研究基盤の整備植物の茎の横断面には、外側から表皮・皮層・内皮などの組織が同心円状に配置する。このような組織の放射パターンは茎の先端の未分化な組織(茎頂分裂組織)で形成されるが、その形成機構はほとんど明らかにされていない。本研究は、茎の放射パターン形成の機構を理解することを大きな目標として、茎の内皮層に注目し、研究材料の工夫と近年開発された観察技術の利用を通して、茎頂分裂組織における内皮幹細胞および内皮形成に関連する遺伝子群を同定することによって、茎の内皮形成機構の解明に向けた研究基盤の整備をおこなった。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 新学術領域研究(研究領域提案型), 神戸大学, 2010年04月 - 2016年03月環境感覚を支える植物液胞動態とその適応機構温度、必須栄養素のリン酸、病虫害応答において、細胞膜、単膜系オルガネラ、構成タンパク質、代謝物質や無機イオン類が、これらの外部環境の変化に対して変動する分子機構を解析した。1.セントポーリアの葉で温度降下時に生じる柵状細胞の傷害が、機械感受性イオンチャンネルによるCa2+の流入と、それによる液胞膜の崩壊が原因であることを明らかにした。2.シロイヌナズナ根の異なるリン濃度での応答過程の解析を行った。ポプラが落葉時に枝にリン回収物質としてフィチン酸を貯めることを明らかにした。3.病虫害応答に働くミロシン細胞の分化過程と、光や重力応答にアクチン・ミオシン系が重要であることを明らかにした。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 挑戦的萌芽研究, 神戸大学, 2013年04月 - 2015年03月植物細胞における生体膜共役輸送系の分子基盤と進化を探る生体膜共役輸送系は、栄養物質や老廃物の輸送に働き、細胞存続の基盤となる。共役イオンとしてH+共役型とNa+共役型が知られているが、陸上高等植物はH+共役型である。我々は祖先植物シャジクモのリン酸輸送系はNa+共役型であることを報告し、本研究においてその輸送系遺伝子の全長決定に成功した。配列系統解析から、シャジクモのリン酸輸送体は、全ての陸上植物の祖先型となり、アオミドロなどと一つのクレードを形成した。配列情報の解析から、H+輸送に必要とされるアミノ酸残基が保存されておらず、Na+共役であることが強く示唆された。また、最初の陸上植物と考えられているゼニゴケについても系統、生理解析を進めている。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 若手研究(B), 神戸大学, 2012年04月 - 2015年03月ポストゲノム解析の統合による、植物液胞新規代謝機能の解明液胞は植物細胞特有の細胞内小器官であり、植物細胞体積の約8割を占め、さまざまな物質を蓄積していることが知られている。本研究では、薬用植物として著名なニチニチソウの液胞に蓄積するアルカロイドの生合成に着目した。既存研究から、アルカロイドは、植物の様々な組織や細胞小器官を経て合成されることが示されていた。研究代表者らは、実際に蓄積するアルカロイドやその中間体の分布を、新技術を用いて解析した結果、これまでの報告とは異なるアルカロイドの分布を確認することができ、ニチニチソウ液胞における新規の代謝機能の存在が示唆された。今後、効率のよいアルカロイド生合成システムの開発につなげたい。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 特定領域研究, 名古屋大学, 2007年07月 - 2014年03月植物メリステムと器官の発生を支える情報統御系本研究の目的は、平成19年度から24年度まで続いた特定領域研究「植物メリステムと器官の発生を支える情報統御系」の成果を取りまとめることである。具体的には、第一に平成25年度9月に予定されていた事後評価ヒアリングのための準備をすること、冊子体による成果報告書を作成することである。第二の目的は、成果を広く社会に知らせるために、植物の形づくりに関する啓蒙書を出版することである。第三の目的は、新たに発足する新学術領域研究グループと合同シンポジウムを開催し、この分野の専門家に成果を公開することである。このような研究活動の結果、事後評価ヒアリングではA+ (研究領域の設定目的に照らして、期待以上の成果があった)の評価を得た。その後、これらの成果を取りまとめて冊子体成果報告書を作成した。さらに我々は第二の目的のために、平成25年度から新規に採用された高等学校「生物」の教科書の解説書(植物編)を作成し出版した。新生物教科書では、最新の成果が多数盛り込まれており、多くの高校教師が新しい知識を求めるようになった。我々の特定領域研究は、新教科書の植物に関する内容をほとんどカーバーしているので、高校教師の疑問に答えるための解説書を作成することを計画した。これは、本特定領域研究の成果を社会に還元する新しいタイプの活動となると考えた。ほぼ一年間の編集活動の結果、平成26年3月に講談社から「高校生物解説書 授業でそのまま使えるPowerPoint付き」を出版した(監修 : 町田泰則、岡田清孝、山本興太朗、執筆者 : 16名の班員による)。第三の目的であった合同シンポジウムは実現できなかったが、平成26年10月の新学術領域研究「植物発生ロジック」の立ち上げシンポジウムにおいて、本特定研の主な班員が研究発表をした。これにより、事実上植物の分子発生遺伝学分野の研究者に我々の成果を広めることができた。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 基盤研究(B), 神戸大学, 2010年04月 - 2013年03月核ー細胞質間輸送系を介したオーキシン応答の制御機構オーキシンは植物の成長発生にとって重要な植物ホルモンの一つである。オーキシン応答は、その生体内分布の調節と遺伝子発現制御に基づくとされているが、その機構の全貌は不明である。これまでシロイヌナズナの側根欠失変異体を用いた遺伝学的解析から、側根形成のオーキシン応答に核-細胞質間輸送系で働くHASTY/exportin-5タンパク質が関わることが見出された。本研究は、核-細胞質間輸送系を介したオーキシン応答の制御機構を明らかにすることを目的として、HASTYや関連因子の解析を行ない、側根形成におけるオーキシン応答制御に特定のマイクロRNAの生合成や核-細胞質間輸送系が深く関わることを強く示唆した。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 特定領域研究, 京都大学, 2007年07月 - 2013年03月メリステムにおける遺伝子産物の発現と細胞内動態の高感度解析班員からの依頼を受け、網羅的な遺伝子発現解析を行い、そのデータを提供することによる支援をおこなった(のべ39研究室・計143件)。これらの解析から、ペプチドと植物ホルモンとのシグナル伝達のクロストークの発見をはじめとする、植物メリステム研究に寄与する数多くの成果が挙がった。また、BiFCベクターの配布と共焦点レーザー顕微鏡によるイメージング解析支援(15研究室・計15件)により、メリステム機能に関わる重要な制御蛋白質間の植物細胞内における相互作用が明らかになり、植物メリステム研究に寄与する成果に結びついた。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 特定領域研究, 神戸大学, 2007年07月 - 2013年03月, 研究代表者根系構築の基礎となる根端メリステムの発生機構植物の根系は土壌から水分・養分を吸収し、地上部を支えるなど、植物個体の生育にとって重要な役割を果たす。本研究は、根(根系)の発達を支える根端メリステムの発生機構の解明を目的として、シロイヌナズナ用いた分子遺伝学的研究を行った。本研究により、植物ホルモンのオーキシンの下流で発現誘導されるLBD/ASL と呼ばれるタンパク質群のメンバーが、側根の形成を引き起こす非対称な細胞分裂を制御することを明らかにした。また、側根メリステムの形成・維持に働く新たな遺伝子・タンパク質を複数見出すことに成功した。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 若手研究(B), 神戸大学, 2009年 - 2010年側根形成過程におけるオーキシン誘導性LBD/ASLファミリーの機能解析シロイヌナズナの側根形成は原生木部に接した特定の内鞘細胞の非対称分裂によって開始される.本研究では,根においてオーキシンにより誘導される5つのLBD/ASL遺伝子群が側根形成において重複した機能をもつことを示した.また,オーキシン誘導性LBD/ASL遺伝子群は,特定の内鞘細胞における遺伝子発現制御を介して,側根創始細胞における細胞分裂の非対称性の確立に必要であり,その後の側根形成開始に重要であることを明らかにした.
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 若手研究(B), 神戸大学, 2007年 - 2008年シロイヌナズナのオーキシン応答に関わるLBD/ASL遺伝子群の機能解析シロイヌナズナのLBD/ASL遺伝子群(転写因子をコード)に属するLBD16,17,29,33は、根の側根形成開始部位で発現し、その発現はオーキシンによって誘導される。多重変異体などを用いた解析から、オーキシンを介した側根形成において3つ以上のLBD遺伝子による重複した機能が重要なことが強く示唆された。また、LBD16によって転写が活性化する下流遺伝子を多数同定し、そのうち側根形成開始部位でオーキシンによって誘導される新規遺伝子を見いだした。
- 日本学術振興会, 科学研究費補助金/特定領域研究, 特定領域研究, 神戸大学, 2006年 - 2008年植物細胞の生理機能を支える細胞内低分子環境のうち、無機イオンとしてのH^+、リン酸、Na^+、Ca^<2+>、Znなどに注目し、外部環境の変化に対して、イオン濃度がどのように制御されているかを、特に液胞および液胞小胞系の機能との関連で解析した。その結果、1.高塩環境下における液胞への塩蓄積機構と液胞構造のダイナミックな変化、2.イノシトールリン酸の代謝と液胞への蓄積機構、3.Ca^<2+>ホメオスタシスの分子機構、4.亜鉛集積と液胞ダイナミズム、5.液胞膜H^+輸送ピロホスファターゼの機能の詳細を明らかにすることに成功した。競争的資金
- 日本学術振興会, 科学研究費補助金/基盤研究(B), 基盤研究(B), 神戸大学, 2006年 - 2006年リンは,カリウム,窒素とともに,植物成長における三大栄養素の一つである.土壌中には,植物が利用可能な可溶性無機リン酸は極く少量のため,多くの植物は常にリン酸飢餓状態にある.そこで植物は,リンの利用を効率化する様々な生理機構を進化させてきた. 本研究では、その生理機構の一つとして、体内に取り込まれたリン酸が,老化葉組織から若年葉組織、あるいは異なる組織間を移行していくリン酸「転流」機構を,老化葉組織における蓄積リン酸の放出,維管束における輸送,若年葉組織における取り込みの三点に絞り,それぞれの組織,細胞でどのような膜輸送系が機能しているかを検討してきた。 この三年間で、シロイヌナズナ植物体を用いて、転流に関与すると思われる遺伝子を複数見出し、それらの変異体の転流に異常が生じることを明らかにした。また、葉組織において維管束から、葉肉細胞にリン酸がどのように分配されているのかを明らかにするために、葉肉細胞と維管束細胞を個別に生きたまま単離する系を確立した。さらに、リン酸を取り込んだ細胞において、細胞質のリン酸濃度維持に重要な働きをする液胞膜のリン酸輸送調節機構を明らかにするとともに液胞膜のプロテオーム解析を進め、新規のタンパク質を多数見出し、現在その機能同定を進めている。 また、オオムギを材料に、一枚の葉の中で生じるリン酸イオン勾配を確認し、導管内では維管束走向に従った濃度勾配が存在するが、葉組織ではそのような勾配が生じないこと、さらに、導管末端では、排水組織のみでリン酸が強く吸収されることと、吸収されたリン酸が24時間で、根の末端まで再転流することを見出した。同時に、一枚の葉の中におけるリン酸輸送体の発現量の変動をリアルタイムPCRで確認し、オオムギのリン酸輸送体が葉全体にわたってほぼ一様に発現するが、一部輸送体では排水組織で特異的に発現し、それが排水組織の強いリン酸吸収能をもたらしていることを見出した。 最後に、このようなリン酸転流過程が、自然界でどのように機能しているかを、水草を用いて分子レベルと生理レベルから明らかにした。競争的資金
- 日本学術振興会, 科学研究費補助金/特定領域研究, 特定領域研究, 2005年 - 2006年, 研究代表者高等植物における側根形成の分子機構を明らかにするために、以下の研究を行った。 1、側根形成開始を制御するARF7,ARF19の標的遺伝子の機能解析 側根形成開始を制御する転写因子ARF7,ARFl9の標的遺伝子LBD16/ASL18およびLBD29/ASL16に関して、側根形成やオーキシン応答における機能解析を行った。その結果、LBD16/ASL18の過剰発現はarf7 arf19二重変異体の側根形成能の低下を部分的に相補するとともに、根の伸長に対するオーキシン感受性を一部回復させた。また、LBD16/ASL18は核に局在するが、転写抑制ドメインを付加したLBD16-SRDX過剰発現は、側根形成能を低下させるだけでなく、1AA5などのオーキシン誘導性遺伝子の発現を阻害した。これらの結果は、LBD16/ASL18がオーキシンを介した転写調節に関わる可能性を強く示唆した。 2、側根形成を負に制御するクロマチンリモデリング因子PICKLE/SSL2の解析 slr変異体(1AA14遺伝子の機能獲得変異体)の側根欠失表現型を抑圧する変異体ssl2の原因遺伝子は、動物のクロマチンリモデリング因子Mi-2の相同タンパク質PICKLE (PKL)をコードする。slr変異によるARF7,ARF19の下流遺伝子の転写抑制に、PKLとHDAC活性を介したクロマチンリモデリングが関わることが強く示唆された。本年度、これらの成果を論文にまとめて公表した。 3、側根形成能が顕著に低下するcrane変異体の解析 側根形成能が顕著に低下する優性変異体crane-1(cra-1),cra-2を単離し解析を行った。その結果、CRA遺伝子が1AA18をコードすること、および1AA18が1AA14/SLRとともにARF7,ARF19の1能抑制を介して側根形成に関わることが強く示唆された。競争的資金
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 特定領域研究, 奈良先端科学技術大学院大学, 2002年 - 2006年シロイヌナズナにおける茎頂分裂組織構築の分子機構1)SAM形成に関わるるCUC1(CUP-SHAPED-COTYLEDON1),CUC2遺伝子の下流候補遺伝子をマイクロアレイ解析で多数同定し、それらに対して心臓型胚における発現をin situ hybridizationで調べた。その結果、これらの多くの遺伝子が、CUCが発現する所で発現しており、cuc1cuc2二重変異株胚の対応する領域で発現が見られなかった。ただ、これらの中には、野生株でもcuclcuc2でも胚の中で他の領域で特異的な発現を示す遺伝子が幾つかあった。そして、それらの遺伝子の一つであるLAS(LATERAL SUPPRESOR)をCUC2のプロモーターで発現させた所、cuc2cuc3の地上部が示す異常を抑圧した。これは、LASがCUCの下流でSAM形成に関わる事を示唆する。 2)側根基部の細胞分裂を制御するPUCHI遺伝子の変異株は、地上部において花茎の基部に一対の突起物を生じ、その間に構造物が出来る。分子遺伝学的な解析により、この突起物は托葉である事が強く示唆された。また、花芽におけるPUCHIの発現を調べた所、花芽初期に一過的に花芽の上側に発現する事が判った。これらの結果と、野生株と変異株の初期の花芽の形態学的観察の結果から、PUCHIはシロイヌナズナの野生株において花芽分裂組織が形成される時、その根元で包葉が発達するのを阻害している可能性が示唆された。 3)シロイヌナズナの胚頂端部において、オーキシンの細胞外排出タンパク質PIN FORMED1(PIN1)の分布が2枚の線対称な子葉構築に関わり、PID(PINOID)はPIN1タンパク質の働きを後期心臓型胚期から強める事をこれまでに明らかにした。我々はpidエンハンサーmacchibou(mab)1-4を単離し解析しているが、MAB4はNPH3ファミリーのタンパク質をコードしており、PIN1タンパク質の細胞内局在に関与する事を明らかにした。そして、MAB4タンパク質が主として細胞内の機能未知の小胞に局在し、それらの小胞にPIN1やPIDも共局在する事も明らかにした。
- 科学研究費補助金/特定領域研究, 科学研究費助成事業, 特定領域研究, 奈良先端科学技術大学院大学, 2003年 - 2004年, 研究代表者高等植物における側根形成の分子機構を解明する目的で、シロイヌナズナ側根欠失優性変異体slrと原因遺伝子IAA14、オーキシン応答性転写調節因子ARF7/ARF19、およびslrのサプレッサー変異体ssl2と原因遺伝子SSL2/CHR6を用いた分子遺伝学的研究を行い、以下の成果を得た。 1、側根形成を制御するSLR/IAA14とARF7、ARF19の機能解析 (1)IAA14がARF7、ARF19タンパク質と相互作用することを酵母two-hybrid実験において確認した。これらの結果などから、ARF7、ARF19が側根形成促進に働き、IAA14がARF7/ARF19の負の調節因子として働くことが強く示唆された。 (2)側根形成に関わる遺伝子群を同定する目的で、野生型とslr変異体の根における発現プロファイルをDNAマイクロアレイにより比較・解析した(ベルギーBeeckmanらと共同研究)。その結果、細胞周期関連遺伝子、オーキシン代謝や輸送に関わる遺伝子がslrで抑制されていることがわかった。 2、側根形成に関わるクロマチンリモデリング因子SSL2/CHR6の解析 (1)ssl2 arf7 arf19三重変異体とssl2 slr arf7 arf19四重変異体の作出と解析を行った結果、ssl2変異がarf7 arf19二重変異体の側根形成能を回復させないこと、およびssl2 slr二重変異体の側根形成能がARF7、ARF19に依存することが明らかとなった。したがってSSL2は側根形成を促進するARF7、ARF19の直接の標的遺伝子の発現に関わると考えられる。 (2)slrとssl2 slr変異体を用いたマイクロアレイ解析を行い、ssl2変異による側根形成の回復に伴って発現する遺伝子群を複数同定した。競争的資金
- 科学研究費補助金/若手研究(B), 科学研究費助成事業, 若手研究(B), 奈良先端科学技術大学院大学, 2003年 - 2004年, 研究代表者高等植物におけるオーキシンを介した根の形態形成、特に側根形成の分子機構を解明する目的で、シロイヌナズナ側根欠失優性変異体slrと原因遺伝子IAA14、オーキシン応答性転写調節因子ARF7/ARF19を用いた分子遺伝学的研究を行い、以下の成果を得た。 1、側根形成を制御するSLR/IAA14とARF7、ARF19の機能解析 (1)IAA14がARF7、ARF19タンパク質と相互作用することを酵母two-hybrid実験において確認した。これらの結果などから、ARF7、ARF19が側根形成促進に働き、IAA14がARF7/ARF19の負の調節因子として働くことが強く示唆された。 (2)側根形成に関わる遺伝子群を同定する目的で、野生型とslr変異体の根における発現プロファイルをDNAマイクロアレイにより比較・解析した(ベルギーBeeckmanらと共同研究)。その結果、細胞周期関連遺伝子、オーキシン代謝や輸送に関わる遺伝子がslrで抑制されていることがわかった。 2、組織特異的なオーキシン応答と側根形成との関係についての解析 根のどの組織で発現する変異型IAA14タンパク質(mIAA14)が、側根形成抑制に関わるのかを明らかにするために、根の組織特異的なプロモーターの制御下でmIAA14タンパク質を発現する形質転換体を作出し解析した。根の内鞘を含む中心柱、あるいは原生木部に接する内鞘細胞のみで特異的にmIAA14を発現する植物体では、側根形成が著しく抑制された。一方、側根形成初期から原基内部で異所的にmIAA14-GRを発現する植物においても、異常な分裂組織構造を持つ側根が形成された。これらの結果から、組織特異的なオーキシン応答が側根形成開始や側根原基発生過程に重要であることが明らかとなった競争的資金
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 若手研究(B), 奈良先端科学技術大学院大学, 2001年 - 2002年, 研究代表者高等植物におけるオーキシンを介した根の形態形成機構の分子遺伝学的研究オーキシンを介した根の形態形成の分子機構を解明する目的で、シロイヌナズナから単離したオーキシン耐性を示す側根欠失変異体solitary-root (slr)とその原因遺伝子IAA14の解析を主に行ない、以下の成果を得た(1、2の成果はThe Plant Journal誌に論文発表した)。 1、レポーター遺伝子(IAA14遺伝子上流プロモーター配列の下流にGUSおよびGFPを繋いだキメラ遺伝子)を用いてIAA14遺伝子の発現解析を行ない、IAA14が根の先端部では表皮で、側根形成領域では維管束組織で発現していることを明らかにした。 2、IAA14とGFPを融合させたタンパク質を発現する植物を作出し、IAA14タンパク質の細胞内局在を調べた。その結果、野生型IAA14-GFPタンパク質の蓄積はほとんど確認されず不安定だが、変異型IAA14-GFPタンパク質は安定に核に局在することから、slr変異によりIAA14タンパク質が安定化することを明らかにした。 3、側根形成においてSLR/IAA14と遺伝的に相互作用する遺伝子座を同定する目的で、slr変異体の側根欠失表現型を抑圧するサプレッサ-変異体の単離を試み、IAA14以外の遺伝子座に変異を持つサプレッサ-変異体suppressor of slr 1(ssl)、ssl2、ssl3を新たに単離した。これらssl slr二重変異体では側根形成のみが回復し、他のslrの表現型(根毛形成異常・重力屈性異常)が回復しないことから、SSL遺伝子群は側根形成特異的にSLR/IAA14と遺伝的に相互作用すると考えられる。 4、マップベースクローニングによりSSL2遺伝子の同定に成功し、SWI2/SNF2型クロマチンリモデリング因子CHDファミリーに属するPICKLE/GYMNOSと同一産物をコードすることを発見した。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 基盤研究(A), 奈良先端科学技術大学院大学, 1998年 - 1999年シロイヌナズナ内皮細胞の分化に関する分子生物学的研究シロイヌナズナの根、胚軸、花茎で内皮細胞の分化に関係する遺伝子座を2つ同定して遺伝子とSGR7/SHR遺伝子と名付け、そのうちの一つのSGR1/SCRを既に単離した。この遺伝子はbZIP型の転写因子をコードしていた。本研究で次の事が明らかになった。 1.野生株の地上部におけるSGR1/SCR遺伝子の発現をin situ hybridizationならびにアミロプラストの染色で調べた。頂芽分裂組織の直下の細胞で内皮細胞の分化が観察されたが、葉等の側生器官があるために根の場合程明瞭に最初の分化細胞の同定を行うことが困難であった。また、SGR1/SCRプロモーターとマーカー遺伝子(GUS,GFP)をつなげたキメラ遺伝子を作成し、それをシロイヌナズナの野生株に導入したトランスジェニック植物を作製しその発現がin situで得られた発現結果と一致する事を確かめた。 2.SGR7/SHR遺伝子の単離をおこないこの遺伝子もSGR1/SCRと同じ遺伝子ファミリーに属する事を明らかにした。 3.sgr1/scrを上部のメリステムの形成異常変異株の一つであるpinとかけ合わせた。また、重力屈性異常変異株sgr4と掛け合わせた。さらにpinとsgr4二重変異株の作出を行った。その結果、SGR1/SCRとPINあるいはSGR4の間に直接の遺伝的な関連は見当たらなかった。しかし、pinとsgr4二重変異株では内皮細胞層の増加が観察されSCR/SGR1の発現か機能が異常になった可能性が示唆された。
- 講師, 夢ナビLIVE 大阪会場, 2019年07月植物ホルモンによる形作り(夢ナビTALK)
- 講師, サイエンスカフェ神戸, 2009年07月25日植物のからだづくりはどうやって決まるのか? 〜モデル植物を用いた研究の最前線〜
