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Search DetailsFUKAKI HidehiroGraduate School of Science / Division of BiologyProfessor
Researcher basic information
■ Research news- 18 Jan. 2019, Plant peptide helps roots to branch out in the right places
- 26 Sep. 2016, How plants grow new lateral roots -New method uses 3D live imaging-
- 植物生理学・発生学
- 植物分子遺伝学
- 器官発生
- 組織分化
- 細胞分裂
- 成長運動
- 側根形成
- カルス形成
- シュート再生
- パターン形成
- 幹細胞
- 重力屈性
- 植物ホルモン
- オーキシン
- ペプチドホルモン
- ヘムタンパク質
- DNA損傷応答
- ライブイメージング
- シロイヌナズナ
- ゼニゴケ
- タネツケバナ属
- シクラメン属
- Life sciences / Plants: molecular biology and physiology
- Life sciences / Developmental biology
- Life sciences / Genetics
- Life sciences / Morphology, anatomy
- Jun. 2024 - Present, 公益社団法人日本植物学会, 代議員
- Jan. 2014 - Present, 一般社団法人日本植物生理学会, 代議員
- Jan. 2024 - Dec. 2025, 近畿植物学会, 会長
- Jan. 2018 - Dec. 2025, Journal of Plant Research, Editorial Board
- Jan. 2023 - Dec. 2024, 一般社団法人日本植物生理学会, 年会委員長
- Jun. 2018 - May 2020, 公益社団法人日本植物学会, 代議員
- Apr. 2013 - Dec. 2016, Plant & Cell Physiology, Editorial Board
- Jan. 2013 - Mar. 2015, 一般社団法人日本植物生理学会, 運営委員
- Jan. 2013 - Dec. 2014, 公益社団法人日本植物学会, 広報委員
- Jan. 2009 - Dec. 2012, Journal of Plant Research, Editor
- Jan. 2008 - Dec. 2011, 日本植物生理学会, 評議員, 日本植物生理学会
- Jan. 2008 - Dec. 2008, Journal of Plant Research, Editorial Board
Research activity information
■ Award- Oct. 2022 学長表彰(財務貢献者)神戸大学
- Oct. 2021 神戸大学, 学長表彰(財務貢献者)
- Oct. 2020 神戸大学, 学長表彰(財務貢献者)
- Oct. 2018 神戸大学, 学長表彰(財務貢献者)
- Mar. 2008 日本植物生理学会, 日本植物生理学会奨励賞, 高等植物における根の発生機構に関する分子遺伝学的研究Japan society
- Mar. 1998 Human Frontier Science Program Organization, Human Frontier Science Program Organization, Long-Term Fellowship Award, Radial pattern formation in plant shootsPublisher
- Dormancy is a crucial trait that allows land plants to withstand harsh terrestrial environments by pausing growth until favorable conditions return. The liverwort Marchantia polymorpha produces dormant propagules, gemmae, for asexual reproduction. The phytohormone abscisic acid (ABA) is known to regulate dormancy in the seeds of flowering plants and the gemmae of M. polymorpha. Here, we identify a basic helix-loop-helix protein, MpHYPNOS (MpHYP), as a central regulator of gemma dormancy. MpHYP expression induces germination arrest in gemmae. Transcriptome analysis revealed that MpHYP represses a D-type cyclin gene MpCYCD;1 and induces genes involved in ABA biosynthesis. Repression of MpCYCD;1 expression and germination arrest are both maintained even in an ABA-receptor mutant. By contrast, Mphyp and ABA-related mutants lacked the desiccation tolerance observed in wild-type gemmae. We propose that MpHYP regulates gemma dormancy through two parallel pathways: an ABA-independent pathway that suppresses germination through cell cycle repression, and an ABA-dependent pathway that enhances desiccation tolerance via ABA biosynthesis. These findings highlight an integrated regulatory mechanism of dormancy via phytohormonal and cell cycle control in bryophytes.May 2026, Plant & cell physiology, English, Domestic magazineScientific journal
- Elsevier BV, Oct. 2025, Current Biology, 35(22) (22), 5411 - 5425, English[Refereed]Scientific journal
- Springer Science and Business Media LLC, Aug. 2025, Nature Plants, 11(8) (8), 1558 - 1571, English[Refereed]Scientific journal
- Elsevier BV, Aug. 2025, iScience, 28(8) (8), 113106 - 113106, English[Refereed]Scientific journal
- Summary Many plants reproduce asexually by generating clonal progeny from vegetative tissues, a process known as vegetative reproduction. This reproduction mode contrasts with sexual reproduction, which enhances genetic diversity. The bryophyte Marchantia polymorpha L. adjusts its reproductive strategy in response to seasonal environmental cues, transitioning between vegetative and sexual reproduction. In this study, we identified a gene encoding the R2R3‐MYB transcription factor SHOT GLASS (MpSTG) as a critical regulator of gemma cup development. MpSTG was predominantly expressed in the gemma cup, apical notch, and sexual reproductive organs (gametangiophores). MpSTG mutation resulted in the formation of abnormal shot‐glass‐shaped structures lacking gemmae, which replaced functional gemma cups. Additionally, MpSTG‐disrupted plants failed to develop sexual reproductive organs, even under inductive conditions. In Arabidopsis thaliana, the MpSTG ortholog LATERAL ORGAN FUSION1 (AtLOF1) plays a pivotal role in lateral bud formation. We demonstrated that MpSTG can partially compensate for AtLOF1's function in lateral bud formation in A. thaliana. Our findings suggest that MpSTG is a key regulator of vegetative and sexual reproduction in M. polymorpha, and illustrate that evolutionarily conserved developmental mechanisms may function in both the gametophyte generation of bryophytes and the sporophyte generation of angiosperms.Wiley, Jul. 2025, New Phytologist, 247(6) (6), 2678 - 2696, English[Refereed]Scientific journal
- Summary In Arabidopsis thaliana, REDUCED LATERAL ROOT FORMATION (RLF), a cytochrome b5‐like heme‐binding domain (Cytb5‐HBD) protein, is necessary for proper lateral root (LR) formation. Whereas the other Cytb5‐HBD proteins in A. thaliana regulate different metabolic reactions, RLF is unique as it specifically regulates organ development. However, it remains unknown whether heme binding to RLF is necessary for its function and whether RLF orthologs in different plant species also regulate organ development. We demonstrate that RLF binds to heme in vitro and that two histidine residues, which are conserved among Cytb5‐HBD, are crucial for both heme binding and its biological function in A. thaliana. In addition, we show that MpRLF, a RLF ortholog in the bryophyte Marchantia polymorpha, also binds to heme in vitro and that MpRLF rescues the LR formation phenotype of the A. thaliana rlf mutant. Mprlfge, the loss‐of‐function mutation in MpRLF, resulted in delayed thallus growth and inhibited both gemma cup and reproductive organ formation. Our findings indicate that MpRLF is essential for proper vegetative and reproductive development in M. polymorpha. This suggests that RLF‐dependent redox reaction systems are conserved across diverse plant species and were independently co‐opted for organ development in bryophyte and seed plant evolution.Wiley, May 2025, New Phytologist, 247(2) (2), 929 - 950, English[Refereed]Scientific journal
- Lateral root (LR) formation is a postembryonic organogenesis process that is crucial for plant root system development and adaptation to heterogenous soil environments. Since the early 1990s, a wealth of experimental data on arabidopsis (Arabidopsis thaliana) has helped reveal the LR formation regulatory network, in which dynamic auxin distribution and transcriptional cascades direct root cells through their organogenesis pathway. Some parts of this network appear conserved across diverse plant species or distinct developmental contexts. Recently, our knowledge of this process dramatically expanded thanks to technical advances, from single cell profiling to whole-root system phenotyping. Interestingly, new players are now emerging in this network, such as fatty acids and reactive oxygen species (ROS), transforming our knowledge of this hidden half of plant biology.Oct. 2024, Trends in Plant Science, S1360-1385(24)00268-1, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- Rho/Rac of plant (ROP) GTPases are a plant-specific subfamily of Rho small GTP-binding proteins that function as molecular switches by being converted to the active state by guanine nucleotide exchange factors (GEFs) and to the inactive state by GTPase-activating proteins (GAPs). The bryophyteMarchantia polymorphacontains single-copy genes encoding ROP (MpROP), two types of GEFs (ROPGEF and SPIKE (SPK)), and two types of GAPs (ROPGAP and ROP enhancer (REN)). MpROP regulates the development of various organs, including the air chambers, rhizoids, and clonal propagule gemmae. While the sole PRONE-type ROPGEF, KARAPPO (MpKAR), plays an essential role in gemma initiation, little is known about thein-plantafunctions of other ROP regulatory factors inM. polymorpha. In this study, we focused on the functions of two types of GAPs: MpROPGAP and MpREN. Loss-of-function Mprengesingle mutants showed pleiotropic defects in thallus growth, air chamber formation, rhizoid tip growth, and gemma development, whereas MpROPGAP mutants showed no detectable abnormalities. Despite the distinctive domain structures of MpROPGAP and MpREN, MpropgapgeMprengedouble mutants showed more severe phenotypes than the Mprengesingle mutants, suggesting redundant functions of MpROPGAP and MpREN in gametophyte organogenesis. Interestingly, overexpression of MpROPGAP, MpREN, anddominant-negativeMpROP(MpROPDN) resulted in similar air chamber defects, as well as loss-of-function of MpRENand MpROPGAPand overexpression ofconstitutively activeMpROP(MpROPCA), suggesting importance of activation/inactivation cycling (or balancing) of MpROP. Furthermore, we proved the contributions of the sole DOCK family GEF, MpSPK, to MpROP-regulated air chamber formation. In summary, our results demonstrate a significant role of the two GAPs in the development of various organs and that the two GEFs are responsible for organogenesis through the control of the MpROP active/inactive cycle in the vegetative growth ofM. polymorpha.Cold Spring Harbor Laboratory, Oct. 2024, Development, 151(20) (20), dev202928, English[Refereed]Scientific journal
- Root development is essential for plant survival. The lack of carotenoid biosynthesis in the phytoene desaturase 3 (pds3) mutant results in short primary roots (PR) and reduced lateral root (LR) formation. In this study, we showed that short-term inhibition of PDS by fluridone suppresses PR growth in WT, but to a lesser extent in auxin mutants of Arabidopsis (Arabidopsis thaliana). Such an inhibition of PDS activity increased endogenous indole-3-acetic acid (IAA) levels, promoted auxin signaling, and partially complemented the PR growth of an auxin deficient mutant, the YUCCA 3 5 7 8 9 quadruple mutant (yucQ). The exogenous application of retinaldehyde (retinal), an apocarotenoid derived from β-carotene, complemented the fluridone-induced suppression of root growth, as well as the short roots of the pds3 mutant. Retinal also partially complemented the auxin-induced suppression of root growth. These results suggest that retinal may play a role in regulating root growth by modulating endogenous auxin levels.Oct. 2024, Plant Physiology, 196(2) (2), 1659 - 1673, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- Springer Science and Business Media LLC, May 2024, Nature Plants, 10(5) (5), 785 - 797, English[Refereed]Scientific journal
- In Catharanthus roseus, monoterpenoid indole alkaloids (MIAs) are produced through the cooperation of four cell types, with final products accumulating in specialized cells known as idioblasts and laticifers. To explore the relationship between cellular differentiation and cell type-specific MIA metabolism, we analyzed the expression of MIA biosynthesis in germinating seeds. Embryos from immature and mature seeds were observed via stereomicroscopy, fluorescence microscopy, and electron microscopy. Time-series MIA and iridoid quantification, along with transcriptome analysis, were conducted to determine the initiation of MIA biosynthesis. In addition, the localization of MIAs was examined using alkaloid staining and imaging mass spectrometry (IMS). Laticifers were present in embryos before seed maturation. MIA biosynthesis commenced 12 h after germination. MIAs accumulated in laticifers of embryos following seed germination, and MIA metabolism is induced after germination in a tissue-specific manner. These findings suggest that cellular morphological differentiation precedes metabolic differentiation. Considering the well-known toxicity and defense role of MIAs in matured plants, MIAs may be an important defense strategy already in the delicate developmental phase of seed germination, and biosynthesis and accumulation of MIAs may require the tissue and cellular differentiation.May 2024, New Phytologist, 242(3) (3), 1156 - 1171, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- Abstract Lateral root (LR) formation is an important developmental event for the establishment of the root system in most vascular plants. In Arabidopsis thaliana, the fewer roots (fwr) mutation in the GNOM gene, encoding a guanine nucleotide exchange factor of ADP ribosylation factor that regulates vesicle trafficking, severely inhibits LR formation. Local accumulation of auxin response for LR initiation is severely affected in fwr. To better understand how local accumulation of auxin response for LR initiation is regulated, we identified a mutation, fewer roots suppressor1 (fsp1), that partially restores LR formation in fwr. The gene responsible for fsp1 was identified as SUPERROOT2 (SUR2), encoding CYP83B1 that positions at the metabolic branch point in the biosynthesis of auxin/indole-3-acetic acid (IAA) and indole glucosinolate. The fsp1 mutation increases both endogenous IAA levels and the number of the sites where auxin response locally accumulates prior to LR formation in fwr. SUR2 is expressed in the pericycle of the differentiation zone and in the apical meristem in roots. Time-lapse imaging of the auxin response revealed that local accumulation of auxin response is more stable in fsp1. These results suggest that SUR2/CYP83B1 affects LR founder cell formation at the xylem pole pericycle cells where auxin accumulates. Analysis of the genetic interaction between SUR2 and GNOM indicates the importance of stabilization of local auxin accumulation sites for LR initiation.Oxford University Press (OUP), Oct. 2023, Plant and Cell Physiology, 64(10) (10), 1178 - 1188, English[Refereed]Scientific journal
- Plants produce sugars by photosynthesis and use them for growth and development. Sugars are transported from source-to-sink organs via the phloem in the vasculature. It is well known that vascular development is precisely controlled by plant hormones and peptide hormones. However, the role of sugars in the regulation of vascular development is poorly understood. In this study, we examined the effects of sugars on vascular cell differentiation using a vascular cell induction system named Vascular cell Induction culture System Using Arabidopsis Leaves (VISUAL). We found that sucrose has the strongest inhibitory effect on xylem differentiation among several types of sugars. Transcriptome analysis revealed that sucrose suppresses xylem and phloem differentiation from cambial cells. Physiological and genetic analysis suggested that sucrose might function through the BES1 transcription factor, which is the central regulator of vascular cell differentiation. Conditional overexpression of cytosolic invertase led to a decrease in the number of cambium layers due to an imbalance between cell division and differentiation. Taken together, our results suggest that sucrose potentially acts as a signal that integrates environmental conditions with the developmental program.May 2023, Plant & Cell Physiology, 64(12) (12), 1511 - 1522, English, Domestic magazine[Refereed]Scientific journal
- ABSTRACT The root cap is a multilayered tissue covering the tip of a plant root that directs root growth through its unique functions, such as gravity sensing and rhizosphere interaction. To maintain the structure and function of the root cap, its constituent cells are constantly turned over through balanced cell division and cell detachment in the inner and outer cell layers, respectively. Upon displacement toward the outermost layer, columella cells at the central root cap domain functionally transition from gravity-sensing cells to secretory cells, but the mechanisms underlying this drastic cell fate transition are largely unknown. Here, using live-cell tracking microscopy, we show that organelles in the outermost cell layer undergo dramatic rearrangements. This rearrangement depends, at least partially, on spatiotemporally regulated activation of autophagy. Notably, this root cap autophagy does not lead to immediate cell death, but is instead necessary for organized separation of living root cap cells, highlighting a previously undescribed role of developmentally regulated autophagy in plants. This article has an associated ‘The people behind the papers’ interview.The Company of Biologists, Jun. 2022, Development, 149(11) (11), dev200593, English[Refereed]Scientific journal
- One of the characteristic aspects of odour sensing in humans is the activation of olfactory receptors in a slightly different manner in response to different enantiomers. Here, we focused on whether plants showed enantiomer-specific response similar to that in humans. We exposed Arabidopsis seedlings to methanol (control) and (+)- or (−)-borneol, and found that only (+)-borneol reduced the root length. Furthermore, the root-tip width was more increased upon (+)-borneol exposure than upon (−)-borneol exposure. In addition, root-hair formation was observed near the root tip in response to (+)-borneol. Auxin signalling was strongly reduced in the root tip following exposure to (+)-borneol, but was detected following exposure to (−)-borneol and methanol. Similarly, in the root tip, the activity of cyclin B1:1 was detected on exposure to (−)-borneol and methanol, but not on exposure to (+)-borneol, indicating that (+)-borneol inhibits the meristematic activity in the root. These results partially explain the (+)-borneol-specific reduction in the root length of Arabidopsis. Our results indicate the presence of a sensing system specific for (+)-borneol in Arabidopsis.The Royal Society, May 2022, Biology Letters, 18(5) (5), 20210629 - 20210629, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- Wiley, Mar. 2022, Plant, Cell & Environment, 45(6) (6), 1749 - 1764, English[Refereed]Scientific journal
- Bioactive specialized (secondary) metabolites are indispensable for plant development or adjustment to their surrounding environment. In many plants, these specialized metabolites are accumulated in specifically differentiated cells. Catharanthus roseus is a well-known medicinal plant known for producing many kinds of monoterpenoid indole alkaloids (MIAs). C. roseus has two types of specifically differentiated cells accumulating MIAs, so-called idioblast cells and laticifer cells. In this study, we compared each of the cells as they changed during seedling growth, and found that the fluorescent metabolites accumulated in these cells were differentially regulated. Analysis of fluorescent compounds revealed that the fluorescence observed in these cells was emitted from the compound serpentine. Further, we found that the serpentine content of leaves increased as leaves grew. Our findings suggest that idioblast cells and laticifer cells have different biological roles in MIA biosynthesis and its regulation.Springer Science and Business Media LLC, Mar. 2022, Journal of Plant Research, 135(3) (3), 473 - 483, English, Domestic magazine[Refereed]Scientific journal
- Wiley, Feb. 2022, New Phytologist, 233(4) (4), 1780 - 1796[Refereed]Scientific journal
- Organ morphologies are diverse but also conserved under shared developmental constraints among species. Any geometrical similarities in the shape behind diversity and the underlying developmental constraints remain unclear. Plant root tip outlines commonly exhibit a dome shape, which likely performs physiological functions, despite the diversity in size and cellular organization among distinct root classes and/or species. We carried out morphometric analysis of the primary roots of ten angiosperm species and of the lateral roots (LRs) of Arabidopsis, and found that each root outline was isometrically scaled onto a parameter-free catenary curve, a stable structure adopted for arch bridges. Using the physical model for bridges, we analogized that localized and spatially uniform occurrence of oriented cell division and expansion force the LR primordia (LRP) tip to form a catenary curve. These growth rules for the catenary curve were verified by tissue growth simulation of developing LRP development based on time-lapse imaging. Consistently, LRP outlines of mutants compromised in these rules were found to deviate from catenary curves. Our analyses demonstrate that physics-inspired growth rules constrain plant root tips to form isometrically scalable catenary curves.Feb. 2021, Development, 148(4) (4), dev196253, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- Jul. 2020, New Phytologist, 227(1) (1), 200 - 215, English[Refereed]Scientific journal
- Apr. 2020, Plant Physiology, 182(4) (4), 1645 - 1656, EnglishPeptide-Receptor Signaling Controls Lateral Root Development.[Refereed]Scientific journal
- Plants have evolved mechanisms to improve utilization efficiency or acquisition of inorganic phosphate (Pi) in response to Pi deficiency, such as altering root architecture, secreting acid phosphatases, and activating the expression of genes related to Pi uptake and recycling. Although many genes responsive to Pi starvation have been identified, transcription factors that affect tolerance to Pi deficiency have not been well characterized. We show here that the ectopic expression of B-BOX32 (BBX32) and the mutation of ELONGATED HYPOCOTYL 5 (HY5), whose transcriptional activity is negatively regulated by BBX32, resulted in the tolerance to Pi deficiency in Arabidopsis. The primary root lengths of 35S:BBX32 and hy5 plants were only slightly inhibited under Pi deficient condition and the fresh weights were significantly higher than those of wild type. The Pi deficiency-tolerant root phenotype of hy5 was similarly observed when grown on the medium without Pi. In addition, a double mutant, hy5 slr1, without lateral roots, also showed a long primary root phenotype under phosphate deficiency, indicating that the root phenotype of hy5 does not result from an increase of external Pi uptake. Moreover, we found that blue light may regulate Pi deficiency-dependent primary root growth inhibition through activating peroxidase gene expression, suggesting the Pi-deficiency tolerant root phenotype of hy5 may be due to blockage of blue light responses. Altogether, this study points out light quality may play an important role in the regulation of Pi deficiency responses. It may contribute to regulate plant growth under Pi deficiency through proper illumination.Jan. 2020, Front Plant Sci., 10, 1803 - 1803, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- Elsevier BV, Dec. 2019, Curr. Biol., 29(23) (23), 3987 - 3995, English[Refereed]Scientific journal
- Nov. 2019, Plant Journal, 100(3) (3), 536 - 548, English[Refereed]Scientific journal
- Nov. 2019, Front Plant Sci., 10, 1462, EnglishEditorial: Root Branching: From Lateral Root Primordium Initiation and Morphogenesis to Function.[Refereed]Scientific journal
- Many plants can reproduce vegetatively, producing clonal progeny from vegetative cells; however, little is known about the molecular mechanisms underlying this process. Liverwort (Marchantia polymorpha), a basal land plant, propagates asexually via gemmae, which are clonal plantlets formed in gemma cups on the dorsal side of the vegetative thallus [1]. The initial stage of gemma development involves elongation and asymmetric divisions of a specific type of epidermal cell, called a gemma initial, which forms on the floor of the gemma cup [2, 3]. To investigate the regulatory mechanism underlying gemma development, we focused on two allelic mutants in which no gemma initial formed; these mutants were named karappo, meaning "empty." We used whole-genome sequencing of both mutants and molecular genetic analysis to identify the causal gene, KARAPPO (KAR), which encodes a ROP guanine nucleotide exchange factor (RopGEF) carrying a plant-specific ROP nucleotide exchanger (PRONE) catalytic domain. In vitro GEF assays showed that the full-length KAR protein and the PRONE domain have significant GEF activity toward MpROP, the only ROP GTPase in M. polymorpha. Moreover, genetic complementation experiments showed a significant role for the N- and C-terminal variable regions in gemma development. Our investigation demonstrates an essential role for KAR/RopGEF in the initiation of plantlet development from a differentiated cell, which may involve cell-polarity formation and subsequent asymmetric cell division via activation of ROP signaling, implying a similar developmental mechanism in vegetative reproduction of various land plants.Oct. 2019, Current biology : CB, 29(20) (20), 3525 - 3531, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- Lateral root (LR) formation in Arabidopsis thaliana is initiated by asymmetric division of founder cells, followed by coordinated cell proliferation and differentiation for patterning new primordia. The sequential developmental processes of LR formation are triggered by a localized auxin response. LATERAL ORGAN BOUNDARIES-DOMAIN 16 (LBD16), an auxin-inducible transcription factor, is one of the key regulators linking auxin response in LR founder cells to LR initiation. We identified key genes for LR formation that are activated by LBD16 in an auxin-dependent manner. LBD16 targets identified include the transcription factor gene PUCHI, which is required for LR primordium patterning. We demonstrate that LBD16 activity is required for the auxin-inducible expression of PUCHI. We show that PUCHI expression is initiated after the first round of asymmetric cell division of LR founder cells and that premature induction of PUCHI during the preinitiation phase disrupts LR primordium formation. Our results indicate that LR initiation requires the sequential induction of transcription factors LBD16 and PUCHI.Oct. 2019, New Phytologist, 224(2) (2), 749 - 760, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- Catharanthus roseus is a medicinal plant well known for producing bioactive compounds such as vinblastine and vincristine, which are classified as terpenoid indole alkaloids (TIAs). Although the leaves of this plant are the main source of these antitumour drugs, much remains unknown on how TIAs are biosynthesised from a central precursor, strictosidine, to various TIAs in planta. Here, we have succeeded in showing, for the first time in leaf tissue of C. roseus, cell-specific TIAs localisation and accumulation with 10 μm spatial resolution Imaging mass spectrometry (Imaging MS) and live single-cell mass spectrometry (single-cell MS). These metabolomic studies revealed that most TIA precursors (iridoids) are localised in the epidermal cells, but major TIAs including serpentine and vindoline are localised instead in idioblast cells. Interestingly, the central TIA intermediate strictosidine also accumulates in both epidermal and idioblast cells of C. roseus. Moreover, we also found that vindoline accumulation increases in laticifer cells as the leaf expands. These discoveries highlight the complexity of intercellular localisation in plant specialised metabolism.Oct. 2019, New Phytologist, 224(2) (2), 848 - 859, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- How plant cells re-establish differential growth to initiate organs is poorly understood. Morphogenesis of lateral roots relies on the asymmetric cell division of initially symmetric founder cells. This division is preceded by the tightly controlled asymmetric radial expansion of these cells. The cellular mechanisms that license and ensure the coordination of these events are unknown. Here, we quantitatively analyze microtubule and F-actin dynamics during lateral root initiation. Using mutants and pharmacological and tissue-specific genetic perturbations, we show that dynamic reorganization of both microtubule and F-actin networks is necessary for the asymmetric expansion of the founder cells. This cytoskeleton remodeling intertwines with auxin signaling in the pericycle and endodermis in order for founder cells to acquire a basic polarity required for initiating lateral root development. Our results reveal the conservation of cell remodeling and polarization strategies between the Arabidopsis zygote and lateral root founder cells. We propose that coordinated, auxin-driven reorganization of the cytoskeleton licenses asymmetric cell growth and divisions during embryonic and post-embryonic organogenesis.Aug. 2019, Current Biology : CB, 29(15) (15), 2443 - 2454, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- Jul. 2019, Proc Natl Acad Sci U S A., 116(28) (28), 14325 - 14330, English[Refereed]Scientific journal
- Pyruvate dehydrogenase is the first enzyme (E1) of the PDH complex (PDC). This multienzyme complex contains E1, E2, and E3 components and controls the entry of carbon into the mitochondrial tricarboxylic acid cycle to enable cellular energy production. The E1 component of the PDC is composed of an E1α catalytic subunit and an E1β regulatory subunit. In Arabidopsis (Arabidopsis thaliana), there are two mitochondrial E1α homologs encoded by IAA-CONJUGATE-RESISTANT 4 (IAR4) and IAR4-LIKE (IAR4L), and one mitochondrial E1β homolog. Although IAR4 was reported to be involved in auxin conjugate sensitivity and auxin homeostasis in root development, its precise role remains unknown. Here, we provide experimental evidence that mitochondrial PDC E1 contributes to polar auxin transport during organ development. We performed genetic screens for factors involved in cotyledon development and identified an uncharacterized mutant, macchi-bou 1 (mab1). MAB1 encodes a mitochondrial PDC E1β subunit that can form both a homodimer and a heterodimer with IAR4. The mab1 mutation impaired MAB1 homodimerization, reduced the abundance of IAR4 and IAR4L, weakened PDC enzymatic activity, and diminished mitochondrial respiration. A metabolomics analysis showed significant changes in metabolites including amino acids in mab1 and, in particular, identified an accumulation of Ala. These results suggest that MAB1 is a component of the Arabidopsis mitochondrial PDC E1. Furthermore, in mab1 mutants and seedlings where the TCA cycle was pharmacologically blocked, we found reduced abundance of the PIN-FORMED (PIN) auxin efflux carriers, possibly due to impaired PIN recycling and enhanced PIN degradation in vacuoles. Therefore, we suggest that mab1 induces defective polar auxin transport via metabolic abnormalities.Jun. 2019, Plant Physiology, 180(2) (2), 896 - 909, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- In plants, the position of lateral roots (LRs) depends on initiation sites induced by auxin. The domain of high auxin response responsible for LR initiation stretches over several cells, but only a pair of pericycle cells (LR founder cells) will develop into LRs. In this work, we identified a signaling cascade controlling LR formation through lateral inhibition. It comprises a peptide hormone TARGET OF LBD SIXTEEN 2 (TOLS2), its receptor RLK7, and a downstream transcription factor PUCHI. TOLS2 is expressed at the LR founder cells and inhibits LR initiation. Time-lapse imaging of auxin-responsive DR5:LUCIFERASE reporter expression revealed that occasionally two pairs of LR founder cells are specified in close proximity even in wild-type and that one of them exists only transiently and disappears in an RLK7-dependent manner. We propose that the selection of LR founder cells by the peptide hormone-receptor cascade ensures proper LR spacing.Jan. 2019, Develpmental Cell, 48(1) (1), 64 - 75, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- Dec. 2018, Science, 362(6421) (6421), 1407 - 1410, English[Refereed]Scientific journal
- Plant root systems are indispensable for water uptake, nutrient acquisition, and anchoring plants in the soil. Previous studies using auxin inhibitors definitively established that auxin plays a central role regulating root growth and development. Most auxin inhibitors affect all auxin signaling at the same time, which obscures an understanding of individual events. Here, we report that jasmonic acid (JA) functions as a lateral root (LR)-preferential auxin inhibitor in Arabidopsis (Arabidopsis thaliana) in a manner that is independent of the JA receptor, CORONATINE INSENSITIVE1 (COI1). Treatment of wild-type Arabidopsis with either (-)-JA or (+)-JA reduced primary root length and LR number; the reduction of LR number was also observed in coi1 mutants. Treatment of seedlings with (-)-JA or (+)-JA suppressed auxin-inducible genes related to LR formation, diminished accumulation of the auxin reporter DR5::GUS, and inhibited auxin-dependent DII-VENUS degradation. A structural mimic of (-)-JA and (+)-coronafacic acid also inhibited LR formation and stabilized DII-VENUS protein. COI1-independent activity was retained in the double mutant of transport inhibitor response1 and auxin signaling f-box protein2 (tir1 afb2) but reduced in the afb5 single mutant. These results reveal JAs and (+)-coronafacic acid to be selective counter-auxins, a finding that could lead to new approaches for studying the mechanisms of LR formation.Aug. 2018, Plant Physiology, 177(4) (4), 1704 - 1716, English, International magazine[Refereed]Scientific journal
- We analyzed the metabolites and proteins contained in pure intact vacuoles isolated from Arabidopsis suspension-cultured cells using capillary electrophoresis-mass spectrometry (CE-MS), Fourier transform-ion cyclotron resonance (FT-ICR)-MS and liquid chromatography (LC)-MS. We identified 21 amino acids and five organic acids as major primary metabolites in the vacuoles with CE-MS. Further, we identified small amounts of 27 substances including well-known vacuolar molecules, but also some unexpected substances (e.g. organic phosphate compounds). Non-target analysis of the vacuolar sample with FT-ICR-MS suggested that there are 1,106 m/z peaks that could predict the 5,090 molecular formulae, and we have annotated 34 compounds in these peaks using the KNapSAck database. By conducting proteomic analysis of vacuolar sap, we found 186 proteins in the same vacuole samples. Since the vacuole is known as a major degradative compartment, many of these were hydrolases, but we also found various oxidoreductases and transferases. The relationships between the proteins and metabolites in the vacuole are discussed.Jul. 2018, Plant & cell physiology, 59(7) (7), 1353 - 1362, English, Domestic magazine[Refereed]Scientific journal
- Sep. 2017, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 58(9) (9), 1477 - 1485, English[Refereed]Scientific journal
- Jul. 2017, PLANT JOURNAL, 91(2) (2), 306 - 324, English[Refereed]Scientific journal
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- Sep. 2016, DEVELOPMENT, 143(18) (18), 3363 - 3371, English[Refereed]Scientific journal
- Sep. 2016, DEVELOPMENT, 143(18) (18), 3340 - 3349, English[Refereed]Scientific journal
- Aug. 2016, JOURNAL OF EXPERIMENTAL BOTANY, 67(16) (16), 4863 - 4875, English[Refereed]Scientific journal
- Jun. 2016, PROCEEDINGS OF THE NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES OF THE UNITED STATES OF AMERICA, 113(23) (23), 6562 - 6567, English[Refereed]Scientific journal
- Apr. 2016, PROCEEDINGS OF THE NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES OF THE UNITED STATES OF AMERICA, 113(14) (14), 3891 - 3896, English[Refereed]Scientific journal
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- Jul. 2015, NATURE COMMUNICATIONS, 6, English[Refereed]Scientific journal
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- Jun. 2015, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 56(6) (6), 1229 - 1238, English[Refereed]Scientific journal
- May 2015, PLANT CELL, 27(5) (5), 1368 - 1388, English[Refereed]Scientific journal
- Mar. 2015, PLANT BIOTECHNOLOGY, 32(1) (1), 65 - 79, English[Refereed]Scientific journal
- Jul. 2014, NEW PHYTOLOGIST, 203(2) (2), 632 - 645, English[Refereed]Scientific journal
- Jul. 2014, JOURNAL OF PLANT RESEARCH, 127(4) (4), 545 - 551, English[Refereed]Scientific journal
- Jun. 2014, PLANT PHYSIOLOGY, 165(2) (2), 747 - 758, English[Refereed]Scientific journal
- 2014, New Phytologists, 203(2) (2), 632 - 645, English[Refereed]Scientific journal
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- Mar. 2012, DEVELOPMENT, 139(5) (5), 883 - 893, English[Refereed]Scientific journal
- Mar. 2012, PLANT CELL, 24(3) (3), 1081 - 1095, English[Refereed]Scientific journal
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- 2011, 高等研報告書, 1004、73-79, Japanese維管束植物と根系構築と側根発生の機構「細胞履歴に基づく植物の形態形成」[Refereed][Invited]
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- Nov. 2006, PLANT JOURNAL, 48(3) (3), 380 - 389, English[Refereed]Scientific journal
- May 2006, BIOORGANIC & MEDICINAL CHEMISTRY LETTERS, 16(9) (9), 2470 - 2474, English[Refereed]Scientific journal
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- Lead, Feb. 2000, DEVELOPMENT, 127(3) (3), 595 - 603, EnglishMolecular analysis of SCARECROW function reveals a radial patterning mechanism common to root and shoot[Refereed]Scientific journal
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- Last, Mar. 1999, TRENDS IN PLANT SCIENCE, 4(3) (3), 103 - 107, English[Refereed]Scientific journal
- Lead, 1999, LIFE SCIENCES: MICROGRAVITY RESEARCH II, 24(6) (6), 763 - 770, EnglishGravity perception and gravitropic response of inflorescence stems in Arabidopsis thaliana[Refereed]Scientific journal
- Lead, May 1998, PLANT JOURNAL, 14(4) (4), 425 - 430, English[Refereed]Scientific journal
- Lead, Jul. 1997, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 38(7) (7), 804 - 810, EnglishThe RHG gene is involved in root and hypocotyl gravitropism in Arabidopsis thaliana[Refereed]Scientific journal
- Jun. 1997, PLANT CELL, 9(6) (6), 841 - 857, English[Refereed]Scientific journal
- May 1997, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 38(5) (5), 530 - 535, EnglishMutations in the SGR4, SGR5 and SGR6 loci of Arabidopsis thaliana alter the shoot gravitropism[Refereed]Scientific journal
- Lead, Jun. 1996, JOURNAL OF PLANT RESEARCH, 109(1094) (1094), 129 - 137, EnglishHow do plant shoots bend up? The initial step to elucidate the molecular mechanisms of shoot gravitropism using Arabidopsis thaliana[Refereed]Scientific journal
- Lead, Mar. 1996, PLANT PHYSIOLOGY, 110(3) (3), 945 - 955, English[Refereed]Scientific journal
- Lead, Mar. 1996, Plant Physiology, 110(3) (3), 933 - 943[Refereed]Scientific journal
- 2025, 日本植物生理学会年会(Web), 66thAn R2R3-MYB transcription factor, SHOT GLASS promotes gemma cup development and FR-induced gametangiophore formation in the liverwort Marchantia polymorpha
- 2024, 日本RNA学会年会要旨集, 25thpre-mRNA splicing links photosynthesis activity to lateral root morphogenesis in plants
- 2024, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 88thpre-mRNAスプライシングが駆動する光合成活性を反映した側根形態制御
- 2024, Plant Morphology, 36(1) (1)非典型BZR/BES転写因子MpBZR3によるゼニゴケ配偶子器の発生制御
- 2024, 日本植物生理学会年会(Web), 65thCritical roles of rhizoids in phosphate uptake in the non-vascular plant Marchantia polymorpha
- 2024, 日本植物生理学会年会(Web), 65thA mutation of CHLH confers resistance to PPO inhibitors in Marchantia polymorpha
- 2024, 日本植物生理学会年会(Web), 65thFunctional characterization of the vacuolar membrane phosphate transporter VPT in a non-vascular plant Marchantia polymorpha
- 2024, 日本植物生理学会年会(Web), 65thDrastic changes in gene-expression profile during the spore germination of Marchantia polymorpha
- 2024, 日本植物生理学会年会(Web), 65thMpRLF, a cytochrome b5 -like heme binding domain protein, is necessary for proper vegetative and reproductive development in Marchantia polymorpha
- 2023, 日本植物生理学会年会(Web), 64thHeme signaling in aboveground tissues regulates lateral root morphology via pre-mRNA splicing regulation
- 2023, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 87thpre-mRNAスプライシング制御を介した光合成活性による側根形態制御
- 2023, 日本分子生物学会年会プログラム・要旨集(Web), 46thPhotosynthetic activity is reflected to lateral root morphology via pre-mRNA splicing in plants
- 2023, 日本植物生理学会年会(Web), 64thMechanisms of MpHYPNOS-mediated gemma dormancy in Marchantia polymorpha
- 2023, 日本植物生理学会年会(Web), 64thRole of ROP signaling in the growth and organogenesis of Marchantia polymorpha
- 2023, 日本植物生理学会年会(Web), 64thThe role of MYBCC-SPX module in phosphate response of nonvascular plant Marchantia polymorpha
- 2023, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 87thゼニゴケの器官形成を制御するROPシグナリング
- 2023, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 87th非維管束植物ゼニゴケにおける液胞膜リン酸輸送体VPTの機能解析
- 2023, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 87thMpHYPNOSはABA依存的および非依存的に無性芽の休眠を制御する
- 2023, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 87thゼニゴケCHLH遺伝子の変異はPPO阻害除草剤耐性を付与する
- Jun. 2022, Plant, Cell & Environment
- 25 Apr. 2022, bioRxiv, 488978
- 2022, 日本植物生理学会年会(Web), 63rdMpHYPNOS-mediated regulatory mechanism of gemma dormancy in Marchantia polymorpha
- 2022, 日本植物生理学会年会(Web), 63rdAsymmetric division in the spore of Marchantia polymorpha
- 2022, 日本植物生理学会年会(Web), 63rdThe role of MYCCB-SPX module in phosphate starvation of nonvascular plant Marchantia polymorpha
- 2022, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 86thPPO阻害除草剤耐性ゼニゴケの単離と解析
- 2022, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 86thコケ植物ゼニゴケのリン欠乏応答を制御するMYBCC型転写因子の機能解析
- 2022, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 86thゼニゴケ無性芽の休眠を促進するMpHYPNOSの機能
- 2022, 日本植物生理学会年会(Web), 63rdAuxin response of exaggerated root cut response in aux/iaa3/shy2-101 dominant mutant
- 2022, 日本植物生理学会年会(Web), 63rdInvolvement of phytoene desaturase activity and auxin signaling for root-cut response in Arabidopsis thaliana
- 2022, 日本植物生理学会年会(Web), 63rdInitiation process of Monoterpneoid indole alkaloid biosynthesis during seed germination in Catharanthus roseus
- 2021, 日本植物生理学会年会(Web), 62ndFunctional characterization of LAX PANICLE2 homologous in the liverwort Marchantia polymorpha
- 2021, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 85thゼニゴケ無性芽におけるMpHYPNOSを介した休眠制御
- 2021, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 85thゼニゴケ器官形成におけるR2R3-MYB転写因子SHOTGLASSの機能
- 2021, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 85th基部陸上植物ゼニゴケのリン欠乏応答におけるMpMYBCC-MpSPXモジュールの機能
- 2021, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 85thゼニゴケ葉状体の形態形成におけるMpRENの機能解析
- 2021, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 85th基部陸上植物ゼニゴケにおけるリンの吸収・分配・貯蔵のメカニズム
- Last, Jun. 2020, 化学と生物, 58(6) (6), 322 - 324, Japanese根が分岐する間隔を調節する低分子分泌ペプチドIntroduction scientific journal
- 2020, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 84thゼニゴケ側生器官形成を制御するMYB転写因子GCAM2の機能解析
- 2020, 日本植物学会大会研究発表記録(CD-ROM), 84thポプラ短縮周年系を用いた季節的なリン転流機構の解明と野外RNA-Seqとの比較
- Lead, Dec. 2019, Regulation of Plant Growth & Development, 54(2) (2), 129 - 136, JapaneseNew developments in research on the regulatory mechanism of lateral root formation[Refereed][Invited]Introduction scientific journal
- 2019, 日本植物学会大会研究発表記録, 83rd根系の光環境が植物のリン酸応答に与える影響
- 01 Sep. 2018, 日本植物学会大会研究発表記録, 82nd, 258, JapaneseゼニゴケのMYB型転写因子GCAM1による幹細胞制御機構の解析
- 2018, 日本植物学会大会研究発表記録, 82ndポプラの短期落葉-開芽系を用いた季節的なリン酸転流機構の解明と野外RNA-seqとの比較
- 01 Sep. 2017, 日本植物学会大会研究発表記録, 81st, 204, Japaneseさまざまな植物における紅葉・黄葉現象の解析
- 01 Sep. 2017, 日本植物学会大会研究発表記録, 81st, 173, Japanese落葉木本植物ポプラの季節的なリン転流機構の解析
- (一社)日本細胞生物学会, May 2017, 日本細胞生物学会大会講演要旨集, 69回, 15 - 15, Japanese細胞社会の構築原理 数理科学的アプローチによる展開 細胞壁をもつ植物における器官形成の解析 側根形成をモデルとして
- 01 Sep. 2016, 日本植物学会大会研究発表記録, 80th, 172, Japaneseポプラの短期落葉‐開芽系を用いた季節的なリン転流機構の解析
- 01 Sep. 2016, 日本植物学会大会研究発表記録, 80th, 164, Japaneseポプラにおける葉組織リン代謝の季節変動―野外と実験室培養系の比較―
- 01 Sep. 2016, 日本植物学会大会研究発表記録, 80th, 165, Japaneseシロイヌナズナのリン酸濃度応答遺伝子の探索
- Auxin-dependent compositional change in Mediator in ARF7- and ARF19-mediated transcriptionMediator is a multiprotein complex that integrates the signals from transcription factors binding to the promoter and transmits them to achieve gene transcription. The subunits of Mediator complex reside in four modules: the head, middle, tail, and dissociable CDK8 kinase module (CKM). The head, middle, and tail modules form the core Mediator complex, and the association of CKM can modify the function of Mediator in transcription. Here, we show genetic and biochemical evidence that CKM-associated Mediator transmits auxin-dependent transcriptional repression in lateral root (LR) formation. The AUXIN/INDOLE 3-ACETIC ACID 14 (Aux/IAA14) transcriptional repressor inhibits the transcriptional activity of its binding partners AUXIN RESPONSE FACTOR 7 (ARF7) and ARF19 by making a complex with the CKM-associated Mediator. In addition, TOPLESS (TPL), a transcriptional corepressor, forms a bridge between IAA14 and the CKM component MED13 through the physical interaction. ChIP assays show that auxin induces the dissociation of MED13 but not the tail module component MED25 from the ARF7 binding region upstream of its target gene. These findings indicate that auxin-induced degradation of IAA14 changes the module composition of Mediator interacting with ARF7 and ARF19 in the upstream region of their target genes involved in LR formation. We suggest that this regulation leads to a quick switch of signal transmission from ARFs to target gene expression in response to auxin.National Academy of Sciences, 23 May 2016, English
- The Japanese Society of Plant Morphology, Apr. 2016, Plant Morphology, 28(1) (1), 23 - 27, Japanese[Refereed][Invited]Introduction scientific journal
- 11 Mar. 2016, 日本植物生理学会年会要旨集, 57th, 178, EnglishEvolutional analysis of phosphate transport mechanism in plant cells.
- 2016, 日本土壌肥料学会講演要旨集, 62シロイヌナズナのリン応答におけるBT遺伝子の機能の解析
- 2016, BSJ-Review, 7, 269 - 278, Japanese植物の進化発生研究における順遺伝学的解析[Refereed][Invited]Introduction other
- 2016, BSJ-Review, 7, 220 - 229, Japaneseシロイヌナズナにおける側根形成の制御機構[Refereed][Invited]Introduction other
- The Japanese Society for Chemical Regulation of Plants, 01 Oct. 2015, 植物化学調節学会研究発表記録集, 50, 94 - 94, JapaneseP076 Jasmonic acid negatively regulates lateral root formation through the site-specific stabilization of Aux/IAAs in Arabidopsis thaliana
- 01 Sep. 2015, 日本植物学会大会研究発表記録, 79th, 223, Japaneseゼニゴケの杯状体形成を制御するGCAM1の機能解析
- 09 Mar. 2015, 日本植物生理学会年会要旨集, 56th, 249, Japaneseシロイヌナズナ側根形成におけるオーキシン依存的な転写制御機構の解析
- 09 Mar. 2015, 日本植物生理学会年会要旨集, 56th, 313, JapaneseR2R3‐MYB型転写因子GCAM1は苔類ゼニゴケの杯状体形成を制御する
- 2015, 日本植物生理学会年会要旨集, 56th落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析
- 2015, 日本植物学会大会研究発表記録, 79thポプラにおけるリン酸転流経路の季節変化
- 01 Sep. 2014, 日本植物学会大会研究発表記録, 78th, 167, Japaneseゼニゴケの栄養繁殖器官で発現するR2R3型MYB遺伝子の単離と機能解析
- 2014, 日本植物生理学会年会要旨集, 55thシロイヌナズナ根端における33P局在とリン酸応答性遺伝子の発現誘導
- 2014, 日本植物生理学会年会要旨集, 55th植物におけるリン環境認識とリン利用の新しい視点
- 14 Mar. 2013, 日本植物生理学会年会要旨集, 54th, 118, Japaneseシロイヌナズナ側根形成におけるオーキシン依存的な転写制御機構の解析
- Mar. 2013, Plant and Cell Physiology, 54(3) (3), 295 - 301, EnglishBook review
- 2013, 植物微生物研究会研究交流会講演要旨集, 23rd根粒菌感染を負に制御するというNIN転写因子の新たな機能的側面
- 2013, 日本植物生理学会年会要旨集, 54thリン酸増加に対するシロイヌナズナの根の応答機構
- Lateral root (LR) formation is one of the auxin-mediated developmental processes in vascular plants. Physiological and genetic studies using Arabidopsis thaliana and other plant species have revealed the role of auxin biosynthesis, transport and signaling in LR initiation and primordium development. These studies have shown that auxin-regulated transcription through Auxin/Indole-3-Acetic Acid (Aux/IAA) and AUXIN RESPONSE FACTOR (ARF) protein families is important for the developmental steps during LR formation : 1) the IAA28-ARFs module regulates LR founder cell specification, 2) the SOLITARY-ROOT(SLR)/IAA14-ARF7-ARF19 module regulates nuclear migration and asymmetric cell divisions of the LR founder cells for LR initiation, 3) the BODENLOS/IAA12-MONOPTEROS/ARF5 module also regulates LR initiation and organogenesis, and 4) the SHY2/IAA3-ARFs module regulates LR primordium development and LR emergence. This review summarizes recent findings on auxin-mediated LR formation, focusing on the molecular mechanisms of SLR/IAA14-ARF7-ARF19 module-dependent LR initiation.The Japanese Society for Chemical Regulation of Plants, Dec. 2012, 植物の生長調節, 47(2) (2), 93 - 100, Japanese[Invited]Introduction scientific journal
- シロイヌナズナにおける側根発生の遺伝的制御機構維管束植物の地下部を構成する根系は、地上部を支持し、土壌から水分や養分を吸収する上で重要な役割を果たす。根系は発芽後伸長する主根と、主根から形成される側根、地上部から形成される不定根によって構築される。古くから植物ホルモンのオーキシンが側根形成や不定根形成に重要な役割を果たすことが知られていたが、その分子機構は未だに解明されていない。我々の研究グループは、オーキシンを介した側根形成の分子機構に注目して、これまで側根形成能に欠損をもつシロイヌナズナslr(solitary-root)変異体、およびarf7 arf19二重変異体の解析から、オーキシン応答転写因子ARF7、ARF19とAux/IAAタンパク質SLR/IAA14との相互作用を介した遺伝子発現制御が側根形成開始に重要なことを明らかにしてきた。そして、マイクロアレイ解析などからARF7、ARF19の標的遺伝子として植物に特有なLBD(Lateral Organ Boundaries-domain)/ASL(AS2-Like)ファミリーに属するLBD16/ASL18とLBD29/ASL16を同定し、これらが側根形成開始で機能することを明らかにした。現在、側根形成におけるオーキシン誘導性LBD/ASLタンパク質群の機能と、LBD16を介した分子カスケードの解明を目指して研究を進めている。 側根発生は、分裂組織形成や器官形成、植物ホルモンのシグナル伝達、細胞運命の決定機構、細胞周期制御といった植物科学における重要な問題を研究する上で良いモデルといえる。側根発生の分子機構の解明は、他の植物種の側根発生機構の理解に役立つだけでなく、植物界における根系の進化のしくみを解く手がかりとなる。また、将来、さまざまな環境ストレス下において作物の収量を維持・増加させるような植物を作出する際に、根系パターンの改変技術が有用となると考えられる。Institute of Radiation Breeding, Ministry of Agriculture & Forestry, Mar. 2011, Gamma field symposia, (48) (48), 27 - 33, English
- 2010, 第51回日本植物生理学会年会,熊本大学黒髪北キャンパス,2010年3月18日., Japanese[Refereed]
- 2009, 代謝調節機構解析に基づく細胞機能制御基盤技術研究領域 第2回公開シンポジウム講演要旨集 平成21年, 67, Japanese“代謝調節機構解析に基づく細胞機能制御基盤技術”研究領域 植物細胞インタクト液胞を用いたポストゲノム解析と液胞膜エンジニアリングによる液胞代謝動態の解析
- Post-genome analysis of plant intact vacuoleVacuole plays an important role in maintaining the homeostasis of plant cells, that is, the maintenance of the turgor pressure, the accumulation of inorganic ions and metabolites and the degradation of discarded proteins. These functions of the vacuole predict that the vacuole include many kind of substances. We have analyzed contents of intact vacuoles directly and comprehensively by using CE-MS and FT-ICR-MS. There are organic phosphate compounds in the vacuole irrespective that the vacuole includes phosphatase. The proteomic analysis of vacuolar membrane and vacuolar sap was also conducted. Relationship between proteins and metabolites in the vacuole is discussed. We have overexpressed the unknown tonoplast proteins of Arabidopsis suspension-cultured cells whose function are unknown. We will report the comparative analysis of the vacuolar metabolites of the wild-type and transgenic cells.The Japanese Society of Plant Physiologists, 2009, Plant and Cell Physiology Supplement, 2009(0) (0), 305 - 305
- 2009, 日本植物学会第73回大会,山形大学小白川キャンパス,2009年9月18日., Japaneseシロイヌナズナ根系のリン酸吸収機構:リンと鉄の相互作用[Refereed]
- 共立出版, May 2007, Protein, nucleic acid and enzyme, 52(6) (6), 625 - 632,504, JapanesePhosphate status and regulation system in plants
- 2007, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 48, S82 - S82, EnglishAnalysis of the rlr50 mutant that shows reduced lateral root formation in Arabidopsis thaliana.Summary international conference
- 2007, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 48, S81 - S81, EnglishCharacterization of the Arabidopsis crane mutant, which is defective in lateral root formationSummary international conference
- 2007, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 48, S220 - S220, EnglishSuppression of membrane lipid alteration upon phosphate starvation in auxin signaling mutants slr and arf7arf19Summary international conference
- 2007, 蛋白質 核酸 酵素, 52(6):625-632, Japaneseリン環境と植物[Refereed]Introduction scientific journal
- 2007, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 48(0) (0), S22 - S22, EnglishMolecular genetic analysis of the corymbosa1 mutants in Arabidopsis ThalianaSummary international conference
- 01 Dec. 2006, Journal of plant research, 119, 137 - 137, EnglishTHE ANALYSIS OF SUBSTANCE DELIVERLIES FROM THE XYLEM VESSELS IN ARABIDOPSIS LEAVES
- 2006, 日本植物生理学会年会要旨集, 47th器官形成に関わるシロイヌナズナMACCHI-BOU遺伝子の解析
- 2006, 日本植物生理学会年会要旨集, 47th側生器官の発生を調節するシロイヌナズナPUCHI遺伝子の解析
- 2006, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 47, S74 - S74, EnglishThe MACCHI-BOU genes are involved in Arabidopsis organogenesisSummary international conference
- 2006, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 47, S75 - S75, EnglishPUCHI is required for proper development of lateral organs in ArabidopsisSummary international conference
- 2006, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 47(0) (0), S179 - S179, EnglishSummary international conference
- 2005, 日本植物生理学会年会要旨集, 46thシロイヌナズナのシュートおよび根において側生器官の発生を調節するPUCHI遺伝子の解析
- 2005, 日本分子生物学会年会講演要旨集, 28thシロイヌナズナにおける器官形成機構の解析
- 2005, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 46, S197 - S197, EnglishAnalysis of genes regulated by SSL2/CHR6, a chromatin remodeling factor, in Arabidopsis lateral root formationSummary international conference
- 2005, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 46, S46 - S46, EnglishPUCHI is required for proper development of lateral organs both in the shoot and root in ArabidopsisSummary international conference
- 2005, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 46, S197 - S197, EnglishAnalysis of ARF7- and ARF19-regulated genes in Arabidopsis lateral root formationSummary international conference
- 2005, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 46, S77 - S77, EnglishThe mutated gene responsible for agravitropic growth of the weeping morning glory, shidare-asagaoSummary international conference
- 2004, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 45, S40 - S40, EnglishAnalysis of transgenic plants expressing Arabidopsis SLR/IAA14 under tissue-specific promotersSummary international conference
- 2004, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 45, S17 - S17, EnglishAuxin-regulated lateral root formation in ArabidopsisSummary international conference
- 2004, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 45, S39 - S39, EnglishGlobal analysis of genes involved in auxin-regulated root morphogenesis in ArabidopsisSummary international conference
- 2003, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 44, S182 - S182, EnglishMolecular genetic analysis of suppressor mutants of the solitary-root/iaa14 that is defective in lateral root formation in ArabidopsisSummary international conference
- 2002, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 43, S135 - S135, EnglishIsolation and characterization of suppressor mutants of the auxin-resistant mutant solitaty-root/iaa14 in ArabidopsisSummary international conference
- 養賢堂, Jun. 2001, 農業および園芸, 76(6) (6), 707 - 714, Japanese植物の根に関する諸問題(95)側根形成の分子機構
- Japanese Society of Plant Physiologists, 2001, Plant and cell physiology, 42, s4, EnglishAnalysis of the SLR/IAA 14 gene involved in root development in Arabidopsis :
- Jun. 1999, DEVELOPMENTAL BIOLOGY, 210(1) (1), 205 - 205, EnglishRadial pattern formation in plantsSummary international conference
- Mar. 1999, Plant and cell physiology, 40, s45 - s45, EnglishRELATION BETWEEN HYPOCOTYL CELL ELONGATION AND SOME EARLY AUXIN INDUCIBLE GENES IN ARABIDOPSIS
- Mar. 1999, Plant and cell physiology, 40, s13 - s13, EnglishAMYLOPLASTS DISTRIBUTION AND MOVEMENT IN SHOOT ENDODERMIS OF A REDUCED SHOOT GRAVITROPIC MUTANT, zig(sgr4), IN ARABIDOPSIS
- 01 Dec. 1998, 日本分子生物学会年会プログラム・講演要旨集, 21, 636 - 636, JapaneseSLR (SOLITARY-ROOT), a novel gene involved in auxin signaling in Arabidopsis thaliana
- May 1998, Plant and cell physiology, 39, S70 - S70, EnglishSLR, a novel genetic locus involved in auxin signaling in Arabidopsis thaliana
- May 1998, Plant and cell physiology, 39, S59 - S59, EnglishSGR2 (SHOOT GRAVITROPISM 2) gene relates to the embryogenesis in Arabidopsis thaliana
- 1998, 日本植物生理学会年会要旨集, 38th(1998)SGR2(SHOOT GRAVITROPISM 2)遺伝子ははい発生にも関与する
- Sep. 1997, 宇宙生物科学 = Biological sciences in space, 11(3) (3), 242 - 243, Japaneseシロイヌナズナのシュートの重力感受細胞の分化
- Mar. 1997, Plant and cell physiology, 38, s70, EnglishThe endodermis is essential for the gravitropic responses of hypocotyls and inflorescence stems in Arabidopsis thaliana
- Mar. 1997, Plant and cell physiology, 38, s5, EnglishMolecular genetic analysis of organ separation and endodermis differentiation in Arabidopsis thaliana
- 1997, 日本植物学会大会研究発表記録, 61stGravity sensitivity of higher plant. Molecular-genetical approach using Arabidopsis.
- 1997, 日本分子生物学会年会プログラム・講演要旨集, 20thAnalysis of shoot gravitropism mutant sgr2 of Arabidopsis thaliana.
- 1997, 日本分子生物学会年会プログラム・講演要旨集, 20thThe function of the SGR1/SCR and SGR7/SHR genes in shoot gravitropism in Arabidopsis thaliana.
- 01 Aug. 1996, 日本分子生物学会年会プログラム・講演要旨集, 19, 840 - 840, Japaneseシロイヌナズナにおけるシュートの重力屈性異常突然変異体shoot gravitropism1の解析
- Mar. 1996, Plant and cell physiology, 37, 124 - 124, EnglishNOVEL MUTANTS OF ARABIDOPSIS THALIANA WITH ALTERED SHOOT GRAVITROPIC RESPONSE
- Sep. 1995, 宇宙生物科学 = Biological sciences in space, 9(3) (3), 182 - 183, Japaneseシロイヌナズナ花茎の重力屈性反応異常突然変異(sgr)群についての解析
- Mar. 1995, Plant and cell physiology, 36, S59, EnglishAnalysis of Shoot Gravitropism of thePhytochrome B Deficient Mutants in Arabidopsis thaliana
- Contributor, 「栄養成長期の発生・形態形成」, 丸善出版, Jan. 2022遺伝学の百科事典 ~継承と多様性の源~
- Contributor, 1-04 植物の成長と動き, NHK、NHKプロモーション、朝日出版社, Jul. 2021特別展「植物 地球を支える仲間たち」公式ガイドブック
- 放送大学教育振興会, Mar. 2021三訂版「植物の科学」
- Joint editor, 化学同人, Apr. 2019, Japanese, ISBN: 9784759819977植物生理学 第2版
- Joint translation, 講談社, Feb. 2017, Japanese, ISBN: 9784061538962テイツ/ザイガー 植物生理学・発生学 原著第6版Textbook
- Contributor, 「オーキシン」「根」「根の形態形成」「茎の形態形成」「側方器官」を執筆, 丸善出版, Jun. 2016, Japanese, ISBN: 9784621300381植物学の百科事典Dictionary or encycropedia
- Joint work, 3.成長・発生(1)〜植物の体制と胚発生〜、5.成長・発生(3)〜根〜, 放送大学教育振興会, Mar. 2015, Japanese改訂版「植物の科学」Scholarly book
- Joint translation, 東京化学同人, Sep. 2014, Japanese, 「第15章 遺伝子からタンパク質へ」の翻訳を行った。, ISBN: 9784807908523ケイン生物学 第5版Textbook
- Joint work, 培風館, 2014, Japanese『光合成生物の進化と生命科学』 5章 陸上環境への適応と、環境シグナルの受容Scholarly book
- Single work, 共立出版, May 2010, Japanese植物のシグナル伝達 分子と応答Scholarly book
- Single work, 朝日選書, May 2007, Japanese根—隠れた半分—「植物の生存戦略」General book
- Joint work, 共立出版, 2007, Japanese植物における環境と生物ストレスに対する応答(共著)、リン環境と植物(三村徹郎、大西美輪、深城英弘)Scholarly book
- Joint work, NTS, Jul. 2006, JapanesePlant mimeticsScholarly book
- Joint work, 秀潤社, 2004, Japanese新版 植物ホルモンのシグナル伝達、植物細胞工学シリーズ20(共著)、オーキシンのシグナル伝達(深城英弘)Scholarly book
- Joint work, 養賢堂, 2001, Japanese農業および園芸76、植物の根に関する諸問題 -側根形成の分子機構-(田坂昌生、多米田悟司、深城英弘)Scholarly book
- Joint work, 朝日新聞社, 2001, Japanese植物学がわかる、アエラムック71(共著)、植物の重力感知システム(深城英弘)General book
- Joint work, 秀潤社, 2000, Japanese新版 植物の形を決める分子機構、植物細胞工学シリーズ12(共著)、重力屈性の遺伝的制御(深城英弘、田坂昌生)Scholarly book
- Joint work, 東北大学遺伝生態研究センター, 2000, Japanese宇宙植物科学の最前線、IGEシリーズ28(共著)、重力が植物の成長におよぼす影響に関する分子遺伝学的アプローチ(田坂昌生、丸橋弘治、深城英弘)Scholarly book
- Single work, JT生命誌研究館, 1998, JapaneseBiohistory 6、重力を感じる細胞(深城英弘)Others
- 第67回日本植物生理学会年会, Mar. 2026, Japaneseシロイヌナズナ sur2 変異体において,単一遺伝子変異によって細胞外オーキシンを介したアレロパシーが誘導されるPoster presentation
- 第67回日本植物生理学会年会, Mar. 2026, Japaneseシロイヌナズナの窒素誘導性ペプチドLOHN1 による側根形成の抑制制御機構Poster presentation
- 第67回日本植物生理学会年会, Mar. 2026, Japanese進化的に保存されたシトクロムb5 様ヘム結合タンパク質RLF は陸上植物における器官発生を制御するPoster presentation
- 第67回日本植物生理学会年会, Mar. 2026, Japaneseシロイヌナズナ属において季節温度応答性を示す新規遺伝子STTP の機能解析Oral presentation
- 第67回日本植物生理学会年会, Mar. 2026, JapaneseゼニゴケにおけるROP GDP 解離阻害因子の機能解析Oral presentation
- 近畿植物学会第14回講演会, Nov. 2025⾮維管束植物ゼニゴケのリン吸収機構におけるリン輸送体 PHT1 ファミリーの機能解析Poster presentation
- 近畿植物学会第14回講演会, Nov. 2025, Japanese進化的に保存されたシトクロムb5 様ヘム結合タンパク質 RLF はゼニゴケの器官発⽣を制御する
- 日本植物学会第89回大会, Sep. 2025, JapaneseシロイヌナズナLOHN1 ペプチドは高窒素環境におけるシステミックな側根抑制制御に関わるPoster presentation
- 日本植物学会第89回大会, Sep. 2025, Japaneseシロイヌナズナの分裂組織の形成・維持とDNA 損傷応答におけるAMB1 遺伝子の機能解析Poster presentation
- 日本植物学会第89回大会, Sep. 2025, Japanese非維管束植物ゼニゴケのリン吸収機構におけるリン輸送体PHT1 ファミリーの機能解析Poster presentation
- 日本植物学会第89回大会, Sep. 2025, Japanese進化的に保存されたシトクロム b5 様ヘム結合タンパク質 RLF はゼニゴケの器官発生を制御するOral presentation
- 日本植物学会第89回大会, Sep. 2025, JapaneseR2R3-MYB 転写因子SHOT GLASS によるゼニゴケ器官発生制御メカニズムOral presentation
- 日本植物学会第89回大会, Sep. 2025, Japaneseゼニゴケの形態形成における ROP-GDP 解離阻害因子の機能解析Oral presentation
- 日本植物学会第89回大会, Sep. 2025, JapaneseRNA m6A 修飾を介したDNA 損傷応答と分裂組織維持の制御機構Oral presentation
- 日本植物学会第89回大会, Sep. 2025, Japanese維管束幹細胞の分化制御におけるジャスモン酸の役割の解析Oral presentation
- 日本植物学会第89回大会, Sep. 2025, Japaneseカルスからのシュート再生におけるオーキシン誘導性 LBD 転写因子群の機能Oral presentation
- 日本植物学会第89回大会, Sep. 2025, JapaneseMpHYPNOS によるゼニゴケ無性芽の休眠促進メカニズムの解析Oral presentation
- 日本植物学会第89回大会, Sep. 2025, Japaneseシロイヌナズナ近縁種の野外トランスクリプトームから見出した季節性温度応答遺伝子 STTP の機能Oral presentation
- 第66回日本植物生理学会年会, Mar. 2025, Japanese進化的に保存されたシトクロムb5 様ヘム結合タンパク質であるRLF はゼニゴケにおける適切な器官発生に必要であるOral presentation
- 第66回日本植物生理学会年会, Mar. 2025, Japanese, Domestic conferenceCYP83B1 変異体は植物体外に IAA 放出することでアレロパシー効果を誘発するPoster presentation
- 第66回日本植物生理学会年会, Mar. 2025, Japanese, Domestic conferenceゼニゴケ葉状体の同化糸に関する形態学的・生理学的研究Poster presentation
- 第66回日本植物生理学会年会, Mar. 2025, Japanese, Domestic conferenceシロイヌナズナ LOHN1 は全身性の高窒素応答シグナルに応じてオーキシン輸送を制御し側根間隔を制御するOral presentation
- 第66回日本植物生理学会年会, Mar. 2025, Japanese, Domestic conferenceRNA m6A 修飾を介した DNA 損傷応答と分裂組織維持の制御機構Oral presentation
- 第66回日本植物生理学会年会, Mar. 2025, Japanese, Domestic conference一過性のサイトカイニン応答極大が肥大成長にむけて両面性維管束幹細胞を完成させるOral presentation
- 第66回日本植物生理学会年会, Mar. 2025, Japanese, Domestic conferenceオーキシン誘導性 LBD 転写因子群はカルスからのシュート再生を抑制するOral presentation
- 第66回日本植物生理学会年会, Mar. 2025, Japanese, Domestic conferenceゼニゴケの R2R3-MYB 転写因子 SHOT GLASS は栄養繁殖器官および有性生殖器官の形成を促進するOral presentation
- 第66回日本植物生理学会年会, Mar. 2025, Japanese, Domestic conferenceコケ植物ゼニゴケの植物体切断片からの再生におけるR2R3-MYB 型転写因子の機能Oral presentation
- 第47回日本分子生物学会年会, Nov. 2024, Japanese, Domestic conference植物の分裂組織とDNA損傷修復におけるRNA m6A修飾の機能解析Poster presentation
- 近畿植物学会第13回講演会, Nov. 2024, Japanese, Domestic conferenceEvolutionary conserved RLF, a plant cytochrome b5-like heme-binding protein, is essential for proper organ development in Marchantia polymorphaOral presentation
- 近畿植物学会第13回講演会, Nov. 2024, Japanese, Domestic conference植物の分裂組織における RNA m6A 修飾の機能解析Oral presentation
- 日本植物学会第88回大会, Sep. 2024, Japanese, Domestic conferenceジャスモン酸による維管束幹細胞分化制御機構の解析Poster presentation
- 日本植物学会第88回大会, Sep. 2024, Japanese, Domestic conference二次成長の開始における維管束組織系の幹細胞活性化機構Poster presentation
- 日本植物学会第88回大会, Sep. 2024, English, Domestic conferenceVitamin A controls auxin to regulate root architecture in ArabidopsisPoster presentation
- 日本植物学会第88回大会, Sep. 2024, Japanese, Domestic conferencepre-mRNA スプライシングが駆動する光合成活性を反映した側根形態制御Poster presentation
- 日本植物学会第88回大会, Sep. 2024, Japanese, Domestic conferenceゼニゴケ葉状体の形態形成におけるROP-GDP 解離阻害因子の機能解析Poster presentation
- 日本植物学会第88回大会, Sep. 2024, Japanese, Domestic conference高窒素環境における側根間隔の制御に関わるシロイヌナズナsORF, LOHN1 の機能解析Oral presentation
- 日本植物学会第88回大会, Sep. 2024, Japanese, Domestic conference根とシュートの発生に異常を示すシロイヌナズナ amb2 変異体の解析Oral presentation
- 日本植物学会第88回大会, Sep. 2024, Japanese, Domestic conferenceメリステム維持に異常を示すシロイヌナズナ aberrant meristem behavior1変異体における DNA損傷応答の解析Oral presentation
- 日本植物学会第88回大会, Sep. 2024, Japanese, Domestic conferenceゼニゴケのシトクロム b5 様ヘム結合タンパク質 MpRLF は栄養成長と生殖成長における適切な発生に必要であるOral presentation
- 日本植物学会第88回大会, Sep. 2024, Japanese, Domestic conference非維管束植物ゼニゴケのリン吸収における仮根の役割についてOral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024, EnglishUncovering the link between RNA editing and polyadenylation, two mysterious modifications of plant mitochondrial mRNA[Invited]Nominated symposium
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024維管束細胞分化を制御する糖シグナル伝達機構の解析Poster presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024根系パターンに異常を示すシロイヌナズナbird feather 変異体の解析Poster presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024根の形態形成に異常を示す新たなシロイヌナズナ変異体の探索と解析Poster presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024N6-メチルアデノシン(m6A)は植物のDNA 損傷修復に必要か?Poster presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024維管束細胞の分化制御における概日時計関連遺伝子GI の機能解析Poster presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024スクロースシグナリングは細胞分化を阻害することで維管束形成層の維持にはたらくPoster presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024非維管束植物ゼニゴケにおける液胞膜リン酸輸送体VPT の機能解析Poster presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024GCAM1 の標的遺伝子GROM はゼニゴケの杯状体形成だけでなく生殖器官の発生も制御するOral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024コケ植物ゼニゴケのリン吸収における仮根の機能についてOral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024シャジクモ(Chara braunii)細胞膜Na +共役型リン酸輸送体分子の機能解析Oral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024ゼニゴケのシトクロムb5 様ヘム結合タンパク質MpRLF は栄養成長と生殖成長における適切な発生に必要であるOral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024経時的遺伝子発現変化から理解する苔類ゼニゴケの胞子発芽過程Oral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024bHLH 型転写因子MpHYPNOS はゼニゴケ無性芽の休眠を制御するOral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024シロイヌナズナSUR2/CYP83B1 遺伝子の変異アリルfsp1 は側根創始細胞形成の側方抑制に働くTOLS2 ペプチドに対して低感受性を示すOral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024Lateral Root Primordium Formation by Extended Auxin Signaling in the Arabidopsis Root SystemOral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024オーキシン応答を安定に維持する場の選抜によるシロイヌナズナ側根間隔の制御Oral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024維管束幹細胞の確立に関する新たな制御因子の探索と解析Oral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024側根形成に異常を示すシロイヌナズナlbd 多重変異体を用いたカルス形成・シュート再生機構の解析Oral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024メリステム維持に異常を示すシロイヌナズナaberrant meristem behavior1 変異体におけるDNA 損傷応答の解析Oral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024一過的サイトカイニン応答は二次成長開始のプライミングシグナルとして機能するOral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024高窒素に応答した側根間隔の制御に関わるシロイヌナズナsORF, LOHN1 の機能解析Oral presentation
- 第65回日本植物生理学会年会, Mar. 2024ゼニゴケCHLH 遺伝子の変異はPPO 阻害除草剤耐性を付与するOral presentation
- 近畿植物学会第12回講演会, Dec. 2023ゼニゴケのシトクロムb5様ヘム結合タンパク質MpRLFは栄養成長と生殖成長における適切な発生に必要であるOral presentation
- 近畿植物学会第12回講演会, Dec. 2023植物のメリステム形成・維持の仕組み解明に向けて[Invited]Invited oral presentation
- 第46回日本分子生物学会年会, Dec. 2023植物において光合成活性はpre-mRNAスプライシング制御を介して側根形態に反映されるPoster presentation
- 第46回日本分子生物学会年会, Dec. 2023植物ミトコンドリアmRNAのポリA付加はシトクロムc成熟因子ccb3/ccmCのmRNA編集抑制によ りシトクロム呼吸経路を負に制御するPoster presentation
- 第46回日本分子生物学会年会, Dec. 2023N6-メチルアデノシン(m6A)は植物のDNA損傷修復に必要か?Poster presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023根系パターンに異常を示すシロイヌナズナbird feather 変異体の解析Poster presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023根の形態形成に異常を示す新たなシロイヌナズナ変異体の探索と解析Poster presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023非維管束植物ゼニゴケにおける液胞膜リン酸輸送体VPT の機能解析Poster presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023ゼニゴケの器官形成を制御する ROP シグナリングOral presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023植物の器官発生におけるシトクロムb5様ヘム結合タンパク質 RLF の機能解析Oral presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023サイトカイニンは形成層幹細胞の活性化シグナルとして機能するOral presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023側根形成に異常を示すシロイヌナズナlbd 多重変異体を用いたカルス形成・シュート再生機構の解析Oral presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023pre-mRNA スプライシング制御を介した光合成活性による側根形態制御Oral presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023維管束細胞の分化制御における概日時計関連遺伝子 GIの機能解析Oral presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023スクロースシグナルによる維管束幹細胞制御機構の解析Oral presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023維管束幹細胞の確立に関する新たな制御因子の探索と分子機構の解析Oral presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023ゼニゴケ CHLH 遺伝子の変異は PPO 阻害除草剤耐性を付与するOral presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023ミトコンドリア遺伝子 ccb3/ccmC のポリ A 付加を介した mRNA 編集抑制がシトクロムc 経路を制御するOral presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023MpHYPNOS は ABA 依存的および非依存的に無性芽の休眠を制御するOral presentation
- 日本植物学会第87回大会, Sep. 2023植物の反射光に潜む情報を解き明かす多波長偏光イメージング装置P-MIRU の開発[Invited]Nominated symposium
- 第33回国際シロイヌナズナ研究会議, Jun. 2023SUPERROOT2-dependent Fine-tuning of Local Auxin Distribution for Arabidopsis Lateral Root FormationPoster presentation
- ICAR2023, Jun. 2023, EnglishFunctional Analysis of RLF, a Cytochrome b5-Like Heme Binding Protein, in Plant Organ DevelopmentPoster presentation
- 第33回国際シロイヌナズナ研究会議, Jun. 2023Role of pre-mRNA splicing in lateral root morphogenesis regulated by plastid signalPoster presentation
- 第33回国際シロイヌナズナ研究会議, Jun. 2023Dissecting the role of miR160-dependent regulation of ARF gene expression in root cap differentiationPoster presentation
- 第33回国際シロイヌナズナ研究会議, Jun. 2023nteraction between polyadenylation and C-to-U editing of mitochondrial mRNA involved in cytochrome c maturationPoster presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023根とシュートの成長・発生に異常を示すシロイヌナズナamb 変異体におけるDNA 損傷応答の解析Poster presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023イチョウを用いた維管束細胞分化誘導システムの確立Poster presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023GCAM1 の標的遺伝子GROM はゼニゴケの杯状体形成に必須であるPoster presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023SUR2 はシロイヌナズナにおいて側根形成のための局所的なオーキシン分布を微調整するPoster presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023シロイヌナズナの根におけるARF10とARF16 の発現領域限局機構と根冠分化への寄与Oral presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023植物の器官発生におけるシトクロムb5 様ヘム結合タンパク質RLF の機能解析Oral presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023Dimorphism of LR growth of shy2/iaa3 and wt regulated by auxinOral presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023地上部ヘムシグナルはpre-mRNA スプライシング制御を介して側根形態を制御するOral presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023シロイヌナズナの側根間隔は二段階で調節されるOral presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023An activity of phytoene desaturase negatively regulates auxin biosynthesis and signalingOral presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023ROP シグナル伝達系によるゼニゴケ形態形成制御メカニズムOral presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023MpBZR3 はゼニゴケの配偶子器発生を制御するOral presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023MpHYPNOS によるゼニゴケ無性芽の休眠制御機構Oral presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023非維管束植物ゼニゴケのリン応答におけるMYBCC-SPX モジュールの機能Oral presentation
- 第64回日本植物生理学会年会, Mar. 2023植物ミトコンドリアのシトクロムc成熟に関わるmRNA 編集とポリA 付加の関係性についてOral presentation
- 近畿植物学会第11回講演会, Nov. 2022糖シグナルによる維管束幹細胞制御機構の解析Oral presentation
- 近畿植物学会第11回講演会, Nov. 2022器官発生におけるヘム結合タンパク質RLFの機能解析Oral presentation
- 植物化学調節学会第57回大会, Nov. 2022維管束幹細胞の分裂と分化を制御する一過的サイトカイニン応答
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022An activity of phytoene desaturase negatively regulates auxin biosynthesis and signalingOral presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022Discussion on the mechanism of selective growth of roots in shy2-101 by fluorescence photographyOral presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022根とシュートの成長・発生に異常を示すシロイヌナズナamb変異体におけるDNA損傷応答の解析Oral presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022植物ミミトコンドリアにおけるシトクロムc成熟に関わるmRNA編集とポリA付加の関係性についてOral presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022ヘムシグナルによる側根形態制御にはpre-mRNAスプライシング制御が介在するOral presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022ゼニゴケのヘム結合タンパク質MpRLFは適切な葉状体と杯状体の形成に必要であるOral presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022シクラメン属のユニークな成長運動:花柄コイリングの機構解明に向けてOral presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022ゼニゴケ無性芽の休眠を促進するMpHYPNOSの機能Oral presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022薬用植物ニチニチソウの種子発芽過程におけるアルカロイド代謝開始過程の解析Oral presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022維管束幹細胞の分裂と分化を制御するサイトカイニンの機能と動態Oral presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022PPO 阻害除草剤耐性ゼニゴケの単離と解析Poster presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022糖シグナルによる維管束幹細胞制御機構の解析Poster presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022シロイヌナズナ側根形成変異体を用いたカルス形成機構の解析Poster presentation
- 日本植物学会第86回大会, Sep. 2022コケ植物ゼニゴケのリン欠乏応答を制御するMYBCC 型転写因子の機能解析Poster presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, EnglishInvolvement of phytoene desaturase activity and auxin signaling for root-cut response in Arabidopsis thalianaOral presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, Japanese苔類ゼニゴケの杯状体形成におけるsingle-MYB 遺伝子GROM の機能解析Oral presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, EnglishAuxin response of exaggerated root cut response in aux/iaa3/shy2-101 dominant mutantOral presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, Japanese側根形成におけるシトクロムb5 様ヘム/ ステロイド結合タンパク質 RLF の機能解析Oral presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, Japanese内生オーキシン量を増加させるfsp1/sur2 変異がfwr/gnom 変異体の側根形成能を回復させるOral presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, Japanese維管束幹細胞の運命制御におけるサイトカイニンの機能解析Oral presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, Japaneseゼニゴケ無性芽におけるMpHYPNOSを介した休眠制御Oral presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, Japanese非維管束植物ゼニゴケのリン欠乏応答におけるMYBCC-SPX モジュールの機能Poster presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, Japaneseシロイヌナズナ根系構築におけるイネDECUSSATE 相同遺伝子WAD1 およびWAD2 の機能解析Poster presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, Japaneseカリウムイオン排出チャネルGORK を介した根の成長・発生制御機構の解析Poster presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, Japaneseシロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2 ペプチドに対する応答異常変異体の探索と解析Poster presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, Japanese根とシュートの成長・発生に異常を示すシロイヌナズナ新規変異体L-11 #7 の解析Poster presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, Japaneseゼニゴケ胞子における非対称分裂メカニズムPoster presentation
- 第63回日本植物生理学会年会, Mar. 2022, Japanese薬用植物ニチニチソウの種子発芽過程におけるアルカロイド代謝開始機構の解析Poster presentation
- 近畿植物学会第10回講演会, Nov. 2021側根形成におけるシトクロム b5 様ヘム/ステロイド結合タンパク質RLFの機能解析Oral presentation
- 近畿植物学会第10回講演会, Nov. 2021カリウムイオン排出チャネル GORK を介した根の成⾧・発生制御機構の解析Oral presentation
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021ゼニゴケ器官形成におけるR2R3-MYB 転写因子 SHOTGLASS の機能
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021カリウムイオン排出チャネル GORKを介した根の成長・発生制御機構の解析
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021ゼニゴケ葉状体の形態形成におけるMpREN の機能解析
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021シロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2 ペプチドに対する応答異常変異体の探索と解析
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021シロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2 ペプチド低感受性変異体 toti1 の解析
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021側根形成におけるシトクロムb5 様ヘム/ ステロイド結合タンパク質 RLF の機能解析
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021根系構築に異常を示すシロイヌナズナ新規変異体の解析
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021ゼニゴケの葉状体再生におけるGCAM1 および GC1L の機能
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021ゼニゴケ無性芽におけるMpHYPNOSを介した休眠制御
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021基部陸上植物ゼニゴケのリン欠乏応答におけるMpMYBCC-MpSPX モジュールの機能
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021基部陸上植物ゼニゴケにおけるリンの吸収・分配・貯蔵のメカニズム
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021陸上植物に保存されたオーキシン応答遺伝子 WIP のゼニゴケにおける機能解析
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021位置情報による維管束幹細胞の運命制御
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021長時間発光イメージングによる根の遺伝子発現振動の解析
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021発光レポーター遺伝子を用いた側根プレパターニング変異体の単離と解析
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021側根形成能が顕著に低下するシロイヌナズナ変異体 fwr とその抑圧変異体 fsp1 の解析
- 日本植物学会第85回大会, Sep. 2021プラスチドシグナル依存的な側根形成制御におけるpre-mRNA スプライシングの役割
- 第62回日本植物生理学会年会, Mar. 2021発光レポーター遺伝子を用いた側根プレパターニング変異体の単離と解析Poster presentation
- 第62回日本植物生理学会年会, Mar. 2021側根形成能が顕著に低下するシロイヌナズナの変異体fewer roots (fwr)のサプレッ サー変異体fewer roots suppressor 1(fsp1)の解析Oral presentation
- 第62回日本植物生理学会年会, Mar. 2021サイトカイニンによる維管束幹細胞の運命制御Oral presentation
- 第62回日本植物生理学会年会, Mar. 2021薬用植物ニチニチソウの発芽に伴うアルカロイド代謝変動の解析Oral presentation
- 第62回日本植物生理学会年会, Mar. 2021ゼニゴケにおけるR2R3-MYB 転写因子SHOTGLASS の機能解析Oral presentation
- 第62回日本植物生理学会年会, Mar. 2021ゼニゴケにおけるLAX PANICLE2 相同遺伝子の機能解析Oral presentation
- International Webinar Series "From Cellular Dynamics to Morphology", Nov. 2020Mechanisms of auxin-regulated lateral root formation[Invited]Nominated symposium
- 第62回日本植物生理学会年会, Sep. 2020薬用植物ニチニチソウの発芽に伴うアルカロイド代謝変動の解析Oral presentation
- 日本植物学会第84回大会, Sep. 2020無性芽形成に重要なKAR/RopGEFを制御する上流因子の探索Poster presentation
- 日本植物学会第84回大会, Sep. 2020薬用植物ニチニチソウをモデルとしたアルカロイド代謝分化過程の解析Poster presentation
- Sep. 2020ポプラ短縮周年系を用いた季節的なリン転流機構の解明と野外RNA-Seqとの比較Oral presentation
- 日本植物学会第84回大会, Sep. 2020苔類ゼニゴケの杯状体形成に重要なsingle-MYBタンパク質の同定Oral presentation
- 日本植物学会第84回大会, Sep. 2020ゼニゴケ側生器官形成を制御するMYB転写因子GCAM2の機能解析Oral presentation
- 日本植物学会第84回大会, Sep. 2020基部陸上植物ゼニゴケにおけるリン酸欠乏に応答した遺伝子転写制御Oral presentation
- 日本植物学会第84回大会, Sep. 2020食虫植物の栄養塩認識機構の解析Oral presentation
- 第62回日本植物生理学会年会, Mar. 2020薬用植物ニチニチソウの発芽に伴うアルカロイド代謝変動の解析Oral presentation
- 第61回日本植物生理学会年会, Mar. 2020, Japaneseニチニチソウの成長に伴う葉組織二次代謝変動の解析Public symposium
- 第61回日本植物生理学会年会, Mar. 2020, Japanese側根形成を負に制御するTOLS2 ペプチド応答性が変化する変異体の解析Poster presentation
- 第61回日本植物生理学会年会, Mar. 2020, Japanese発光レポーター遺伝子を用いた側根プレパターニング変異体の単離と解析Poster presentation
- 第61回日本植物生理学会年会, Mar. 2020, Japaneseゼニゴケの再生を制御する2 つのR2R3-MYB 型転写因子の機能解析Poster presentation
- 第61回日本植物生理学会年会, Mar. 2020, Japanese苔類ゼニゴケの杯状体形成に関わる新奇因子の同定と機能解析Poster presentation
- 第61回日本植物生理学会年会, Mar. 2020, Japaneseポプラ短縮周年系における季節現象再現性の評価Oral presentation
- 第61回日本植物生理学会年会, Mar. 2020, Japanese側根形成におけるオーキシン作用の二面性Nominated symposium
- 遺伝研研究会 イネ分子遺伝学の夢, Nov. 2019, JapaneseイネDECUSSATE遺伝子のシロイヌナズナホモログWANDERING ROOT遺伝子の機能解析[Invited]Oral presentation
- 日本植物学会第83回大会, Sep. 2019, Japanese重イオンビーム照射胞子を用いたゼニゴケ配偶体形態形成変異体のスクリーニングと解析Poster presentation
- 日本植物学会第83回大会, Sep. 2019, Japaneseレポーター遺伝子を用いたシロイヌナズナ側根プレパターニング機構の解析Poster presentation
- 日本植物学会第83回大会, Sep. 2019, Japaneseシロイヌナズナ側根形成能が顕著に低下するfewer roots 変異体のサプレッサー変異体の解析Poster presentation
- 日本植物学会第83回大会, Sep. 2019, Japanese上野 亜紀,樋渡 琢真,三村 徹郎,深城 英弘,石崎 公庸Poster presentation
- 日本植物学会第83回大会, Sep. 2019, Japaneseニチニチソウ乳管細胞・異形細胞の発生,分化,代謝変動の解析Poster presentation
- 日本植物学会第83回大会, Sep. 2019, Japanese基部陸上植物ゼニゴケにおけるリン応答と転流の解析Poster presentation
- 日本植物学会第83回大会, Sep. 2019, Japaneseゼニゴケ無性芽形成に機能するRop およびRopGEF の細胞内局在解析Poster presentation
- 日本植物学会第83回大会, Sep. 2019, Japanese根系の光環境が植物のリン酸応 答に与える影響Oral presentation
- 日本植物学会第83回大会, Sep. 2019, Japanese生育土壌の違いによる植物体イ オノームの変動―植物体から生 育場所を推定できるか?―Oral presentation
- 日本植物学会第83回大会, Sep. 2019, JapaneseTOLS2ペプチドによる側根形成 関連遺伝子の発現制御に異常を 示す変異体の解析Oral presentation
- The 23rd International Conference on Plant Growth Substances, Jun. 2019, EnglishTOLS2/PIPL3 peptide-RLK7 receptor cascade regulates lateral root spacing during Arabidopsis lateral root founder cell formation[Invited]Invited oral presentation
- Tohoku Forum for Creativity Thematic Program 2010 Plant Stem Cells: Source of Plant Vitality Workshop2 Auxin and plant stem cells, May 2019, EnglishRegulation of Auxin-mediated lateral root formation[Invited]Public discourse
- 第60回日本植物生理学会年会, Mar. 2019, Japanese, 名古屋, Domestic conference活性酸素種と活性カルボニル種はオーキシンの側根形成シグナルをフィードフォワード調節するOral presentation
- 第60回日本植物生理学会年会, Mar. 2019, Japanese, 名古屋, Domestic conferenceニチニチソウ乳管細胞・異形細胞の発生、分化、代謝変動の解析Oral presentation
- 第60回日本植物生理学会年会, Mar. 2019, Japanese, 名古屋, Domestic conferenceセントポーリアの温度降下感受性に関わる分子機構の解析Poster presentation
- 第60回日本植物生理学会年会, Mar. 2019, Japanese, 名古屋, Domestic conferenceゼニゴケ腹鱗片の粘液細胞形成におけるRop シグナル伝達の役割Poster presentation
- 第60回日本植物生理学会年会, Mar. 2019, Japanese, 名古屋, Domestic conferenceゼニゴケの2 つのR2R3-MYB 型転写因子を介した異なる幹細胞性獲得制御機構Oral presentation
- 第60回日本植物生理学会年会, Mar. 2019, Japanese, 名古屋, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2 ペプチドによる遺伝子の発現制御に異常を示す変異体の解析Poster presentation
- 第60回日本植物生理学会年会, Mar. 2019, Japanese, 名古屋, Domestic conferenceシロイヌナズナとミチタネツケバナにおける根の皮層形成の分子機構の比較Oral presentation
- イネ分子遺伝学の飛躍, Nov. 2018, Japanese, 国立遺伝学研究所, Domestic conferenceペプチドホルモン-受容体カスケードによる側根形成の側方抑制[Invited]Invited oral presentation
- 6th Plant Dormancy Symposium, Oct. 2018, English, Kyoto, Japan, Dormancy is a critical strategy of plants to survive under severe environmental conditions by pausing growth, development, and physical activity, which can occur in diverse organs such as seeds and buds of diverse plant lineages. The liverwort Marchantia polymorpha, reproduces asexually by clonal individuals, gemmae, that are dormant within the specialized receptacle, called ge, International conferenceMolecular genetics of gemma dormancy in a basal land plantMarchantia polymorpha[Invited]Invited oral presentation
- 日本植物学会第82回大会, Sep. 2018, Japanese, 広島国際会議場, Domestic conference根系の光環境が植物のリン酸応答に与える影響Poster presentation
- 日本植物学会第82回大会, Sep. 2018, Japanese, 広島国際会議場, Domestic conferenceポプラの短期落葉―開芽系を用いた季節的なリン酸転流機構の解明と野外RNA-seqとの比較Oral presentation
- 日本植物学会第82回大会, Sep. 2018, Japanese, 広島国際会議場, Domestic conferenceニチニチソウ乳管細胞・異形細胞の発生・分化・機能の解析Oral presentation
- 日本植物学会第82回大会, Sep. 2018, Japanese, 広島国際会議場, Domestic conferenceセントポーリア温度降下傷害における機械受容Ca2+チャネルの関与と液胞動態の解析Poster presentation
- 日本植物学会第82回大会, Sep. 2018, Japanese, 広島国際会議場, Domestic conferenceゼニゴケの無性芽形成におけるKAR/RopGEFの機能ドメイン解析Poster presentation
- 日本植物学会第82回大会, Sep. 2018, Japanese, 広島国際会議場, Domestic conferenceRopGEFの機能ドメイン解析Poster presentation
- 日本植物学会第82回大会, Sep. 2018, Japanese, 広島国際会議場, Domestic conferenceゼニゴケのMYB型転写因子GCAM1による幹細胞制御機構の解析Poster presentation
- 日本植物学会第82回大会, Sep. 2018, Japanese, 広島国際会議場, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成能が顕著に低下するfewer roots変異体のサプレッサー変異体の解析Poster presentation
- 日本植物学会第82回大会, Sep. 2018, Japanese, 広島国際会議場, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2ペプチドに対する応答異常変異体の解析Poster presentation
- 日本植物学会第82回大会, Sep. 2018, Japanese, 広島国際会議場, Domestic conferenceシャジクモ細胞膜リン酸輸送体の分子機能解析Oral presentation
- International Symposium on Plant Lipids, Jul. 2018, English, Yokohama, International conferenceAnalysis of lipids accumulated in laticifer and idioblast cells in Catharanthus roseus.Poster presentation
- EMBO Workshop, New shores in land plant evolution, Jun. 2018, English, Lisbon, Portugal, International conferenceThe critical role of MpbHLH40 as a positive regulator of dormancy in theliverwort Marchantia polymorphaPoster presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2018, Japanese, 札幌コンベンションセンター, Domestic conference根系の光環境が植物のリン酸応答に与える影響Poster presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2018, Japanese, 札幌コンベンションセンター, Domestic conferenceニチニチソウ乳管細胞および異形細胞の分化機構の解明Poster presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2018, Japanese, 札幌コンベンションセンター, Domestic conferenceセントポーリアの温度降下感受性に関わる分子機構の解析Oral presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2018, Japanese, 札幌コンベンションセンター, Domestic conferenceゼニゴケ無性芽形成初期を制御するRop シグナル伝達経路の機能解析Oral presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2018, Japanese, 札幌コンベンションセンター, Domestic conferenceゼニゴケ無性芽の休眠を正に制御するMpbHLH40の機能解析Oral presentation
- The 65th NIBB conference ーMarchantia Workshop 2020−, Dec. 2017, English, 基礎生物学研究所(National Institute for Basic Biology), International conferenceKARAPPO encoding RopGEF is critical for the gemma initial development in the liverwort Marchantia polymorphaPoster presentation
- The 65th NIBB conference ーMarchantia Workshop 2017−, Dec. 2017, English, 基礎生物学研究所(National Institute for Basic Biology), International conferenceKARAPPO encoding RopGEF is critical for the gemma initial development in the liverwort Marchantia polymorphaPoster presentation
- 遺伝研研究会 イネ分子遺伝学の方向性, Nov. 2017, Japanese器官が作られる場所はどのように決まるのか?ー側根の形成位置を決める仕組みに迫るー[Invited]Oral presentation
- Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Nov. 2017, English, Academia Sinica, Taipei, Taiwan, International conferenceMechanisms of Auxin-Regulated Lateral Root Formation in ArabidopsisInvited oral presentation
- Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Nov. 2017, English, Academia Sinica, International conferenceMechanism of cell injury induced by a rapid temperature decrease in Saintpaulia sp. leaves.Poster presentation
- Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Nov. 2017, English, Academia Sinica, International conferenceKARAPPO encoding RopGEF is critical for the gemma development in the liverwort Marchantia polymorphaPoster presentation
- Taiwan-Japan Plant Biology 2018, Nov. 2017, English, Academia Sinica, International conferenceIdioblast and laticifer cells play important roles in alkaloid biosynthesis in Catharanthus plantsPoster presentation
- Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Nov. 2017, English, Academia Sinica, International conferenceIdioblast and laticifer cells play important roles in alkaloid biosynthesis in Catharanthus plantsPoster presentation
- Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Nov. 2017, English, Academia Sinica, International conferenceFunctional characterization of MpbHLH40 in gemma dormancy of a liverwort Marchantia polymorphaOral presentation
- Taiwan-Japan Plant Biology 2017, Nov. 2017, English, Academia Sinica, International conferenceA shortened annual cycle system; a tool for laboratory studies of seasonal phenomena in treesPoster presentation
- THE DEVELOPING PLANT IN ITS ENVIRONMENT, Oct. 2017, English, Lyon, France, International conferenceSeasonal Pre-translocation in the deciduous poplar tree.Poster presentation
- THE DEVELOPING PLANT IN ITS ENVIRONMENT, Oct. 2017, English, Domaine Lyon Saint-Joseph, International conferenceMechanism of cell injury induced by a rapid temperature decrease in Saintpaulia sp. leaves.Poster presentation
- THE DEVELOPING PLANT IN ITS ENVIRONMENT, Oct. 2017, English, Lyon, France, International conferenceIdioblast and laticifer cells play important roles in alkaloid biosynthesis in Catharanthus roseus.Poster presentation
- Bilateral Closure Symposium of GDRI Integrative Plant Biology Network, Oct. 2017, English, Domaine Lyon Saint-Joseph, Lyon, France, International conferenceControl of root system architecture through auxin-mediated lateral root formation[Invited]Invited oral presentation
- 日本植物学会第81回大会, Sep. 2017, Japanese, 東京理科大学 野田キャンパス, Domestic conference落葉木本植物ポプラの季節的なリン転流機構の解析Oral presentation
- 日本植物学会第81回大会, Sep. 2017, Japanese, 東京理科大学 野田キャンパス, Domestic conference根系の光環境が植物のリン応答に及ぼす影響Poster presentation
- 日本植物学会第81回大会, Sep. 2017, Japanese, 東京理科大学 野田キャンパス, Domestic conference汽水産緑藻 Ulva compressa のNa+に依存した成長とリン酸の取り込みについてPoster presentation
- 日本植物学会第81回大会, Sep. 2017, Japanese, 東京理科大学 野田キャンパス, Domestic conference基部陸上植物ゼニゴケにおけるリン酸に応答した遺伝子転写制御Poster presentation
- 日本植物学会第81回大会, Sep. 2017, Japanese, 東京理科大学 野田キャンパス, Domestic conferenceセントポーリアの温度感受性に関わる分子機構の解析Poster presentation
- 日本植物学会第81回大会, Sep. 2017, Japanese, 東京理科大学 野田キャンパス, Domestic conferenceゼニゴケ無性芽発生を制御するRopGEF/KARの生化学的解析Poster presentation
- 日本植物学会第81回大会, Sep. 2017, Japanese, 東京理科大学 野田キャンパス, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2類似ペプチドの解析Poster presentation
- 日本植物学会第81回大会, Sep. 2017, Japanese, 東京理科大学 野田キャンパス, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成を抑制するTOLS2ペプチドに対する高感受性変異体の解明Poster presentation
- 日本植物学会第81回大会, Sep. 2017, Japanese, 東京理科大学 野田キャンパス, Domestic conferenceさまざまな植物における紅葉・黄葉現象の解析Poster presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2017, Japanese, 鹿児島, Domestic conference根の障害物認識機構の解明Poster presentation
- 日本藻類学会第41回大会, Mar. 2017, Japanese, 高知, Domestic conference汽水産緑藻 Ulva proliferaの Na+ に依存した成長とリン酸の取り込みについてOral presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2017, Japanese, 鹿児島, Domestic conferenceポプラの短期落葉- 開芽系を用いた季節的なリン転流機構の解析Oral presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2017, Japanese, 鹿児島, Domestic conferenceニチニチソウ異形細胞・乳管細胞におけるTIA 代謝機構の解析Oral presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2017, Japanese, 鹿児島, Domestic conferenceなぜセントポーリアは急激な温度降下に敏感なのか?Oral presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2017, Japanese, 鹿児島, Domestic conferenceゼニゴケ無性芽の休眠に関連するbHLH 遺伝子の機能解析Oral presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2017, Japanese, 鹿児島, Domestic conferenceゼニゴケ杯状体形成に重要なGEMMA CUP-ASSOCIATED MYB2の機能Poster presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2017, Japanese, 鹿児島, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成に関わるTOLS2 ペプチドによる遺伝子の発現制御に異常を示す変異体の解析Poster presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2017, Japanese, 鹿児島, Domestic conferenceシロイヌナズナのリン酸濃度応答遺伝子の探索/第58回日本植物生理学会年会Oral presentation
- 第58回日本植物生理学会年会, Mar. 2017, Japanese, 鹿児島, Domestic conferenceMarchantia polymorphaでの無性芽形成初期におけるRopGEF 遺伝子、KARAPPOの重要な役割Poster presentation
- 近畿植物学会講演会, Nov. 2016, Japanese, 兵庫県民会館, Domestic conference急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムOral presentation
- 近畿植物学会講演会, Nov. 2016, Japanese, 兵庫県民会館, Domestic conferenceシロイヌナズナのリン酸濃度応答遺伝子の探索Oral presentation
- 日本植物学会 第80回大会, Sep. 2016, Japanese, 沖縄, Domestic conference急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムPoster presentation
- 日本植物学会 第80回大会, Sep. 2016, Japanese, 沖縄, Domestic conferenceポプラの短期落葉- 開芽系を用いた季節的なリン転流機構の解析Poster presentation
- 日本植物学会 第80回大会, Sep. 2016, Japanese, 沖縄, Domestic conferenceポプラにおける葉組織リン代謝の季節変動 - 野外と実験室培養系の比較-Poster presentation
- 日本植物学会 第80回大会, Sep. 2016, Japanese, 沖縄, Domestic conferenceニチニチソウ異形細胞におけるTIA 代謝分化機構の解析Poster presentation
- 日本植物学会 第80回大会, Sep. 2016, Japanese, 沖縄, Domestic conferenceゼニゴケ無性芽形成におけるLATERAL SUPPRESSOR 相同遺伝子の機能Poster presentation
- 日本植物学会 第80回大会, Sep. 2016, Japanese, 沖縄, Domestic conferenceゼニゴケ無性芽の休眠に関連するbHLH遺伝子の機能解析Poster presentation
- 日本植物学会 第80回大会, Sep. 2016, Japanese, 沖縄, Domestic conferenceゼニゴケの栄養繁殖器官におけるトランスクリプトーム解析Poster presentation
- 日本植物学会 第80回大会, Sep. 2016, Japanese, 沖縄, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成に関わるTOLS2ペプチドによるPUCHI 遺伝子の発現制御機構の解析Poster presentation
- 日本植物学会 第80回大会, Sep. 2016, Japanese, 沖縄, Domestic conferenceシロイヌナズナのリン酸濃度応答遺伝子の探索/日本植物学会 第80回大会Poster presentation
- 日本土壌肥料学会 2016年度年会, Sep. 2016, Japanese, 佐賀, Domestic conferenceシロイヌナズナのリン応答におけるBT遺伝子の機能の解析Oral presentation
- 日本植物学会 第80回大会, Sep. 2016, Japanese, 沖縄, Domestic conferenceUlva prolifera のナトリウム依存性の成長量変化についてPoster presentation
- 第68回日本細胞生物学会大会, Jun. 2016, Japanese, 京都, Domestic conference側根発生の3Dライブイメージングによる根端メリステム構築の解析Poster presentation
- EMBO workshop "New model systems for early land plant evolution", Jun. 2016, English, Vienna, Many plants have an ability to generate clonal progenies directly from somatic cells of vegetative organs, however, little is known about the molecular mechanism. The liverwort Marchantia polymorpha performs vegetative propagation via gemmae generated in the gemma cups formed on the dorsal side of thallus. To investigate regulatory genes involved in the process of gemma and gem, International conferenceCritical role of the R2R3-MYB gene GEMMA CUP-ASSOCIATED MYB1 for vegetative propagation in the liverwort Marchantia polymorpha L.Poster presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, Domestic conference葉緑体ATPase によるH+ 流出制御が及ぼす光化学系I の酸化還元状態の解析Oral presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学, Domestic conference根における多層の皮層形成の分子機構の解析[Invited]Invited oral presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学, Domestic conference過酸化脂質由来のカルボニル種は側根形成のオーキシンシグナルを媒介するOral presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, Domestic conferenceゼニゴケ無性芽の発芽に関連するbHLH 遺伝子の同定と機能解析Poster presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, Domestic conferenceゼニゴケの無性芽形成に必須な遺伝子KARAPPOの解析Poster presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, Domestic conferenceゼニゴケの杯状体形成に必須なR2R3-MYB 転写因子GCAM1 の機能解析Poster presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, Domestic conferenceゼニゴケの杯状体形成に関与する遺伝子GCAM2の解析Poster presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学, Domestic conferenceシロイヌナズナのTOLS1MAKR4は側根形成の開始を制御するOral presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学, Domestic conferenceジャスモン酸はCOI1 非依存の経路でオーキシンシグナリングを制御するOral presentation
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, Mar. 2016, Japanese, 盛岡, Domestic conferenceTerpenoid indole alkaloids accumulated in Catharanthus roseus idioblast and laticifer cellsPoster presentation
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, Mar. 2016, Japanese, 盛岡, Domestic conferenceSeasonal changes in phosphorus metabolites in leaves of the deciduous woody plant, Populus albaPoster presentation
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, Mar. 2016, Japanese, 盛岡, Domestic conferenceRe-translocation of nutrients during heartwood formation of Poplar treeOral presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, Domestic conferenceIdentification of the gene GEMMA CUP-ASSOCIATED MYB 2 involved in the formation of gemma cup in Marchantia polymorphaPoster presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, Domestic conferenceIdentification and characterization of a bHLH gene involved in gemma germination in the liverwort Marchantia polymorpha.Poster presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, Domestic conferenceFunctional characterization of GCAM1, an R2R3-MYB essential for the development of gemma cup in the liverwort Marchantia polymorpha.Poster presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, Domestic conferenceFunctional characterization of a LATERAL SUPPRESSOR homolog in Marchantia polymorpha.Poster presentation
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, Mar. 2016, Japanese, 盛岡, Domestic conferenceEvolutional analysis of phosphate transport mechanism in plant cellsOral presentation
- 第57回日本植物生理学会年会, Mar. 2016, Japanese, 日本植物生理学会, 岩手大学上田キャンパス, Domestic conferenceCharacterization of KARAPPO, an essential gene for gemma formation in Marchantia polymorpha.Poster presentation
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, Mar. 2016, Japanese, 盛岡, Domestic conferenceAnalysis of temperature-sensing mechanism in SaintpauliaPoster presentation
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, Mar. 2016, Japanese, 盛岡, Domestic conferenceAnalysis of seasonal re-translocation of phosphate in a deciduous woody plant, Populus albaOral presentation
- (一社)日本植物生理学会第57回年会, Mar. 2016, Japanese, 盛岡, Domestic conferenceAnalysis of phosphate supply-responsive genes in Arabidopsis thalianaPoster presentation
- 第38回日本分子生物学会年会 第88回日本生化学会大会 合同大会, Dec. 2015, Japanese, 日本分子生物学会年会 日本生化学会大会, 神戸ポートアイランド, Domestic conferenceシロイヌナズナの側根発生を3次元タイムラプスイメージングで視る[Invited]Invited oral presentation
- 第22回時間生物学会, Nov. 2015, Japanese, 東京大学, Domestic conferenceArtificial modification of four seasons response in plantsOral presentation
- 日本植物学会第79回大会, Sep. 2015, Japanese, 新潟コンベンションセンター, Domestic conference無性芽形成異常変異体karappo-2における変異原因遺伝子の解析Oral presentation
- 日本植物学会第79回大会シンポジウム, Sep. 2015, Japanese, 日本植物学会, 朱鷺メッセ:新潟コンベンションセンター, Domestic conference側根発生の制御機構[Invited]Invited oral presentation
- 日本植物学会第79回大会, Sep. 2015, Japanese, 新潟コンベンションセンター, Domestic conference植物組織における低分子量物質分布の質量顕微鏡による可視化Oral presentation
- 日本植物学会第79回大会, Sep. 2015, Japanese, 新潟コンベンションセンター, Domestic conference順遺伝学で明らかにするアブラナ科の根の形態進化Oral presentation
- 日本植物学会第79回大会, Sep. 2015, Japanese, 新潟コンベンションセンター, Domestic conference急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムPoster presentation
- 日本植物学会第79回大会, Sep. 2015, Japanese, 新潟コンベンションセンター, Domestic conferenceランタナの花色変化における生理課程解析Oral presentation
- 日本植物学会第79回大会, Sep. 2015, Japanese, 新潟コンベンションセンター, Domestic conferenceポプラにおけるリン酸転流経路の季節変化(ポスター)Poster presentation
- 日本植物学会第79回大会, Sep. 2015, Japanese, 新潟コンベンションセンター, Domestic conferenceポプラにおけるリン酸転流経路の季節変化Oral presentation
- 日本植物学会第79回大会, Sep. 2015, Japanese, 新潟コンベンションセンター, Domestic conferenceニチニチソウ組織におけるTerpenoid indole alkaloidの合成と蓄積機構の解明Oral presentation
- 日本植物学会第79回大会, Sep. 2015, Japanese, 新潟コンベンションセンター, Domestic conferenceゼニゴケの杯状体形成を制御するGCAM1の機能解析Poster presentation
- 日本植物学会第79回大会, Sep. 2015, Japanese, 新潟コンベンションセンター, Domestic conferenceゼニゴケの杯状体と生殖器の形成に関与するR2R3-MYB型転写因子GCAM2の解析Oral presentation
- 日本植物学会第79回大会, Sep. 2015, Japanese, 新潟コンベンションセンター, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成に関わるTOLS2ペプチドによるPUCHI遺伝子の発現制御機構の解析Oral presentation
- International ERATO Higashiyama Live-Holonics Symposium 2015, Aug. 2015, English, JST, ERATO Higashiyama Live-Holonics Project, Nagoya University, 名古屋大学野依記念学術交流館, Domestic conferenceMolecular mechanisms underlying the formation of multiple cortex cell layers in plant rootsPoster presentation
- SEB Prague 2015, Jul. 2015, English, The Society for Experimental Biology, Charles Darwin House, Prague, International conferenceDissecting the role of mechanical regulation during lateral root organogenesis[Invited]Invited oral presentation
- SEB Prague 2015, Jul. 2015, English, The Society for Experimental Biology, Charles Darwin House, Prague, International conferenceAnalyzing the gene regulatory network controlling lateral root development in Arabidopsis reveals a role for very long chain fatty acids[Invited]Invited oral presentation
- 日本発生生物学会第48回年会, Jun. 2015, English, 日本発生生物学会, つくば国際会議場, Domestic conferenceVisualization of Arabidopsis lateral root organogenesis using 3D time-lapse imagingPoster presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, Japanese, 東京農業大学, Domestic conference落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析Oral presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, Japanese, 東京農業大学, Domestic conference木本植物の心材形成時における栄養塩回収機構の解析Oral presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, Japanese, 東京農業大学, Domestic conference無性芽形成異常変異体karappo2 における変異原因遺伝子の同定Poster presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, Japanese, 東京農業大学, Domestic conference植物細胞リン酸輸送機構とその進化についてOral presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, Japanese, 東京農業大学, Domestic conference質量分析装置を用いたシロイヌナズナ植物体のオーキシン添加に応答する代謝変動解析Poster presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, Japanese, 東京農業大学, Domestic conference急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムPoster presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, Japanese, 東京農業大学, Domestic conferenceニチニチソウ茎組織におけるTerpenoid indole alkaloidの分布解析Oral presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, Japanese, 東京農業大学 世田谷キャンパス, Domestic conferenceタイムラプスイメージングによるシロイヌナズナの側根発生の解析Oral presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, Japanese, 東京農業大学, Domestic conferenceゼニゴケにおける杯状体形成関連遺伝子GEMMA-CUP ASSOCIATED MYB 2 の解析Poster presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, Japanese, 東京農業大学 世田谷キャンパス, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成におけるオーキシン依存的な転写制御機構の解析Oral presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, Japanese, 東京農業大学 世田谷キャンパス, Domestic conferenceシロイヌナズナTOLS2遺伝子は側根形成頻度を制御するOral presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, Japanese, 東京農業大学 世田谷キャンパス, Domestic conferenceR2R3-MYB型転写因子GCAM1は苔類ゼニゴケの杯状体形成を制御するPoster presentation
- The 2nd International Symposium on Plant Environmental Sensing, Mar. 2015, English, AIST, Odaiba, International conferencePhosphate status in plant lifePoster presentation
- The 2nd International Symposium on Plant Environmental Sensing, Mar. 2015, English, AIST, Odaiba, International conferenceMechanism of cell injury induced by a rapid temperature decrease in Saintpaulia sp. leaves.Poster presentation
- 第56回日本植物生理学会年会, Mar. 2015, English, 東京農業大学 世田谷キャンパス, Domestic conferenceGenetic regulatory mechanisms of lateral root spacingOral presentation
- The 2nd International Symposium on Plant Environmental Sensing, Mar. 2015, English, AIST, Odaiba, International conferenceEvolutionary analysis of phosphate transport mechanisms in plant cellsPoster presentation
- The 2nd International Symposium on Plant Environmental Sensing, Mar. 2015, English, AIST, Odaiba, International conferenceCell-specific localization of terpenoid indole alkaloids revealed by new metabolome analysesPoster presentation
- Marchantia Workshop 2014, Dec. 2014, English, Centennial Hall, Kobe University, The liverwort Marchantia polymorpha forms cupule-like structures, gemma cups, on the dorsal side of thallus, where dozens of clonal progenies, gemmae, are generated. We isolated a mutant of M. polymorpha defective in gemma cup development from T-DNA-tagged lines. The T-DNA was inserted into a 5’UTR of a gene encoding an R2R3-MYB transcription factor. Analysis of the promoter ac, International conferenceThe role of the R2R3-MYB transcription factor, GCAM2, in the development of gemma cup in Marchantia polymorpha.Poster presentation
- SPIRITS Kyoto-Zurich Plant Workshop, Dec. 2014, English, Kyoto University, International conferencePhosphate status in plant life[Invited]Invited oral presentation
- Marchantia Workshop 2014, Dec. 2014, English, Centennial Hall, Kobe University, Gemma is a clonal progeny developed from the base of gemma-cup in Marchantia polymorpha. To investigate the regulatory mechanism for gemma development, we focused on a mutant, karappo2 (kar2), which was originally isolated from transgenics obtained by particle bombardment protocol. There is no gemma initial observed at the base of gemma-cup in kar2, while gemma-cups are regular, International conferenceMolecular characterization of karappo2, a gemma-less mutant, in Marchantia polymorpha.Poster presentation
- Marchantia Workshop 2014, Dec. 2014, English, Centennial Hall, Kobe University, Marchantia polymorpha has an ability to propagate asexually via gemmae generated in gemma-cup formed on the dorsal side of thallus. To investigate genes involved in the process of gemma and gemma-cup development, we performed RNA-seq analysis comparing gemma-cups contaning gemmae and thallus without any gemma-cup. Through the comprehensive transcriptome analysis, we identified, International conferenceGEMMA CUP-ASSOCIATED MYB1 is essential for the development of gemma-cup in the liverwort Marchantia polymorpha L.Poster presentation
- Marchantia Workshop 2014, Dec. 2014, English, Kobe University, International conferenceEvolutional analysis of phosphate trasnport mechanism in plant cellsPoster presentation
- 日本植物学会第78回大会, Sep. 2014, Japanese, 明治大学 生田キャンパス, Domestic conference落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析Oral presentation
- 日本植物学会第78回大会, Sep. 2014, Japanese, 明治大学 生田キャンパス, Domestic conference木本植物におけるイオン輸送機構の解析Poster presentation
- 日本植物学会第78回大会, Sep. 2014, Japanese, 明治大学 生田キャンパス, Domestic conference転写因子PUCHIを介したペプチドによる側根制御Oral presentation
- 日本植物学会第78回大会, Sep. 2014, Japanese, 明治大学 生田キャンパス, Domestic conference植物細胞リン酸輸送機構とその進化についてOral presentation
- 日本植物学会第78回大会, Sep. 2014, Japanese, 明治大学 生田キャンパス, Domestic conference急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムPoster presentation
- 日本植物学会第78回大会, Sep. 2014, Japanese, 明治大学 生田キャンパス, Domestic conferenceゼニゴケの栄養繁殖器官で発現するR2R3型MYB遺伝子の単離と機能解析Oral presentation
- 日本植物学会第78回大会, Sep. 2014, Japanese, 明治大学 生田キャンパス, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成におけるLBDの下流遺伝子TOLS2の解析Oral presentation
- 日本植物学会第78回大会, Sep. 2014, English, 明治大学 生田キャンパス, Domestic conferenceシロイヌナズナにおける葉の維管束鞘細胞の形成・分化機構の解析Poster presentation
- 第55回日本植物生理学会年会, Mar. 2014, Japanese, 富山, Domestic conference落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析Oral presentation
- 第55回日本植物生理学会年会, Mar. 2014, Japanese, 富山大学五福キャンパス, Domestic conference植物細胞リン酸輸送機構とその進化についてOral presentation
- 第55回日本植物生理学会年会, Mar. 2014, Japanese, 富山, Domestic conference植物におけるリン環境認識とリン利用の新しい視点Public discourse
- 第55回日本植物生理学会年会, Mar. 2014, Japanese, 富山, Domestic conference質量分析装置を用いたシロイヌナズナ植物体のオーキシン添加に応答する代謝変動解析Poster presentation
- 第55回日本植物生理学会年会, Mar. 2014, Japanese, 富山, Domestic conference急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムPoster presentation
- 第55回日本植物生理学会年会, Mar. 2014, Japanese, 富山大学五福キャンパス, Domestic conferenceフィトクロムによるトマト芽生えのフック巻込みに関わる植物ホルモンOral presentation
- 第55回日本植物生理学会年会, Mar. 2014, Japanese, 富山大学・五福キャンパス, Domestic conferenceニチニチソウ組織におけるTerpenoid indole alkaloid合成機構の解明Poster presentation
- 第55回日本植物生理学会年会, Mar. 2014, Japanese, 富山, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根原基形成のイメージング解析Oral presentation
- 日本植物学会第77回大会, Sep. 2013, Japanese, 札幌, Domestic conference急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の傷害誘導メカニズムPoster presentation
- 日本植物学会第77回大会, Sep. 2013, Japanese, 札幌, Domestic conferenceリグニンによる側根形成制御Oral presentation
- 日本植物学会第77回大会, Sep. 2013, Japanese, 札幌, Domestic conferenceバラの花色決定における液胞機能の解析Poster presentation
- 日本植物学会第77回大会, Sep. 2013, Japanese, 札幌, Domestic conferenceニチニチソウ葉組織の単一細胞種を用いた二次代謝機構の解析Oral presentation
- 日本植物学会第77回大会, Sep. 2013, Japanese, 札幌, Domestic conferenceシロイヌナズナ植物体のオーキシン添加に応答する 代謝変動解析Poster presentation
- formation 21st International Conference on Plant Growth Substances, Jun. 2013, English, 上海(中国), International conferenceAuxin-induced LBD16/ASL18 and related LBD/ASL proteins regulate lateral root[Invited]Invited oral presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conference落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析Oral presentation
- 日本植物生理学会第54回年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conference側根形成能が顕著に低下するシロイヌナズナ fewer roots 変異体のサプレッサー変異体の単離と解析Poster presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conference側根形成能が顕著に低下するシロイヌナズナfewer roots変異体のサプレッサー変異体の単離と解析Poster presentation
- 日本植物生理学会第54回年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conference食虫植物タヌキモ(Utricularia vulgaris)の捕虫機構と栄養塩吸収過程についてOral presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conference食中植物タヌキモ(Utricularia vulgaris)の捕虫機構と栄養塩吸収過程についてOral presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conferenceリン酸増加に対するシロイヌナズナの根の応答機構Oral presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conferenceリン酸増加に対するシロイヌナズナの根における応答機構Oral presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conferenceニチニチソウ細胞における二次代謝機能の解析Oral presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conferenceニチニチソウ細胞における二次代謝機構の解析Oral presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成におけるオーキシン依存的な転写制御機構の解析Oral presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conferenceシロイヌナズナ植物体のオーキシン点に応答する代謝変動解析Poster presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conferenceシロイヌナズナ植物体のオーキシン添加に応答する代謝変動解析Poster presentation
- 日本植物生理学会第54回年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conferenceシロイヌナズナ根の放射パターン形成に関与するRLF遺伝子の解析Poster presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conferenceサイトカイニンはフィトクロムと恊働して光によるトマト芽生えのフック巻込みを引き起こすOral presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, Japanese, 岡山, Domestic conferenceサイトカイニンはフィトクロムと協働して光によるトマト芽生えのフック巻込みを引き起こすOral presentation
- 第54回日本植物生理学会年会, Mar. 2013, English, 岡山, Domestic conferenceVariation of cortex layer numbers in BarssicaceaeOral presentation
- International Workshop on Plant Membrane Biology 2013, Mar. 2013, English, Kurashiki, Japan, International conferenceMembrane microdomains in the plant vacuole.Poster presentation
- International Workshop on Plant Membrane Biology 2013, Mar. 2013, English, Kurashiki, Japan, International conferenceAnalysis of re-translocation of phosphate in deciduous woody plants; Populus alba.Poster presentation
- 日本植物学会第77回大会, 2013, Japanese, 札幌, Domestic conference落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析Oral presentation
- 日本植物学会第77回大会, 2013, Japanese, 札幌, Domestic conference側根形成能が顕著に低下するシロイヌナズナ fewer roots 変異体のサプレッサー変異体 fsp1 と fsp2 の解析Oral presentation
- 第55回日本植物生理学会年会, 2013, Japanese, 富山, Domestic conference質量顕微鏡による植物代謝産物の分布解析Public discourse
- 第55回日本植物生理学会年会, 2013, Japanese, 富山, Domestic conference根の成長・発生ロジックの解明に向けて:オーキシンを介した側根形成機構Oral presentation
- 第55回日本植物生理学会年会, 2013, Japanese, 富山, Domestic conferenceミチタネツケバナとシロイヌナズナをもちいた根の皮層層数制御の分子遺伝学的解析Oral presentation
- 日本植物学会第77回大会, 2013, Japanese, 北海道大学札幌キャンパス, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成におけるLBD16の下流遺伝子TOLS2の解析Oral presentation
- 第55回日本植物生理学会年会, 2013, Japanese, 富山, Domestic conferenceシロイヌナズナ根端における33P 局在とリン酸応答性遺伝子の発現誘導Poster presentation
- 第25回植物脂質シンポジ ウム, Nov. 2012, Japanese, 神戸, Domestic conferenceイワタバコ科植物の葉で生じる温度傷害の発生メカニズムPoster presentation
- 日本植物学会第76回大会, Sep. 2012, Japanese, 姫路, Domestic conference落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析Oral presentation
- 日本植物学会第76回大会, Sep. 2012, Japanese, 姫路, Domestic conference植物液胞のポストゲノム解析Poster presentation
- 日本植物学会第76回大会, Sep. 2012, Japanese, 姫路, Domestic conference根端メリステムの維持に異常を示すシロイヌナズナfba1変異体の解析Oral presentation
- 日本植物学会第76回大会, Sep. 2012, Japanese, 姫路, Domestic conference根の皮層の多様な分化Oral presentation
- 日本植物学会第76回大会, Sep. 2012, Japanese, 姫路, Domestic conferenceリン酸増加に対するシロイヌナズナの根における応答機構Oral presentation
- 日本植物学会第76回大会, Sep. 2012, Japanese, 姫路, Domestic conferenceニチニチソウ細胞における二次代謝産物合成機構の解析(口頭)Oral presentation
- 日本植物学会第76回大会, Sep. 2012, Japanese, 姫路, Domestic conferenceニチニチソウ細胞における二次代謝産物合成機構の解析Poster presentation
- 日本植物学会第76回大会, Sep. 2012, Japanese, 姫路, Domestic conferenceシロイヌナズナ植物体のオーキシン添加に応答する代謝変動解析Poster presentation
- New Frontiers of Metabolism Research in Biomedical Sciences, Sep. 2012, English, Tokyo, Japan, International conferenceTerpenoid indole alkaloids synthesis in Catharanthus roseus.Oral presentation
- New Frontiers of Metabolism Research in Biomedical Sciences, Sep. 2012, English, Tokyo, Japan, International conferencePost-genome analyses of plant intact vacuoles.Oral presentation
- 第53回日本植物生理学会年会, Mar. 2012, Japanese, 日本植物生理学会, 京都, Domestic conference陸上植物におけるフィチン酸(イノシトール-6-リン酸)の生合成・蓄積動態の解析Poster presentation
- 第53回日本植物生理学会年会, Mar. 2012, Japanese, 日本植物生理学会, 京都, Domestic conference落葉性木本植物のリン酸分配・転流機構の解析Oral presentation
- 第53回日本植物生理学会年会, Mar. 2012, Japanese, 日本植物生理学会, 京都, Domestic conference側根形成能が顕著に低下するシロイヌナズナfewerroots変異体のサプレッサー変異体の単離と解析Oral presentation
- 第53回日本植物生理学会年会, Mar. 2012, Japanese, 日本植物生理学会, 京都, Domestic conference植物液胞のポストゲノム解析Poster presentation
- 第53回日本植物生理学会年会, Mar. 2012, Japanese, 日本植物生理学会, 京都, Domestic conference根端メリステムの維持に異常を示すシロイヌナズナfba1変異体の解析Oral presentation
- 第53回日本植物生理学会年会, Mar. 2012, Japanese, 日本植物生理学会, 京都, Domestic conference液胞膜エンジニアリングによる液胞代謝動態の解析Poster presentation
- 第53回日本植物生理学会年会, Mar. 2012, Japanese, 日本植物生理学会, 京都, Domestic conferenceフィトクロムによるトマト芽生えのフック巻込みには胚乳因子が必要であるOral presentation
- 第53回日本植物生理学会年会, Mar. 2012, Japanese, 日本植物生理学会, 京都, Domestic conferenceニチニチソウ細胞における二次代謝産物の合成と液胞機能の解析Oral presentation
- 第53回日本植物生理学会年会, Mar. 2012, Japanese, 日本植物生理学会, 京都, Domestic conferenceシロイヌナズナ根の放射パターン形成に関与するRLF遺伝子の解析Oral presentation
- 第53回日本植物生理学会年会, Mar. 2012, Japanese, 日本植物生理学会, 京都, Domestic conferenceシロイヌナズナの根がリン酸増加に応答する機構Oral presentation
- 第53回日本植物生理学会年会, Mar. 2012, Japanese, 日本植物生理学会, 京都, Domestic conferenceThe role of SHY2/IAA3-mediated auxin signaling in Arabidopsis lateral root formationOral presentation
- 日本植物学会第75回大会, Sep. 2011, Japanese, 日本植物学会, 東京, Domestic conference側根形成開始における細胞分裂の非対称性の制御.Invited oral presentation
- 日本植物学会第75回大会, Sep. 2011, Japanese, (社)日本植物学会, 東京, Domestic conference食虫植物タヌキモ(UtriculariaVulgaris)の捕虫機構における外部栄養塩の影響Oral presentation
- 日本植物学会第75回大会, Sep. 2011, Japanese, (社)日本植物学会, 東京, Domestic conference根端メリステムの維持に異常を示すシロイヌナズナfba1変異体の解析Oral presentation
- 日本植物学会第76回大会, Sep. 2011, Japanese, 姫路, Domestic conference根系の成長システム解明に向けて-遺伝子制御ネットワーク研究から見えること[Invited]Nominated symposium
- 日本植物学会第75回大会, Sep. 2011, Japanese, (社)日本植物学会, 東京, Domestic conference根の放射パターン形成に異常を示すシロイヌナズナrlf変異体の解析Oral presentation
- 日本植物学会第75回大会, Sep. 2011, Japanese, (社)日本植物学会, 東京, Domestic conference高等植物のリン酸分配・転流機構の解析:草本・木本植物の比較Oral presentation
- 日本植物学会第75回大会, Sep. 2011, Japanese, (社)日本植物学会, 東京, Domestic conference急激な温度降下で生じるセントポーリア葉の細胞死メカニズムOral presentation
- 日本植物学会第75回大会, Sep. 2011, Japanese, 日本植物学会, 東京, Domestic conferenceシロイヌナズナ根端メリステムの形成・維持の制御機構Invited oral presentation
- The 3rd Korea-Japan Young Plant Scientist Symposium, Sep. 2011, English, POSTECH, Korea, POSTECH, Korea, International conferenceThe establishment of asymmetry in Arabidopsis lateral root founder cells is regulated by auxin-inducible LBD/ASL proteinsInvited oral presentation
- 第52回日本植物生理学会年会, Mar. 2011, Japanese, 日本植物生理学会, 仙台, Domestic conference植物液胞のポストゲノム解析Oral presentation
- 第52回日本植物生理学会年会, Mar. 2011, Japanese, 日本植物生理学会, 仙台, Domestic conference根端メリステムの維持に異常を示すシロイヌナズナfba1変異体の解析Oral presentation
- 第52回日本植物生理学会年会, Mar. 2011, Japanese, 日本植物生理学会, 仙台, Domestic conference光によるトマト芽生えのフック巻込み反応に関わる胚乳因子Poster presentation
- 第52回日本植物生理学会年会, Mar. 2011, Japanese, 日本植物生理学会, 仙台, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根欠失変異体slrのサプレッサー変異体ssl1/hastyの解析Oral presentation
- 第52回日本植物生理学会年会, Mar. 2011, Japanese, 日本植物生理学会, 仙台, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成における時空間特異的なオーキシン応答の制御Oral presentation
- 第52回日本植物生理学会年会, Mar. 2011, Japanese, 日本植物生理学会, 仙台, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成におけるLBD16/ASL18の下流遺伝子LLPL2の解析Oral presentation
- 第52回日本植物生理学会年会, Mar. 2011, Japanese, 日本植物生理学会, 仙台, Domestic conferenceキャピラリー電気泳動/四重極–飛行時間型質量分析装置(CE-ESI-QTOF)を用いたオーキシン添加に応答する代謝産物の同時定量解析Oral presentation
- 第52回日本植物生理学会年会, Mar. 2011, Japanese, 日本植物生理学会, 仙台, Domestic conferenceオーキシン誘導性LBD/ASLメンバーによる側根の形成開始の制御機構Oral presentation
- 第52回日本植物生理学会年会, Mar. 2011, Japanese, 日本植物生理学会, 仙台, Domestic conferenceイワタバコ科植物の葉で生じる温度傷害の発生メカニズムOral presentation
- 第33回日本分子生物学会年会、第83回日本生化学会大会合同大会 BMB2010, Dec. 2010, Japanese, 日本分子生物学会, 神戸, Domestic conferenceAuxin-inducible LBD/ASL proteins regulate Arabidopsis lateral root initiation through activating the first asymmetric cell divisions of protoxylem pericycleOral presentation
- Korean Society of Molecular and Cell Biology, Symposium, Oct. 2010, English, Korean Society of Molecular and Cell Biology, Seoul, KOREA, International conferenceAuxin and Lateral Root Development: Transcriptional Cascades Regulating Lateral Root Initiation in Arabidopsis thaliana[Invited]Invited oral presentation
- 日本植物学会第74回大会, Sep. 2010, Japanese, (社)日本植物学会, 春日井, Domestic conference種子形成・発芽におけるフィチン酸(イノシトール6リン酸)の動態Oral presentation
- 日本植物学会第74回大会, Sep. 2010, Japanese, 日本植物学会, 春日井, Domestic conferenceセントポーリア葉の温度傷害に伴う液胞の動態Oral presentation
- 日本植物学会第74回大会, Sep. 2010, Japanese, (社)日本植物学会, 春日井, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根欠失変異体slrのサプレッサー変異体ssl1/hastyの解析Oral presentation
- 日本植物学会第74回大会, Sep. 2010, Japanese, (社)日本植物学会, 春日井, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成における時期特異的・空間特異的なオーキシン応答の制御Oral presentation
- 日本植物学会第74回大会, Sep. 2010, Japanese, (社)日本植物学会, 春日井, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成におけるLBD16/ASL18の下流遺伝子LLPL2の解析Oral presentation
- 日本植物学会第74回大会, Sep. 2010, Japanese, (社)日本植物学会, 春日井, Domestic conferenceキャピラリー電気泳動/四重極- 飛行時間型質量分析装置(CE-ESI-QTOF)を用いたオーキシン添加に応答するメタボローム解析Oral presentation
- 日本植物学会第74回大会, Sep. 2010, Japanese, 日本植物学会, 春日井, Domestic conferenceオーキシン応答性を示すシロイヌナズナASL23/LBD19遺伝子の機能解析Poster presentation
- 21st International Conference on Arabidopsis Research, Jun. 2010, English, International Conference on Arabidopsis Research, Yokohama, Japan, International conferenceAuxin-inducible LBD/ASL members regulate lateral root formation.Poster presentation
- 第51回日本植物生理学会年会, Mar. 2010, Japanese, 日本植物生理学会, 熊本, Domestic conference葉緑体におけるグルタチオン結合性アルドラーゼFBA1の機能Oral presentation
- 第51回日本植物生理学会年会, Mar. 2010, Japanese, 日本植物生理学会, 熊本, Domestic conference根端メリステムの維持に異常を示すシロイヌナズナLR11-4変異体の解析Oral presentation
- 第51回日本植物生理学会年会, Mar. 2010, Japanese, 日本植物生理学会, 熊本, Domestic conference液胞膜エンジニアリングによる液胞代謝動態の解析Oral presentation
- 第51回日本植物生理学会年会, Mar. 2010, Japanese, 日本植物生理学会, 熊本, Domestic conferenceフィトクロムによるトマト芽生えのフック巻込み−その意義と種皮の役割.Oral presentation
- 第51回日本植物生理学会年会, Mar. 2010, Japanese, 日本植物生理学会, 熊本, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成変異体fewer roots(fwr)の解析Oral presentation
- 第51回日本植物生理学会年会, Mar. 2010, Japanese, 日本植物生理学会, 熊本, Domestic conferenceシロイヌナズナの根系構築・栄養塩吸収におけるリン酸と鉄の相互作用Poster presentation
- 第51回日本植物生理学会年会, Mar. 2010, Japanese, 日本植物生理学会, 熊本, Domestic conferenceシロイヌナズナの高塩環境下における液胞動態と塩蓄積機構の解析Oral presentation
- 第51回日本植物生理学会年会, Mar. 2010, Japanese, 日本植物生理学会, 熊本, Domestic conferenceオーキシン誘導性LBD/ASLメンバーは側根の形成開始に関与するOral presentation
- 第51回日本植物生理学会年会, Mar. 2010, Japanese, 日本植物生理学会, 熊本, Domestic conferenceGARP型転写因子Golden2-like(GLK)の発現制御によるシロイヌナズナの根での可塑的な葉緑体分化Oral presentation
- 日本植物学会第73回大会, Sep. 2009, Japanese, (社)日本植物学会, 山形, Domestic conference根端メリステム維持に異常を示すシロイヌナズナ新奇変異体LR11-4の解析Oral presentation
- 日本植物学会第73回大会, Sep. 2009, Japanese, (社)日本植物学会, 山形, Domestic conference液胞膜エンジニアリングによる液胞代謝動態の解析Oral presentation
- 日本植物学会第73回大会, Sep. 2009, Japanese, (社)日本植物学会, 山形, Domestic conferenceシロイヌナズナ新奇側根形成変異体fewer roots(fwr)の解析Oral presentation
- 日本植物学会第73回大会, Sep. 2009, Japanese, (社)日本植物学会, 山形, Domestic conferenceシロイヌナズナ根系のリン酸吸収機構:リンと鉄の相互作用Poster presentation
- 日本植物学会第73回大会, Sep. 2009, Japanese, 日本植物学会, 山形, Domestic conferenceシロイヌナズナの根におけるクロロフィル合成制御機構Oral presentation
- 日本植物学会第73回大会, Sep. 2009, Japanese, (社)日本植物学会, 山形, Domestic conferenceキャピラリー電気泳動-質量分析装置(CE-ESI-QTOF)を用いた植物生理活性物質の分析Oral presentation
- 第50回日本植物生理学会年会, Mar. 2009, Japanese, 日本植物生理学会, 名古屋, Domestic conference側根形成過程におけるオーキシン誘導性LBD/ASLファミリーの機能解析Oral presentation
- 第50回日本植物生理学会年会, Mar. 2009, Japanese, 日本植物生理学会, 名古屋, Domestic conference側根形成を制御するオーキシンシグナリング.Invited oral presentation
- 第50回日本植物生理学会年会, Mar. 2009, Japanese, 日本植物生理学会, 名古屋, Domestic conference植物インタクト液胞のポストゲノム解析Oral presentation
- 第50回日本植物生理学会年会, Mar. 2009, Japanese, 日本植物生理学会, 名古屋, Domestic conferenceムジナモ捕虫葉の閉合運動におけるCa2+の役割Oral presentation
- 第50回日本植物生理学会年会, Mar. 2009, Japanese, 日本植物生理学会, 名古屋, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成におけるLBD16/ASL18下流遺伝子の解析Oral presentation
- 第50回日本植物生理学会年会, Mar. 2009, Japanese, 日本植物生理学会, 名古屋, Domestic conferenceシロイヌナズナの光形態形成時における子葉でのクロロフィル合成に対する植物ホルモンの役割.Poster presentation
- 第50回日本植物生理学会年会, Mar. 2009, Japanese, 日本植物生理学会, 名古屋, Domestic conferenceシロイヌナズナにおける液胞膜マイクロドメインの解析Oral presentation
- 第50回日本植物生理学会年会, Mar. 2009, Japanese, 日本植物生理学会, 名古屋, Domestic conferenceキャピラリー電気泳動-四重極-飛行時間型質量分析装置(CE-ESI-QTOF)を用いたシロイヌナズナ葉中メタボローム解析Oral presentation
- 第31回日本分子生物学会年会・第81回日本生化学会大会 合同大会, Dec. 2008, Japanese, 日本分子生物学会, 神戸, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成で機能するLBD16/ASL18の下流遺伝子の解析Oral presentation
- 第31回日本分子生物学会年会, Dec. 2008, Japanese, 日本分子生物学会, 神戸, Domestic conferenceオーキシンを介した側根発生の分子機構Invited oral presentation
- 日本植物学会第72回大会, Sep. 2008, Japanese, (社)日本植物学会, 高知, Domestic conference植物インタクト液胞のポストゲノム解析Oral presentation
- 日本植物学会第72回大会, Sep. 2008, Japanese, (社)日本植物学会, 高知, Domestic conferenceムジナモ捕虫葉における膨圧運動機構の解析Oral presentation
- 日本植物学会第72回大会, Sep. 2008, Japanese, (社)日本植物学会, 高知, Domestic conferenceシロイヌナズナ根系の栄養塩応答-リン酸と鉄の相互作用Oral presentation
- 19th International Conference on Arabidopsis Research, Jul. 2008, English, 19th International Conference on Arabidopsis Research, Montreal, Canada, International conferenceAnalysis of the rlr50 mutant that shows reduced lateral root formation in Arabidopsis thaliana.Oral presentation
- 日本植物生理学会第49回年会, Mar. 2008, Japanese, 日本植物生理学会, 札幌, Domestic conference植物細胞インタクト液胞を用いたメタボローム解析Oral presentation
- 第49回日本植物生理学会年会, Mar. 2008, Japanese, 日本植物生理学会, 札幌, Domestic conference植物インタクト液胞を用いたメタボローム解析Oral presentation
- 第49回日本植物生理学会, Mar. 2008, Japanese, 日本植物生理学会, 札幌, Domestic conference高等植物における根の発生機構に関する分子遺伝学的研究[Invited]Invited oral presentation
- 日本植物生理学会第49回年会, Mar. 2008, Japanese, 日本植物生理学会, 札幌, Domestic conference塩ストレス下における植物細胞液胞への塩蓄積機構の解析Oral presentation
- 第49回日本植物生理学会, Mar. 2008, Japanese, 日本植物生理学会, 札幌, Domestic conferenceリン酸欠乏時のガラクト脂質合成とスルホ脂質合成はSLR/IAA14とARF7/19により異なる制御を受けるOral presentation
- 日本植物生理学会第49回年会, Mar. 2008, Japanese, 日本植物生理学会, 札幌, Domestic conferenceムジナモ捕虫葉における膨圧運動機構の解析Oral presentation
- 日本植物生理学会第49回年会, Mar. 2008, Japanese, 日本植物生理学会, 札幌, Domestic conferenceシロイヌナズナ葉内におけるイオン輸送及び分配様式の解析Oral presentation
- 日本植物生理学会第49回年会, Mar. 2008, Japanese, 日本植物生理学会, 札幌, Domestic conferenceシロイヌナズナ培養細胞におけるフィチン酸生合成機構の解析Oral presentation
- 日本植物生理学会第49回年会, Mar. 2008, Japanese, 日本植物生理学会, 札幌, Domestic conferenceシロイヌナズナ側根形成で機能するLBD16 の下流遺伝子の探索Oral presentation
- 日本植物生理学会第49回年会, Mar. 2008, Japanese, 日本植物生理学会, 札幌, Domestic conferenceシロイヌナズナ液胞におけるイオン輸送体の局在解析Oral presentation
- ERATO公開セミナー, Dec. 2007, Japanese, 基礎生物学研究所ERATO長谷部プロジェクト, 基礎生物学研究所, Domestic conference高等植物におけるオーキシンを介した側根形成の制御機構Invited oral presentation
- 第53回岩手大学フォーラム, Sep. 2007, Japanese, 岩手大学フォーラム, 岩手, Domestic conference高等植物におけるオーキシンを介した根の発生機構Invited oral presentation
- 日本植物学会第71回大会, Sep. 2007, Japanese, 日本植物学会, 野田, Domestic conferenceムジナモ捕虫葉における膨圧運動機構の解析Oral presentation
- 日本植物学会第71回大会, Sep. 2007, Japanese, 日本植物学会, 野田, Domestic conferenceシロイヌナズナ葉内におけるイオン輸送における物質輸送及び分配様式の解析Oral presentation
- 日本植物学会第71回大会, Sep. 2007, Japanese, (社)日本植物学会, 野田, Domestic conferenceシロイヌナズナ培養細胞におけるイノシトールリン酸生合成機構の解析Oral presentation
- 東京大学理学部生物学科植物学コース、生物科学セミナー, Jun. 2007, Japanese, 東京大学, 東京, Domestic conference「植物におけるオーキシンを介した根の発生機構」Invited oral presentation
- Utrecht University, May 2007, English, Utrecht University,, Netherland, International conferenceRegulation of lateral root formation by Aux/IAA-ARF signaling in ArabidopsisInvited oral presentation
- Department of Plant Systems Biology, May 2007, English, Department of Plant Systems Biology, Ghent University, Belgium, International conferenceRegulation of lateral root formation by Aux/IAA-ARF signaling in ArabidopsisInvited oral presentation
- 一般社団法人 日本植物バイオテクノロジー学会
- American Society of Plant Biologist
- 一般社団法人 植物化学調節学会
- 公益社団法人 日本植物学会
- 一般社団法人 日本植物生理学会
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research (B), Kobe University, Apr. 2025 - Mar. 2028, Principal investigatorNovel mechanisms of root and shoot meristem fate determination and maintenance
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 基盤研究(B), 国立研究開発法人国際農林水産業研究センター, Apr. 2021 - Mar. 2024根の成長制御におけるアブシジン酸の新しい役割
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research on Innovative Areas (Research in a proposed research area), Nara Institute of Science and Technology, Jun. 2019 - Mar. 2024Intrinsic periodicity of cellular systems and its modulation as the driving force be本年度は、年度開始当初から新型コロナウィルス感染症により対面でのディスカッションや海外渡航が禁止され、総括班活動を様々な制限下で行う必要が生じたが、総括班員の情報学者の主導により、オンラインコミュニケーションツールを積極的に導入することで、円滑かつ活発な総括班活動を展開した。まず本年度から参画した25の公募研究班について、共同研究の可能性を基に6つのグループに分けてオンラインミーティングを開催した。これにより初対面の研究者間においても多くの学際融合研究が開始された。年度開始当初にはまだ普及していなかったZoomやSpatial chatといったツールを積極的に用いて領域会議や総括班会議、若手ワークショップを開催した。オンライン会議開催のノウハウをレポートにまとめて領域HPで公開することで、研究者コミュニティに貢献した。 国際活動支援のうち若手研究者の海外派遣支援は中止を余儀なくされた。また神戸大学で行う予定で準備していた国際シンポジウム"From Cellular Dynamics to Morphology"については、招聘を予定していたスピーカーの同意を得てウェビナーシリーズとして開催した。これには世界30か国から600名を超える参加者があり、非常に好評であった。 若手ワークショップもオンライン形式で開催し、大学院生や研究員による発表に加え、領域外の研究者による融合研究セミナーや、キャリア支援セミナーを開催した。また若手6チームにより融合研究コンペを開催した。数理解析道場と画像解析道場もオンラインで並行して開催した。
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 新学術領域研究(研究領域提案型), 神戸大学, Jun. 2019 - Mar. 2024, Principal investigator側根新生の時空間的周期性と可塑性を実現する仕組みの解明維管束植物の根は,内生・外生の要因に応じた側根形成を通じて根系構造を可塑的に構築する。側根は一次根に沿って一定の間隔で作られるが,その周期性は根端付近における数千遺伝子の発現振動の総体として観測されるRoot clockに相関している。この時間周期が一次根軸に沿って一定の間隔でオーキシン応答極大を形成し,これが予定分岐部位(プレブランチサイト:PBS)へと運命づけられる。根系構造の可塑性は,Root clock の時間振動が根に沿ったPBS の空間周期に変換され,さらにPBS から側根原基が形成される過程に何らかの変調作用が入力されることで生み出される。本研究では,側根新生の長時間広域発光・蛍光イメージング系や変異体・マーカー系統を画像解析,数理モデル解析,人間拡張工学と融合させ,Root clock に依存した側根形成の空間的周期性の制御とその変調機構を明らかにする。2020年度の主な成果を以下に示す。 1)根端で周期的に発現変動する発光・蛍光レポーター系統(DR5:LUC/VENUS)を用いた高精度長時間広域イメージングによる観察測定系を確立するため,根の成長を維持しながら観察できる横倒し発光・蛍光顕微鏡を構築した。 2)DR5:LUCを用いて可視化された根端オシレーションゾーンのオーキシン応答の振動について半自動化して測定する方法を構築した。 3)PBS新生の時空間的周期性や根端のDR5:LUC活性が異常な変異体等を複数系統単離し,PBS密度の高い変異体2系統,およびPBS密度が低下し,側根新生数も低下する変異体1系統の原因遺伝子候補を絞り込んだ。
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research (B), Yamaguchi University, Apr. 2020 - Mar. 2023Biochemical mechanism of reactive carbonyl signaling in plants1) 青色光による気孔開口をRCSが阻害する現象を発見し,青色光シグナル伝達経路におけるRCSの作用点はH+ATPaseの活性化メカニズムの近傍であることを明らかにした。(論文投稿中) 2) ホウレンソウ葉緑体チラコイド膜,包膜に存在するカルボニル種を解析し,包膜には主としてリポキシゲナーゼ反応に由来するC6アルデヒドが存在するのに対し,チラコイド膜にはC3-C11の多様なカルボニル種が含まれており,それらのチラコイド膜内の濃度はmMレベルであることを明らかにした。一方,ストロマに存在するカルボニル種の濃度は極めて低く,ストロマでは可溶性のカルボニル消去物質及び消去酵素によってRCSレベルが極めて低く抑えられていることを明らかにした。(論文投稿中) 3) 植物がもつRCS消去物質として,新たにニンニクからアリインを同定した。アリインはアミノ基にRCSを2分子付加させて消去すること,またそのRCS消去能は,動物由来のRCS消去ペプチドであるカルノシンより高いことを明らかにした。(論文執筆中) 4) RCS消去酵素2-アルケナールレダクターゼ(AER)を葉緑体に局在させる組換えシロイヌナズナを作成した。また,アクロレインを特異的に消去するグルタチオントランスフェラーゼ(GST)アイソザイムTau19(GSTU19)を葉緑体及び細胞質に局在させる組換えシロイヌナズナを作成した。さらにアクロレインと4-ヒドロキシノネナール(HNE)に特異的なGSTU17を葉緑体,細胞質,アポプラストに局在させる組換えシロイヌナズナを作成した。 5) 高塩分が引き起こす酸化ストレスにおいて,アクロレイン,HNE, (E)-2-ペンテナール植物体内で増大し発芽や生長を抑制することを明らかにした。(論文投稿中) 6) 植物の小胞体ストレスに伴いRCSが増大することを明らかにした。(論文投稿中)
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research (B), Kobe University, Apr. 2018 - Mar. 2021, Principal investigatorEstablishment mechanism of local auxin accumulation to determine the initiation position of plant organogenesisTo elucidate the establishment mechanism of local auxin accumulation that determines the initiation of plant organogenesis, this research focused on GNOM, which encodes an ADP-ribosylation factor guanine nucleotide-exchange factor (Arf GEF) for the Arf GTPase, and conducted physiological and developmental analyses using the fwr mutant and fsp suppressor mutants that restore lateral root formation in fwr. As a result, we clarified part of the establishment mechanism of local auxin accumulation via GNOM in the initiation of lateral root formation.
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research (B), Kobe University, Apr. 2015 - Mar. 2019Molecular mechanisms of organ initiation for vegetative reproduction in plantsA variety of plants in diverse taxa can reproduce asexually via vegetative propagation, in which clonal propagules with new meristem(s) are generated directly from vegetative organs. A basal land plant Marchantia polymorpha develops the clonal propagules, gemmae, in the specialized receptacle, gemma cup. In this study, we have identified an R2R3-MYB transcription factor, designated as GEMMA CUP-ASSOCIATED MYB 1 (GCAM1), as an essential regulator for the gemma cup development in Marchantia. Interestingly, phylogenetic and interspecies complementation analyses supported the orthologous relationship of GCAM1 to regulatory factors for axillary meristem formation, e.g. Arabidopsis RAXs and tomato Blind, in angiosperm sporophyte. Furthermore we have also identified the KARAPPO gene, which endoces a Rop guanine nucleotide exchange factor (RopGEF) carrying a PRONE catalytic domain, is essentia for initiation of gemma development.
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research on Innovative Areas (Research in a proposed research area), The University of Tokyo, Jun. 2013 - Mar. 2018Multidimensional Exploration of Logics of Plant DevelopmentWe tried to reveal 'logics of plant development' in this project. As a result of exploration of new research fields with young talented scientists, we could many key genes involved in the mechanisms for establishment of stem cell natures in plants, for cell differentiation, for control of proliferation and arrangement of cells, and for phase transition. We also revealed functions of these key genes. In addition, we could establish a new excellent model system, Marchantia polymorpha, which has very low redundancy in the genome. Moreover, we could propose a new research field, metabolo-developmental biology which searches new signal molecules for regulation of development and growth of plants.
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research on Innovative Areas (Research in a proposed research area), Kobe University, Jun. 2013 - Mar. 2018, Principal investigatorElucidation of logics of root growth and developmentThe roots of vascular plants play important roles in their growth and development, such as absorption of water and nutrients from the soil, and support of above-ground parts. In this study, in order to elucidate “logics of root growth and development”, we studied (1) logics of lateral root development, (2) logics of radial pattern formation, and (3) unknown metabolic systems that control the root growth and development, using the model plants, Arabidopsis thaliana and Cardamine hirsuta. In particular, we found that there is a lateral inhibition mechanism via auxin and peptide hormone signaling when lateral root founder cells are specified/selected from the site with the ability to form lateral roots in the primary root tip.
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Challenging Exploratory Research, Kobe University, Apr. 2015 - Mar. 2017, Principal investigatorDevelopment of research base to elucidate the mechanism of stem endodermis formationOn the cross section of the stem of the plant, tissues such as epidermis, cortex and endodermis are concentrically arranged from the outside. Radial patterns of such tissues are formed from undifferentiated tissues at the tip of the stem (shoot apical meristem), but their formation mechanisms are hardly elucidated. This research aims to understand the mechanism of radial pattern formation of the stem as a major objective, focusing on endodermis layer of the stem. The research infrastructure for the elucidation of the endodermis formation mechanism of stem was improved by trying to identify the endodermis stem cells in the shoot apical meristem and the genes associated with endodermis formation, through devising research materials and using observation techniques developed recently.
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research on Innovative Areas (Research in a proposed research area), Kobe University, Apr. 2010 - Mar. 2016Role of plant vacuoles as environmental perception systems.Changes in organelle situation and cellular components under various environmental conditions (Temperature, Nutritional conditions, Pests and disease resistance etc.) were molecular- and cell-biologically investigated. 1. We found that low temperature damage in Saintpaulia leaf palisade cells is caused by degradation of vacuoles induced by the influx of extracellular Ca2+ through mechano-sensitive ion channels. 2. Gene expression patterns under various phosphate conditions in Arabidopsis plants were analyzed. We also found that poplar trees stored phosphorus as phytic acid in twigs during winter. 3. Transcriptional factor for differentiation into myrosin cells were found and we also found an involvement of actin-myosin system into photo and gravitropisms.
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Challenging Exploratory Research, Kobe University, Apr. 2013 - Mar. 2015Evolutional study on the membrane co-transport system in plant cell.The membrane co-transport systems work on the uptake of nutrition or extrusion of wastes. This is the fundamental mechanism of all living cells. There are two kinds of co-transport systems; H+ coupled or Na+ coupled. The land plants usually have H+ coupled co-transport systems. We have reported that the phosphate (Pi) transport system of characean plant, which is an ancestor of land plants is a Na+ coupled type. In the present study we succeeded in sequencing the full length of a gene of the Pi transporter in Chara cells. From sequence analysis, Chara Pi transporter was the ancestor type of all land plants and formed a single clade together with Spirogyra. In Chara Pi transporter gene, amino acid residue required for H+ coupled transport was not kept, and this strongly suggests that Chara Pi transporter is a Na+ coupled type. In addition, we are analyzing about Pi transport systems of the first land plant; the liverwort.
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Young Scientists (B), Kobe University, Apr. 2012 - Mar. 2015Study on new metabolisms in plant vacuole by integration of the post-genome analysisVacuole is an important organelle in the plant cell. It occupies about 80% of the plant cell volume. It is known that a variety of substances are accumulated in the vacuole. In this study, we focused on the biosynthesis of alkaloids that are accumulated in the vacuole of Catharanthus roseus, this is one of famous medical plants. From previous studies, alkaloids have been shown to be synthesized through various tissues and organelles. We analyzed the localization of alkaloids and their intermediates by using new technology. There are some different results from previous reports. These results suggest the existence of novel metabolic functions in the vacuole of Catharanthus roseus. In the future, we would like to apply the present new knowledge to the development of efficient alkaloid biosynthesis system.
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research on Priority Areas, Nagoya University, Jul. 2007 - Mar. 2014Plant regulatory systems that control developmental interactions between meristems and lateral organs本研究の目的は、平成19年度から24年度まで続いた特定領域研究「植物メリステムと器官の発生を支える情報統御系」の成果を取りまとめることである。具体的には、第一に平成25年度9月に予定されていた事後評価ヒアリングのための準備をすること、冊子体による成果報告書を作成することである。第二の目的は、成果を広く社会に知らせるために、植物の形づくりに関する啓蒙書を出版することである。第三の目的は、新たに発足する新学術領域研究グループと合同シンポジウムを開催し、この分野の専門家に成果を公開することである。このような研究活動の結果、事後評価ヒアリングではA+ (研究領域の設定目的に照らして、期待以上の成果があった)の評価を得た。その後、これらの成果を取りまとめて冊子体成果報告書を作成した。さらに我々は第二の目的のために、平成25年度から新規に採用された高等学校「生物」の教科書の解説書(植物編)を作成し出版した。新生物教科書では、最新の成果が多数盛り込まれており、多くの高校教師が新しい知識を求めるようになった。我々の特定領域研究は、新教科書の植物に関する内容をほとんどカーバーしているので、高校教師の疑問に答えるための解説書を作成することを計画した。これは、本特定領域研究の成果を社会に還元する新しいタイプの活動となると考えた。ほぼ一年間の編集活動の結果、平成26年3月に講談社から「高校生物解説書 授業でそのまま使えるPowerPoint付き」を出版した(監修 : 町田泰則、岡田清孝、山本興太朗、執筆者 : 16名の班員による)。第三の目的であった合同シンポジウムは実現できなかったが、平成26年10月の新学術領域研究「植物発生ロジック」の立ち上げシンポジウムにおいて、本特定研の主な班員が研究発表をした。これにより、事実上植物の分子発生遺伝学分野の研究者に我々の成果を広めることができた。
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research (B), Kobe University, Apr. 2010 - Mar. 2013Regulatory mechanisms of the auxin response mediated by nuclear-cytoplasmic transport systemsAuxin is one of the important hormones for growth and development in plants. In general, auxin-mediated growth and developmental processes are regulated by auxin synthesis, auxin transport and auxin-dependent gene expression. However, the mechanisms of auxin responses still remain unknown. Genetic analyses using Arabidopsis thaliana mutants defective in lateral root formation have shown that HASTY/exportin-5, a component of the nuclear pore complex, is involved in auxin-mediated lateral root formation. In this project, we found that both biosynthesis of microRNAs and nuclear-cytoplasmic transport are necessary for the regulation of SLR/IAA14-ARF7/19 module-dependent auxin response in lateral root formation.
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research on Priority Areas, Kyoto University, Jul. 2007 - Mar. 2013High-sensitivity analysis of expression profile and subcellular dynamics of gene products in shoot apical meristemArabidopsis microarray analysis was performed in Fukuda Lab upon request from project members (total of 143 analyses from 39 laboratories). Based on these support, novel findings were obtained to advance our understanding of plant meristems, such as cross-talk of signaling pathways of peptide and plant hormones. Support for imaging by confocal laser scanning microscope and provision of BiFC vectors (15 request from 15 laboratories) resulted in important demonstration in planta of protein-protein interaction between key regulators of plant meristem function.
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research on Priority Areas, Kobe University, Jul. 2007 - Mar. 2013, Principal investigatorDevelopmental mechanisms of root apical meristems that are essential for construction of root systemBranching root systems enable the plants to absorb water and nutrients from the soil and to sustain the shoot parts. In this project, to understand the developmental mechanisms of root apical meristems that are essential for construction of root system, we performed molecular genetic analyses using a model plant, Arabidopsis thaliana. We found that several auxin-inducible LBD/ASL proteins regulate the establishment of asymmetry in lateral root founder cells. In addition, we found several key genes/proteins that are necessary for the formation and maintenance of lateral root meristems.
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Young Scientists (B), Kobe University, 2009 - 2010Functional analysis of the auxin-inducible LBD/ASL family in the lateral root formationIn Arabidopsis thaliana, lateral root (LR) formation is initiated from asymmetric cell divisions (ACDs) of the xylem pole pericycle cells (XPPs) of the parent roots. We show that auxin-inducible LBD16/ASL18 was specifically expressed in a small number of XPP cells before the first ACD and functions redundantly with the other related LBD/ASL proteins in LR formation. Furthermore, the localized activity of auxin-inducible LBD/ASL proteins links to the establishment of asymmetry in the LR founder cells necessary for LR initiation.
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Young Scientists (B), Kobe University, 2007 - 2008Functional analysis of the LBD/ASL genes that are involved in auxin responses in Arabidopsis thalianaシロイヌナズナのLBD/ASL遺伝子群(転写因子をコード)に属するLBD16,17,29,33は、根の側根形成開始部位で発現し、その発現はオーキシンによって誘導される。多重変異体などを用いた解析から、オーキシンを介した側根形成において3つ以上のLBD遺伝子による重複した機能が重要なことが強く示唆された。また、LBD16によって転写が活性化する下流遺伝子を多数同定し、そのうち側根形成開始部位でオーキシンによって誘導される新規遺伝子を見いだした。
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research on Priority Areas, Kobe University, 2006 - 2008植物細胞の生理機能を支える細胞内低分子環境のうち、無機イオンとしてのH^+、リン酸、Na^+、Ca^<2+>、Znなどに注目し、外部環境の変化に対して、イオン濃度がどのように制御されているかを、特に液胞および液胞小胞系の機能との関連で解析した。その結果、1.高塩環境下における液胞への塩蓄積機構と液胞構造のダイナミックな変化、2.イノシトールリン酸の代謝と液胞への蓄積機構、3.Ca^<2+>ホメオスタシスの分子機構、4.亜鉛集積と液胞ダイナミズム、5.液胞膜H^+輸送ピロホスファターゼの機能の詳細を明らかにすることに成功した。Competitive research funding
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research (B), Kobe University, 2006 - 2006Inorganic phosphate (Pi) is one of essential elements of plant nutrition. It is well-known that Pi is translocated between tissues dependent on source-sink relationship. In the present study, we have analyzed a molecular mechanism of Pitranslocation between tissues. Using Arabidopsis plants, we found source or sink-specific gene expression. Arabidopsis plants which is defective of those genes showed the suppression of Pi translocation. Furthermore, we developed a new method to isolate living mesophyll cells and vascular bundle in order to analyze how Pi is distributed from vascular bundle to mesophyll cells. To study intracellular compartmentation of Pi, we measured Pi uptake activity of vacuole and conducted proteome analysis of the vacuolar membrane proteins using isolated vacuoles from Arabidopsis suspension cultured cells. We found that under Pi deficiency, vacuolar Pi uptake activity was activated by the activation of H^+ transporting pumps. Using barley (Hordeum vulgare), we analyzed ion distribution of a single leaf. Although K^+ and NO_3・levels are high at the bottom of leaf and low at the tip of leaf, Pi equally distributed along the leaf. In hydathode, Pi was activelyre-absorbed and translocated to whole plant tissue. At last, to analyze Pi transport and translocation of plants in nature, we measured Pi uptake activity of an aquatic plant Egeria densa. In Egeria, a part of Pi was taken up from the soil and transported to leaves in the lake water and some Pi was also taken up from lake water directly. We identified a molecule involving Pi uptake in Egeria leaves.Competitive research funding
- 日本学術振興会, 科学研究費補助金/特定領域研究, 特定領域研究, 2005 - 2006, Principal investigator高等植物における側根形成の分子機構を明らかにするために、以下の研究を行った。 1、側根形成開始を制御するARF7,ARF19の標的遺伝子の機能解析 側根形成開始を制御する転写因子ARF7,ARFl9の標的遺伝子LBD16/ASL18およびLBD29/ASL16に関して、側根形成やオーキシン応答における機能解析を行った。その結果、LBD16/ASL18の過剰発現はarf7 arf19二重変異体の側根形成能の低下を部分的に相補するとともに、根の伸長に対するオーキシン感受性を一部回復させた。また、LBD16/ASL18は核に局在するが、転写抑制ドメインを付加したLBD16-SRDX過剰発現は、側根形成能を低下させるだけでなく、1AA5などのオーキシン誘導性遺伝子の発現を阻害した。これらの結果は、LBD16/ASL18がオーキシンを介した転写調節に関わる可能性を強く示唆した。 2、側根形成を負に制御するクロマチンリモデリング因子PICKLE/SSL2の解析 slr変異体(1AA14遺伝子の機能獲得変異体)の側根欠失表現型を抑圧する変異体ssl2の原因遺伝子は、動物のクロマチンリモデリング因子Mi-2の相同タンパク質PICKLE (PKL)をコードする。slr変異によるARF7,ARF19の下流遺伝子の転写抑制に、PKLとHDAC活性を介したクロマチンリモデリングが関わることが強く示唆された。本年度、これらの成果を論文にまとめて公表した。 3、側根形成能が顕著に低下するcrane変異体の解析 側根形成能が顕著に低下する優性変異体crane-1(cra-1),cra-2を単離し解析を行った。その結果、CRA遺伝子が1AA18をコードすること、および1AA18が1AA14/SLRとともにARF7,ARF19の1能抑制を介して側根形成に関わることが強く示唆された。Competitive research funding
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 特定領域研究, 奈良先端科学技術大学院大学, 2002 - 2006シロイヌナズナにおける茎頂分裂組織構築の分子機構1)SAM形成に関わるるCUC1(CUP-SHAPED-COTYLEDON1),CUC2遺伝子の下流候補遺伝子をマイクロアレイ解析で多数同定し、それらに対して心臓型胚における発現をin situ hybridizationで調べた。その結果、これらの多くの遺伝子が、CUCが発現する所で発現しており、cuc1cuc2二重変異株胚の対応する領域で発現が見られなかった。ただ、これらの中には、野生株でもcuclcuc2でも胚の中で他の領域で特異的な発現を示す遺伝子が幾つかあった。そして、それらの遺伝子の一つであるLAS(LATERAL SUPPRESOR)をCUC2のプロモーターで発現させた所、cuc2cuc3の地上部が示す異常を抑圧した。これは、LASがCUCの下流でSAM形成に関わる事を示唆する。 2)側根基部の細胞分裂を制御するPUCHI遺伝子の変異株は、地上部において花茎の基部に一対の突起物を生じ、その間に構造物が出来る。分子遺伝学的な解析により、この突起物は托葉である事が強く示唆された。また、花芽におけるPUCHIの発現を調べた所、花芽初期に一過的に花芽の上側に発現する事が判った。これらの結果と、野生株と変異株の初期の花芽の形態学的観察の結果から、PUCHIはシロイヌナズナの野生株において花芽分裂組織が形成される時、その根元で包葉が発達するのを阻害している可能性が示唆された。 3)シロイヌナズナの胚頂端部において、オーキシンの細胞外排出タンパク質PIN FORMED1(PIN1)の分布が2枚の線対称な子葉構築に関わり、PID(PINOID)はPIN1タンパク質の働きを後期心臓型胚期から強める事をこれまでに明らかにした。我々はpidエンハンサーmacchibou(mab)1-4を単離し解析しているが、MAB4はNPH3ファミリーのタンパク質をコードしており、PIN1タンパク質の細胞内局在に関与する事を明らかにした。そして、MAB4タンパク質が主として細胞内の機能未知の小胞に局在し、それらの小胞にPIN1やPIDも共局在する事も明らかにした。
- 科学研究費補助金/特定領域研究, 科学研究費助成事業, 特定領域研究, 奈良先端科学技術大学院大学, 2003 - 2004, Principal investigator高等植物における側根形成の分子機構を解明する目的で、シロイヌナズナ側根欠失優性変異体slrと原因遺伝子IAA14、オーキシン応答性転写調節因子ARF7/ARF19、およびslrのサプレッサー変異体ssl2と原因遺伝子SSL2/CHR6を用いた分子遺伝学的研究を行い、以下の成果を得た。 1、側根形成を制御するSLR/IAA14とARF7、ARF19の機能解析 (1)IAA14がARF7、ARF19タンパク質と相互作用することを酵母two-hybrid実験において確認した。これらの結果などから、ARF7、ARF19が側根形成促進に働き、IAA14がARF7/ARF19の負の調節因子として働くことが強く示唆された。 (2)側根形成に関わる遺伝子群を同定する目的で、野生型とslr変異体の根における発現プロファイルをDNAマイクロアレイにより比較・解析した(ベルギーBeeckmanらと共同研究)。その結果、細胞周期関連遺伝子、オーキシン代謝や輸送に関わる遺伝子がslrで抑制されていることがわかった。 2、側根形成に関わるクロマチンリモデリング因子SSL2/CHR6の解析 (1)ssl2 arf7 arf19三重変異体とssl2 slr arf7 arf19四重変異体の作出と解析を行った結果、ssl2変異がarf7 arf19二重変異体の側根形成能を回復させないこと、およびssl2 slr二重変異体の側根形成能がARF7、ARF19に依存することが明らかとなった。したがってSSL2は側根形成を促進するARF7、ARF19の直接の標的遺伝子の発現に関わると考えられる。 (2)slrとssl2 slr変異体を用いたマイクロアレイ解析を行い、ssl2変異による側根形成の回復に伴って発現する遺伝子群を複数同定した。Competitive research funding
- 科学研究費補助金/若手研究(B), 科学研究費助成事業, 若手研究(B), 奈良先端科学技術大学院大学, 2003 - 2004, Principal investigator高等植物におけるオーキシンを介した根の形態形成、特に側根形成の分子機構を解明する目的で、シロイヌナズナ側根欠失優性変異体slrと原因遺伝子IAA14、オーキシン応答性転写調節因子ARF7/ARF19を用いた分子遺伝学的研究を行い、以下の成果を得た。 1、側根形成を制御するSLR/IAA14とARF7、ARF19の機能解析 (1)IAA14がARF7、ARF19タンパク質と相互作用することを酵母two-hybrid実験において確認した。これらの結果などから、ARF7、ARF19が側根形成促進に働き、IAA14がARF7/ARF19の負の調節因子として働くことが強く示唆された。 (2)側根形成に関わる遺伝子群を同定する目的で、野生型とslr変異体の根における発現プロファイルをDNAマイクロアレイにより比較・解析した(ベルギーBeeckmanらと共同研究)。その結果、細胞周期関連遺伝子、オーキシン代謝や輸送に関わる遺伝子がslrで抑制されていることがわかった。 2、組織特異的なオーキシン応答と側根形成との関係についての解析 根のどの組織で発現する変異型IAA14タンパク質(mIAA14)が、側根形成抑制に関わるのかを明らかにするために、根の組織特異的なプロモーターの制御下でmIAA14タンパク質を発現する形質転換体を作出し解析した。根の内鞘を含む中心柱、あるいは原生木部に接する内鞘細胞のみで特異的にmIAA14を発現する植物体では、側根形成が著しく抑制された。一方、側根形成初期から原基内部で異所的にmIAA14-GRを発現する植物においても、異常な分裂組織構造を持つ側根が形成された。これらの結果から、組織特異的なオーキシン応答が側根形成開始や側根原基発生過程に重要であることが明らかとなったCompetitive research funding
- 日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 若手研究(B), 奈良先端科学技術大学院大学, 2001 - 2002, Principal investigator高等植物におけるオーキシンを介した根の形態形成機構の分子遺伝学的研究オーキシンを介した根の形態形成の分子機構を解明する目的で、シロイヌナズナから単離したオーキシン耐性を示す側根欠失変異体solitary-root (slr)とその原因遺伝子IAA14の解析を主に行ない、以下の成果を得た(1、2の成果はThe Plant Journal誌に論文発表した)。 1、レポーター遺伝子(IAA14遺伝子上流プロモーター配列の下流にGUSおよびGFPを繋いだキメラ遺伝子)を用いてIAA14遺伝子の発現解析を行ない、IAA14が根の先端部では表皮で、側根形成領域では維管束組織で発現していることを明らかにした。 2、IAA14とGFPを融合させたタンパク質を発現する植物を作出し、IAA14タンパク質の細胞内局在を調べた。その結果、野生型IAA14-GFPタンパク質の蓄積はほとんど確認されず不安定だが、変異型IAA14-GFPタンパク質は安定に核に局在することから、slr変異によりIAA14タンパク質が安定化することを明らかにした。 3、側根形成においてSLR/IAA14と遺伝的に相互作用する遺伝子座を同定する目的で、slr変異体の側根欠失表現型を抑圧するサプレッサ-変異体の単離を試み、IAA14以外の遺伝子座に変異を持つサプレッサ-変異体suppressor of slr 1(ssl)、ssl2、ssl3を新たに単離した。これらssl slr二重変異体では側根形成のみが回復し、他のslrの表現型(根毛形成異常・重力屈性異常)が回復しないことから、SSL遺伝子群は側根形成特異的にSLR/IAA14と遺伝的に相互作用すると考えられる。 4、マップベースクローニングによりSSL2遺伝子の同定に成功し、SWI2/SNF2型クロマチンリモデリング因子CHDファミリーに属するPICKLE/GYMNOSと同一産物をコードすることを発見した。
- Japan Society for the Promotion of Science, Grants-in-Aid for Scientific Research, Grant-in-Aid for Scientific Research (A)., Nara Institute of Science and Technology, 1998 - 1999Molecular analysis of endoderm cell differentiationWe have identified the genes which related to the regulation of endoderm cell differentiation in Arabidopsis root hypocotyl and inflorescence stem. These genes are named SGR1/SCR(shoot gravitropism 1/scarecrow) and SGR7/SHR(Shoot gravitropism 7/short root). The SGR1/SHR have been cloned and it encodes a member of GRAS family. In this project, we made clear next 3 points. 1.The shoot gravitropic mutants named sgr1 and sgr7 were allelic to scarecrow and shoot root respectively by genetic and molecular analysis. The expression pattern of SGR1/SCR gene was analyzed by in situ hybridization and expression pattern of marker gene using transgenic line containing SCR promoter :: GFP. 2.SGR7/SHR was cloned. It was a member of same family of SGR1/SCR. 3.The expression pattern of SGR1/SCR was distributed in a double mutant line of pin (pin formed) and sgr4 (shoot gravitropism 4). In this line, the endoderm cell layer in inflorescence stem was increased partially.
- Lecturer, 夢ナビLIVE 大阪会場, Jul. 2019植物ホルモンによる形作り(夢ナビTALK)
- Lecturer, サイエンスカフェ神戸, 25 Jul. 2009植物のからだづくりはどうやって決まるのか? 〜モデル植物を用いた研究の最前線〜
